- 肝炎B表面抗原(HBSAG) - 肝炎表面抗体(抗HBS) - 肝炎-Hepatitis -Hepatitis -Hepatitis -Hecor Igm(抗HBC IgM) - 肝病抗体(HBE)-HBEIG -HBEM HBEMIGMI- -Hepatitis A IgG -Cytomegalovirus IgG -Hepatitis C Antibody (HCV Ab) -HIV Ag/Ab -HTLV 1&2 -Rubella IgM -Rubella IgG -Syphilis (Total Ab) -Toxoplasma IgG -Cytomegalovirus IgM -Epstein Barr Virus Nuclear Antigen IgG (EBNA) -Epstein Barr病毒病毒式衣壳抗原(VCA)IgM -EPSTEIN BARR病毒病毒式衣壳抗原(VCA)IgG
Capsida正在开发一种基因补充疗法候选者(CAP-003),该疗法被作为单一静脉注射(IV)输注对PD-GBA患者。CAP-003由一个工程的AAV CAPSID组成,旨在在CNS上广泛提供功能性的人GBA1基因,同时对肝脏和DRG进行靶向,这些基因已被证明与以前的基因治疗计划中的安全问题有关。使用功能丧失的小鼠模型,我们提供了概念药理学证明,表明使用替代capsid的治疗货物的给药会导致GCASE活性的剂量依赖性增加,而GCASE活性与糖脂积累的剂量依赖性降低相吻合。在非人类灵长类动物中使用临床候选者,我们表明,在低至中剂量下的CAP-003给药会导致整个CNS的稳健表达,同时GCASE蛋白水平和活性的增加,这表明与生物含量相似的测量相关性很强。鉴于患者人群的脑gcase活性降低了约30%,预计观察到的增加将使活性水平归一化,降低糖脂,并可能降低或停止PD-GBA的进展。
重组腺相关病毒 (AAV) 是神经科学研究中常用的基因传递载体。它们具有两个可工程化的特征:衣壳(外部蛋白质壳)和货物(封装的基因组)。可以修改这些特征以分别增强细胞类型或组织向性并控制转基因表达。已经鉴定出几种具有独特向性的工程化 AAV 衣壳,包括具有增强的中枢神经系统转导、细胞类型特异性和神经元逆向运输的变体。将这些 AAV 与现代基因调控元件和最先进的报告、传感器和效应货物配对,可以实现高度特异性的转基因表达,以对脑细胞和回路进行解剖和功能分析。在这里,我们讨论了最近的进展,这些进展提供了一个全面的(衣壳和货物)AAV 工具包,用于遗传访问分子定义的脑细胞类型。
**评估来自Werle等。al。,“分析技术的比较,以量化与腺相关病毒载体的衣壳含量的比较”(2021)和Gimpel等。al。,“重组腺相关病毒基因疗法的过程和产品表征的分析方法”(2021)。
腺相关病毒(AAV)是将基因疗法递送到靶器官的重要车辆。因此,控制其靶向是极大的治疗兴趣。通常,在搜索具有理想的对流的AAV病毒的过程中,筛选了突变的衣壳的大量库。但是,在任何一个实验中筛选的衣壳的数量通常远小于搜索的序列空间。因此,一开始将搜索空间限制为那些会产生可行病毒的衣壳将是有用的。在这里,我们介绍了在此过程中设计为助手的机器学习模型的结果。他们预测了氨基酸序列的生产拟合度,用于在可变区域中的AAV Capsid蛋白VP1中携带插入突变的AAV9病毒8。我们演示了模型的性能,并展示了它们如何用作预筛选工具,以构建具有高平均生产适应性和高度多样性的热带主义筛查的衣壳库。
