图1:ANJ-DNA生产Raav。anj-DNA旨在编码辅助构建体和RAAV生产所需的repcap以及利益基因(GOI)。有趣的是,我们的GOI旨在具有模仿AAV2 ITR的发夹结构,因此可以复制并将其包装到Raav中,而无需额外的侧翼序列。可以定制这三个构造以编码任何必需的GOI或优化的助手序列。ANJ-DNA也可以与其他质粒或包装细胞系组合使用,以进行AAV产生。
这项研究的目的是开发纯化样品中AAV病毒基因组的DDPCR方案。未包装的污染物DNA,以及其他来自生产质粒和/或细胞系中的DNA,需要在准确量化病毒基因组之前被消除。我们测试了几个方案,以便它们去除未包装的DNA的能力,同时保持准确的包装病毒基因组滴度。为此,我们将质粒DNA刺激到纯化的AAV2载体中,并评估了以下样品处理条件:(a)仅与DNasei孵育; (b)DNAsei孵育,然后再灭活,72°C热灭活,蛋白酶K处理,最后95°C热灭活; (c)与条件B相同,但在72°C而不是95°C(d)无样品预处理时进行最终热灭活。质粒和AAV基因组拷贝通过双链DDPCR(QX200液滴数字PCR系统,Bio-Rad)量化。与条件D相反,在未进行样品处理的情况下,与条件A和C条件A和C相比,在条件B和条件B中观察到较低的AAV2 VG滴度的趋势在条件A,B和C中未检测到质粒DNA(图1)。有趣的是,在条件A和C中都会发现可比较的VG滴度。在重复使用纯化的AAV9实验时,进行了类似的观察结果。
体内基因治疗面临的最大挑战之一是载体介导高度选择性的基因转移到特定治疗相关细胞群中。我们在此介绍 DARPin 靶向 AAV(DART-AAV),展示针对人类和鼠 CD8 的 DARPin。将 DARPin 插入 AAV2 和 AAV6 衣壳蛋白 1(VP1)的 GH2/GH3 环中,可实现对 CD8 阳性 T 细胞的高选择性,同时基因传递活性不受影响。值得注意的是,衣壳核心结构未发生改变,突出的 DARPin 可检测到。在复杂的原代细胞混合物中,包括供体血液或小鼠全身注射,CD8 靶向 AAV 在选择性、靶细胞活力和基因转移率方面远远优于未改造的 AAV2 和 AAV6。在体内,将单个载体注射到经过条件化的人源化或免疫功能正常的小鼠中,可击中高达 80% 的活化 CD8+ T 细胞。虽然在非活化条件下基因转移率显著降低,但在将 Cre 递送到指示小鼠中时,仍然可以检测到 CD8+ T 细胞中的选择性基因组修饰。在两种小鼠模型中,CD8+ T 细胞的选择性接近绝对,但肝脏的靶向性极强。本文描述的 CD8-AAV 扩展了免疫学研究和体内基因治疗选择的策略。
基因组滴度确定高精度。b参考标准标准(后代),并使用CGT DPCR分析在QIACINID DPCR系统上使用2个三个三重反应(ITR,CMVE,CMVP和GFP,WPRE,HGHPA)进行定量。显示了非ITR目标之间的变异系数(CV)。aav2,aAv8和aav9的目标<5%的目标之间的最大偏差<5%,<2%。C基因组完整性使用Qiacuity软件套件2.5版确定。基因组靶标在5个质子反应中运行。进行了基因组完整性的分析,包括所有5个通道或跨越基因组不同部分的2组。
AAVpro 包装质粒 (AAV2,#6234;AAV5,#6664;AA6,#6665,Takara Bio) 和 AAVpro 293T 细胞系 (#632273,Takara Bio)。所有 AAV 载体质粒均通过将对应于目标基因座和敲入序列的 PCR 片段克隆到 EcoRV 和 BglII 限制位点之间的 pAAV-CMV 载体中,去除 CMV 启动子、b-珠蛋白内含子和 hGH polyA 来构建。按照制造商的说明,使用 Xfect 转染试剂 (#631318,Clontech) 将 AAV 质粒和包装质粒转染 293T 细胞。使用 AAVpro 纯化试剂盒 (所有血清型) (#6666,Takara Bio) 提取和浓缩 AAV。使用 AAVpro 滴定试剂盒(#6233,Takara Bio)和热循环仪 Dice 实时系统 III(TP950,Takara Bio)估算病毒基因组拷贝数。
