在天然条件下负责血液细胞产生的造血通量的动力学仍然是一个争论。使用Cite-seq分析,我们发现了一个不同的祖细胞,该祖先显示了一个细胞周期基因的特征,类似于静态造血干细胞中发现的祖细胞。我们进一步确定CD62L标记可用于表型从FLT3 +多能祖细胞(MPP4)室中富集该种群。在体外和体内分析验证了MPP4室的异质性,并确定了CD62L-MPP4细胞的静止/慢节循环特性。此外,在天然条件下的研究揭示了一个新的MPP室的分层组织,其中静止/慢速循环的MPP4细胞在稳态下维持了延长的造血活性,同时引起了其他谱系偏见的MPP种群。总的来说,我们的数据表征了MPP4室内持久且富有生产力的静止/慢速造血中间体,并突出了未扰动的造血作用期间祖细胞分化的早期路径。
图2。Prime-XV T细胞CDM支持量子柔性细胞扩展系统中的强大细胞扩展。用抗CD3和抗CD28珠激活人PBMC,并在200 IU/ML IL-2的存在下扩展。量子柔性细胞扩展系统中的8天扩展在95%的生存力下总共产生了6 x 10 9的细胞(a)。使用Vicell XR评估细胞计数和生存能力(锥虫蓝色排除)。 PBMC培养物同样显示出高CD62L表达和可忽略的PD-1水平,在第9(B)中通过多参数流式细胞仪分析。 结果代表了3个健康捐助者。细胞计数和生存能力(锥虫蓝色排除)。PBMC培养物同样显示出高CD62L表达和可忽略的PD-1水平,在第9(B)中通过多参数流式细胞仪分析。结果代表了3个健康捐助者。
图2。T细胞,B细胞,DC和NK细胞在CD45+细胞上门控。B细胞被鉴定为CD19+,然后鉴定出幼稚/成熟的CD27-IGD+ B细胞。浆膜(CD27+ CD20-)。经典的T细胞被鉴定为CD4+,CD8+或TCRγδ+,然后根据CD62L和CD45RA或CD45RO的表达来鉴定良好的T细胞子集,中心记忆和TN/SCM和TN/SCM和TN/SCM和TN/SCM和干细胞T细胞),CD45RA和CCR7(CD45RA和CCR7)(NAIS中心记忆,效率效应),效率不同) (茎记忆T细胞TSCM),CD127和CD25(Tregs)以及CD185和CD45RA(T卵泡辅助细胞)。PD1的表达,并在CD8+ TEMRA细胞中评估了KLRG1表达。经典DC被鉴定为CD3- CD19- CD20- CD16- CD14- CD56- HLA-DR+,然后仅鉴定PDC子集仅为CD303+CD123+。嗜碱性粒细胞被确定为CD3- CD19- CD20- CD16- CD14- CD56- HLA-DR-CD123+。NK细胞被鉴定为CD3- CD19- CD20- CD14- CD123-HLA-DR-。成熟和未成熟的NK细胞,然后将Kir-NK细胞鉴定为CD57+ CD158+成熟的NK细胞。评估 NK细胞和非NK细胞的CD122表达。
抽象目标强直性脊柱炎(AS)是一种慢性炎症性风湿病,主要影响轴向骨架。外周受累(关节炎,肠炎和脑炎)和肌肉骨骼外表现,包括葡萄膜炎,牛皮癣和肠炎,发生在相关的患者中。是由局部炎症引起的慢性和严重背痛的原因,这可能导致破骨增生并最终导致脊柱融合。与人白细胞抗原-B27基因的缔合以及趋化因子水平升高的CCL17和CCL22在AS患者的血清中,导致我们研究CCR4 + T细胞在疾病发病机理中的作用。方法通过多参数流式细胞仪分析了从AS(n = 76)患者或健康供体患者的血液中分离出的(n = 76)患者的血液的CD8 + CCR4 + T细胞,并通过RNA测序评估了基因表达。根据治疗方案和当前疾病评分对患有AS进行分层的患者。结果CD8 + CCR4 + T细胞显示出独特的效应表型,并上调了炎症趋化因子受体CCR1,CCR5,CX3CR1和L-选择素CD62L,表明迁移能力的改变。CD8 + CCR4 + T表达CX3CR1的细胞具有增强的细胞毒性特征,表达了穿孔蛋白和颗粒酶B. RNA序列途径分析表明,来自活性疾病患者的CD8 + CCR4 + T细胞显着上调了促进osteogen openogen的基因,促进了osteogenogen的基因,促进了ostosogenogen,corne of os os ost ostosenty in As Fentialeasens。结论我们的结果阐明了一种新的分子机制,通过该机制,T细胞可以选择性地迁移到炎症基因座,促进新的骨骼形成并有助于AS中观察到的病理骨化过程。
使用嵌合抗原受体 (CAR) T 细胞进行癌症免疫治疗是一个快速发展的领域,制造这些细胞是一个复杂的过程,需要多个优化步骤。我们已经开发出用于分离、激活和扩增人类 T 细胞的试剂,可用于临床细胞疗法制造。可溶性 ImmunoCult™ 人类 T 细胞激活剂通过交联细胞表面的 CD3 和共刺激分子来诱导 T 细胞活化。然后可以对活化的 T 细胞进行基因改造,随后在无血清和无异种的 ImmunoCult™-XF T 细胞扩增培养基中扩增。在这里,我们介绍了几种使用 ImmunoCult™ 产品的优化策略,以获得高转染效率和最大细胞产量。通过评估 T 细胞的活化动力学并确定最佳转染时间点,可以显著提高 CRISPR/Cas9 和慢病毒介导的基因修饰方法中的转染效率。我们的研究还表明,在激活后第三天将 T 细胞稀释至较低的细胞密度可大大提高细胞活力和累积细胞生长,从而使培养 10 - 12 天后的总人类 T 细胞扩增超过 1000 倍,活力 > 85%。扩增的 T 细胞共表达 CD45RO + CD62L + 。例如,我们应用此处描述的工作流程从健康供体中生成 T 细胞受体 α β (TCR αβ ) 敲除 (KO) T 细胞,敲除效率高达 90%。使用 EasySep™ 人 TCR αβ 耗竭试剂盒可以进一步提高 TCR αβ KO 细胞的纯度。总之,本研究中概述的流程可以轻松快速地实施,以提高 T 细胞制造效率。
