免疫缺陷动物是外源组织植入的宝贵模型,广泛应用于人源化动物模型的建立、再生医学和肿瘤学等诸多领域。与小鼠相比,实验室大鼠体型较大,更容易接受各种组织器官的移植。考虑到缺乏优质的免疫缺陷大鼠资源,我们利用 CRISPR/Cas9 基因组编辑系统,单独或联合敲除 F344/Jcl 大鼠的白细胞介素 2 受体γ 链基因 ( Il2rg ),以创建研究人员可以自由使用的优质生物资源:重症联合免疫缺陷 (SCID) 大鼠。选取Il2rg(5-bp del)和Rag2([1-bp del+2-bp ins]/[7-bp del+2-bp ins])同时发生移码突变的创始大鼠1只,进行交配,建立免疫缺陷大鼠系。Il2rg单敲除(sKO)和Il2rg/Rag2双敲除(dKO)大鼠均存在严重的胸腺发育不全,初步证实了免疫缺陷表型。外周血血细胞计数评估显示,sKO和dKO大鼠白细胞计数明显降低,红细胞计数不受影响。白细胞计数的减少主要是由于淋巴细胞的减少所致。此外,通过流式细胞术分析淋巴细胞群表明,在两只基因敲除大鼠中,B 细胞 (CD3 - CD45 + ) 和自然杀伤细胞 (CD3 - CD161 + ) 的数量均显著减少。相反,T 细胞显著减少,但在 sKO 和 dKO 大鼠之间结果略有不同。值得注意的是,我们的免疫缺陷大鼠没有表现出生长迟缓或配子发生缺陷。这种高质量的 SCID 大鼠资源现在由日本国家生物资源项目管理。我们的 SCID 大鼠模型已用于各个研究领域,证明了其作为生物资源的重要性。
针对人类免疫系统的药物的抽象背景临床前评估对肿瘤学研究人员提出了挑战。由于人性化小鼠的商业引入,抗肿瘤功效和药效研究现在可以用带有人类免疫系统成分的小鼠中的人类癌细胞进行。但是,这些模型的开发和表征对于了解哪种模型最适合不同的代理是必要的。我们表征了A375,A549,CAKI-1,H1299,H1975,HCC827,HCC827,HCT116,KU-19-19,MDA-MB-231,MDA-MB-231和RKO Human Cell Cell Cell Senografts CD34 + CD34 +人类糖尿病型糖尿病生长量的Tumore Lagrig ravention tumune tumune tumune tumune tumune tumune tumune tumune 1 (PD-L1)表达和对抗PD-L1治疗的反应。使用流式细胞术和免疫组织化学进行免疫细胞分析。使用atezolizumab进行了人源化异种移植模型对PD-L1治疗的抗肿瘤反应。结果我们发现,与其他模型相比,与模型中的脾脏和肿瘤中的CD4 +和CD8 + T细胞组成不同,A375,CAKI-1,MDA-MB-231和HCC827含有较高的肿瘤内频率,与其他模型相比,CD4 +和CD8 + T细胞含有较高的肿瘤内频率。我们证明,每个模型内的免疫细胞浸润水平都受肿瘤而不是干细胞供体的强烈影响。许多肿瘤模型表现出丰富的髓样细胞,B细胞和树突状细胞。RKO和MDA-MB-231肿瘤包含PD-L1 +肿瘤细胞的最高表达。RKO和MDA-MB-231肿瘤包含PD-L1 +肿瘤细胞的最高表达。模型对atezolizumab的抗肿瘤反应与CD4 +和CD8 +肿瘤浸润淋巴细胞(TILS)的水平呈正相关。结论这些数据表明,肿瘤内部因素会影响肿瘤和脾脏内的免疫细胞库,并且TIL频率是确定人道化小鼠中肿瘤异种移植物中对抗PD-L1反应的关键因素。这些数据还可能有助于选择肿瘤模型,以测试新型免疫肿瘤或肿瘤定向剂的抗肿瘤活性。
抽象背景和目标:心脏细胞结构和功能的干扰可能会导致患者心血管疾病(CVD)。尽管心脏移植是治疗策略之一,但由于与移植排斥相关的挑战,它并不适用于所有患者。组织工程是用于治疗CVD患者的新治疗方法之一。在这项研究中,研究了对心层细胞从间质细胞分化的分化的聚乳糖乙醇酸(PLGA)和多羟基丁酸(PHB)支架以及胎盘提取(PE)。方法:使用静电纺丝方法制作PLGA-PHB和PLGA-PHB-PE支架。此外,将组织培养聚苯乙烯(TCP)用于细胞培养作为对照组。使用电子显微镜评估了支架的物理和生物学特征,包括粘附强度,水和蛋白质吸收及其形态。脂肪样品是从接受吸脂术的患者那里获得的。使用流式细胞术评估了干细胞CD34,CD45,CD90和CD105标记。另一方面,使用MTT方法评估了支架上分化细胞的可行性。