基因疗法。1 - 7具有12种不同的人类血清型,它们都与任何人类疾病有关,有效地转移了大量分裂和非分散细胞,从而允许转基因的延长表达。此外,AAV会触发最小的先天免疫反应,并且本质上复制不足。由于这些吸引人的特征,AAV是体外和体内环境中基因传递的高度有利向量。迄今为止,FDA已批准了五种基于AAV的基因治疗药物,这些药物解决了各种遗传疾病:8 - 13 Luxturna,一种用于遗传性视网膜疾病的AAV2药物; Zolgensma,一种用于脊柱肌肉营养不良的AAV9药物; Hemgenix,一种用于血液Philia b的AAV5药物; Roctavian,一种用于血友病A的AAV5药物;和Elevidys,一种AAVRH74药物,可治疗Duchenne肌肉发育不良。正在进行许多其他临床试验,显示出令人鼓舞的结果。3
遗传性视网膜营养不良是由基因突变引起的一组眼睛疾病。RPE65基因以操作顺序以保持光感应感光受体细胞,视网膜的棒和锥所需的一种维生素A。RPE65基因突变会导致RPE65蛋白质功能的部分或总损失,这可能会导致严重的视力障碍,从生命的早期开始。用于治疗RFE65突变相关的视网膜疾病的基因治疗使用视网膜下注射病毒载体,将治疗基因插入具有已知RPE65突变的人的可行视网膜细胞中。正常等位基因的引入可以纠正现有的可行视网膜细胞中的突变基因,并将这些细胞返回正常功能。腺相关病毒(AAV)是最安全,最有效的病毒载体。voretigene Neparvovec(Luxturna)是含有腺相关的病毒2(AAV2)载体,含有人RPE65互补DNA(CDNA),迄今为止,是FDA批准的基因疗法,用于治疗RPE65遗传疾病的治疗。
I. 简介 AAVpro CRISPR/SaCas9 系统用于制备腺相关病毒 (AAV) 载体,以将编码 CRISPR/SaCas9 介导的基因组编辑所需成分的基因 [即单向导 RNA (sgRNA) 和 SaCas9 核酸酶] 递送至哺乳动物细胞。这种基于 AAV 的单载体系统使用来自金黄色葡萄球菌的 Cas9 (SaCas9),其编辑效果与更常用的化脓性链球菌 Cas9 (SpCas9) 相似,但短约 1 kb。通过使用较小的 SaCas9,可以将 SaCas9 和 sgRNA 序列装入单个载体中,并在体外和体内对多种哺乳动物细胞实现有效的基因组修饰。 AAVpro CRISPR/SaCas9 无辅助系统 (AAV2)(货号 632619)是一个完整的系统,包含用于构建定制设计的 sgRNA 表达质粒和制备 AAV 颗粒的试剂。AAVpro CRISPR/SaCas9 载体系统(货号 632618)包含与货号 632619 相同的组件(包装系统除外);详细信息在第 II 部分“组件列表”中列出。
图1多个系统萎缩的治疗方法这种形状说明了针对多系统萎缩(MSA)病理机制的各种治疗策略。MSA的特征是神经元丧失,神经胶质病和α-突触核蛋白夹杂物的积累。抗 - α突触核蛋白疗法包括 - 在诸如ANELE138B,清除剂,例如PD01A,PD03A,LU AF82422,TAK - 341和UB – 312和UB –312和UB –312和抑制方法之类的清除剂中的聚集。细胞疗法涉及修复和再生受损神经组织的间充质干细胞。能量代谢和INSU -LIN信号 - 靶向疗法包括脱齿素 - 4,泛氨醇和NAD +补充。抗炎性和神经保护疗法具有氟西汀,AAV2 - GDNF和KM819的化合物,可减少炎症并提供神经保护作用。细胞调节文本包括显示退化的神经元,α-突触核蛋白夹杂物,活化的星形胶质细胞和小胶质细胞,免疫 - 反应性T细胞,IM成对的线粒体,Pro - 炎性细胞因子,肌蛋白损失和髓质细胞质细胞胞质包含(GCIS)(GCIS)。此视觉代表提供了MSA中治疗策略及其细胞靶标的概述。
X连接的色素性视网膜炎(XLRP)是一种罕见的遗传性视网膜疾病,表现为夜视受损和外围视力丧失,发展为法律失明。XLRP最常见的原因之一是色素性鸟氨酸三磷酸酶调节剂(RPGR)基因中的致病变异。不幸的是,目前尚无RPGR -XLRP的治疗方法。frontera开发了FT-002,这是一种基于AAV2/5的向量,在GRK1启动子的控制下携带密码子优化的HRPGR ORF15基因,以挽救光感受器细胞的功能和结构丧失,并通过下视网膜给药改善视觉功能。向量设计如图1。在这里,我们评估了CHO-K1细胞中FT-002和聚谷氨酰化的HRPGR-ORF15蛋白的体外转导效率,在5.80×10 7,1.83×10 80和5.80×10 8和5.80×10 8 VG/EYSE中,下输送FT-002下输送FT-002的效率和生物分布的效率和生物分布。在一项符合GLP的13周研究中,FT-002在Cynomolgus猴子中。临床前结果表明,FT-002是一种有望治疗与RPGR相关的XLRP患者的有前途的AAV基因疗法,目前正在中国进入PH I/II临床研究。