基因治疗是一种治疗技术,可修饰一个人的基因治疗或治愈疾病。这种修饰可以通过用健康的基因副本代替引起疾病的基因,使疾病的基因失活或将新基因引入体内以帮助治疗疾病。有多种基因疗法治疗,但是一种常见的技术是使用病毒载体,例如腺相关病毒(AAV),将治疗基因传递到人类细胞中进行复制。[2] AAV具有许多有利的特征,包括缺乏致病性,复制无能力,感染非分散细胞的能力以及在特定部位中整合到宿主细胞基因组中的能力。[3]这些有前途的特征导致了它们的进步,早期研究重点是单个AAV变体(血清型)AAV2。从那时起,与AAV2相比,已经发现了新的AAV血清型在某些细胞或组织中提供较高的转导效率。这些独特的细胞偏向主义已导致大量AAV血清型的发展来包装不同的治疗基因来治疗特定疾病。[4]不同的AAV血清型不仅具有不同的细胞向量,而且由于其不同的氨基酸序列和衣壳结构,它们的结构特性和稳定性也有所不同。这些差异使每种AAV血清型都具有独特的熔化温度。[4,5]为了开发有效的AAV疗法,在开发过程中表征AAV的关键属性至关重要。SUPR-DSF在热坡道期间测量了每种血清型的固有荧光,以产生熔体曲线。一个关键属性是AAV CAPSID的热稳定性,可用于血清型识别,优化衣壳配方以及在任何过程更改中进行比较。[6]可以通过在热坡道期间从AAV中的色氨酸残基中监测固有荧光的变化,可以通过差异扫描荧光法(DSF)测量衣壳稳定性。在此应用程序注释中,我们使用SUPR-DSF来测量三种AAV血清型的热稳定性:AAV2,AAV5和AAV6。此外,我们在AAV2和AAV6上进行了浓度稀释系列,以确定最小样品要求。所有样品均以10µl的井体积为10µl,在单个384孔微孔板上一式三份,强调该仪器的高通量可能性。
源自成簇的规律间隔短回文重复序列 (CRISPR)-Cas9 位点特异性核酸酶系统的生物学应用继续影响和加速基因治疗策略。在临床治疗环境中,安全有效地将 CRISPR/Cas9 系统共递送至靶体细胞至关重要。非病毒和病毒载体系统都已应用于此递送。尽管进行了出色的原理验证研究,但可用的载体技术仍然面临着限制 CRISPR/Cas9 辅助基因治疗应用的挑战。值得注意的是,强制的基因编辑组件共递送必须在可能存在预先形成的抗载体免疫的情况下完成。此外,必须寻求方法来限制脱靶编辑的可能性。为此,我们利用腺病毒 (Ad) 的分子混杂性来满足 CRISPR/Cas9 辅助基因治疗的关键要求。在这方面,我们努力对猿猴(黑猩猩)腺病毒分离株 36 (SAd36) 进行衣壳工程改造,以实现对载体趋向性的定向修饰。衣壳中整合有髓细胞结合肽 (MBP) 的 SAd36 载体允许对血管内皮进行选择性体内修饰。重要的是,血管内皮可以作为与几种遗传性疾病相关的血清因子缺乏的有效非肝细胞来源。除了允许重定向趋向性之外,非人类灵长类动物腺病毒的衣壳工程改造还提供了规避预先形成的载体免疫的方法。在此,我们生成了一个 SAd36.MBP 载体,该载体可以作为单一静脉给药剂,允许对小鼠脾脏、大脑和肾脏的内皮靶细胞进行有效和选择性的体内编辑。数据可用性:支持本研究结果的数据可根据合理要求从通讯作者处获得。
抗病毒细胞因子干扰素(IFN)激活IFN刺激基因(ISGS)的表达以建立抗病毒态。粘菌病毒抗性2(MX2/MXB)是一种ISG,它抑制了HIV-1的核进口并与病毒式衣壳和细胞核转运机械相互作用。我们将肌球蛋白轻链磷酸酶(MLCP)亚基MyPT1和PPP1CB作为MX2的正常作用调节剂,与其N末端结构域(NTD)相互作用。我们证明了NTD在14、17和18的位置的丝氨酸磷酸化抑制了MX2抗病毒功能,可防止与HIV-1帽骨和核转运因子的相互作用,并由MLCP逆转。重要的是,NTD丝氨酸磷酸化还阻碍了MX2介导的细胞核货物进口的抑制作用。我们还发现,IFN治疗降低了这些丝氨酸处的磷酸化水平,并概述了稳态调节机制,其中通过磷酸化对MX2的抑制以及MLCP介导的去磷酸化的抑制作用,平衡MX2对MX2对正常细胞与HISATE免疫功能的有害作用平衡,与HIV-1抗HIV-1。
腺相关病毒(AAV)是单链的DNA病毒,其基因组被由三种不同蛋白组成的衣壳封装。aavs属于依赖性属的属,并依靠辅助病毒进行复制。由于缺乏致病性和作为基因治疗转移载体的潜力(尤其是单基因疾病),近年来,它们的意义越来越大。
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