另外,在分化的心脏细胞中,使用RT-PCR评估了四个基因肌钙蛋白T,GATA4,MYOD和α-MHC的表达。结果:与PLGA-PHB-PE支架上的分化细胞中,肌钙蛋白T,GATA4,MYOD和α-MHC基因的表达明显更高,与PLGA-PHB和TCPS支架相比(P <0.05)。伊朗红人Med J.此外,在PLGA-PHB-PE支架上的分化细胞中,生存,水和蛋白质吸收和粘附强度的百分比高于其他两个支架上的其他细胞(p <0.05)。结论:PE与PLGA-PHB的组合可以有效地改善脚手架的生物学功能,并导致心脏细胞与间充质细胞的分化。关键字:胎盘提取,支架,纳米纤维,心肌细胞,间充质干细胞资金:无 *这项工作是根据CC BY-NC-SA许可证出版的。版权所有©作者引用了本文的内容:Mokhames Z,Dehghani Ashkezari M,Seyedjafari E,Seifati SM。评估支架的影响与胎盘提取对干细胞心肌细胞分化的影响:一项实验研究。2024,85.1-9。
剂量强化化疗已纳入当代治疗方案;但是,这增加了在治疗过程中的毒性负担和幸存者的晚期影响。1,2迫切需要确定新的疗法以改善结果。组蛋白脱乙酰基酶抑制作用似乎是KMT2A -R婴儿的有前途的治疗策略,我们最近的化学基因组分析确定了romidepsin的潜力。romidepsin被证明可以增强Cytarabine的体外活性,Cytarabine是婴儿所有疗法的关键成分,当与高剂量细胞蛋白酸酯结合使用时,体内信号鉴定出体内信号。3在这项研究中,我们研究了romidepsin和Cytarabine之间的体内协同作用,确定了这种组合的体内毒性,并探索了romidepsin对DNA损伤对细胞丁滨的影响的影响。所有体内实验均由澳大利亚珀斯Telethon Kids Institute动物伦理委员会批准。为了确定治疗组成后的药物毒性和功效,用1x10 6每-785A细胞接种了7周的女性点头/SCID小鼠。PER-785a是具有t(4; 11)易位的遗传表征的细胞系。3对于所有体内研究,当人类CD19 +或CD45 +细胞的百分比在骨髓(BM)中达到1%时,开始药物治疗,这是每种模型的白血病细胞动力学的广泛映射所识别的(在线补充图S1)。治疗计划模仿当代临床试验设计的概念。注射。治疗三周。目前,在诱导疗法对互化化学疗法主链的诱导治疗后正在研究新的药物,因此在低疾病负担的设置中引入了4个,而不是在BM中明显明显的诊断疾病的诊断。小鼠被随机分为五组五只小鼠,并在第12天通过腹膜(i.p.)由车辆控制组成的治疗组; 1.5 mg/kg romidepsin在星期一和星期四两次/周;星期一至周五,低剂量的Cytarabine(5 mg/kg)五次;星期一至周五,高剂量细胞押次(100 mg/kg)五次; 1.5 mg/kg romidepsin和低剂量细胞蛋白酶的联合疗法。在治疗小鼠综合后三天被处死,并通过用抗人类CD19-APC抗体的流式细胞仪测量BM中人类CD19 +细胞的百分比来确定白血病。 在牺牲时,通过心脏穿刺从每只小鼠那里获得0.2 mL的血液,并进行了完全的血数,以确定每个队列的骨髓抑制性程度。 单人活性在Romidepsin的BM中的平均百分比为66.6%(P <0.01),低剂量Cytara-Bine的平均百分比为66.6%(p <0.01),27.3%(p <0.01)(图1A)。 通过联合疗法的结合疗法和降低为3.8%浸润的平均值(p <0.0001),白血病负担的减少显着增强(图1A)。 尽管用高剂量细胞押滨治疗获得了BM的白血病细胞的清除率,但小鼠在治疗小鼠综合后三天被处死,并通过用抗人类CD19-APC抗体的流式细胞仪测量BM中人类CD19 +细胞的百分比来确定白血病。在牺牲时,通过心脏穿刺从每只小鼠那里获得0.2 mL的血液,并进行了完全的血数,以确定每个队列的骨髓抑制性程度。单人活性在Romidepsin的BM中的平均百分比为66.6%(P <0.01),低剂量Cytara-Bine的平均百分比为66.6%(p <0.01),27.3%(p <0.01)(图1A)。通过联合疗法的结合疗法和降低为3.8%浸润的平均值(p <0.0001),白血病负担的减少显着增强(图1A)。尽管用高剂量细胞押滨治疗获得了BM的白血病细胞的清除率,但小鼠
