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由SRI国际途径工具生成的版本28.5在2024年12月28日星期六
该图的在线版本可在biocyc.org上找到。生物合成途径位于细胞质的左侧，右侧的降解途径，未分配给任何途径的反应位于细胞质的最右边。转运蛋白和膜蛋白显示在膜上。也可以显示周质（在适当的情况下）以及细胞外反应和蛋白质。途径根据其细胞功能进行着色。省略了途径之间的连接，以易读。
有效地量化了大量的DNA甲基化
图1：WGB中的参考序列空间爆炸。A：可视化WGBS协议的两个主要步骤，导致参考序列空间的2倍爆炸。首先，参考序列是变性的，并用硫化钠填充剂处理，导致C转化为未甲基化的胞嘧啶。在原点链中具有CS的位置（Bisulfi Te治疗之前）始终为红色。在PCR步骤中，将链片段放大，导致代表链片段（+）及其反向补体（ - ）的序列。由于A到T的反向互补性在原始链中没有甲基化的C（所有位置都带有以前的GS颜色为橙色），因此这将结果4不同的链。b：WGBS序列空间中的读取映射问题，通过映射到完整的参考空间（1），并使用读取本身或其反向补充必须映射到参考（2）的C/T转换版本的想法。后者在空间要求中规定了2倍爆炸以进行参考。
我的树木：树木清查、识别和绘图
● 密封袋 ● 彩色标记胶带、丝带或其他类型的记号笔 ● 旗帜（可选） ● 树图材料（牛皮纸、记号笔、彩色纸、剪刀或任何其他有趣的材料！） ● 带数字的树标签 介绍： 让学生集中精力进行活动，鼓励他们想象在公园、学校或家里的树下是什么感觉。让他们回忆一些在树周围的记忆或与之相关的感受。这节课将探讨这个问题：“我家有多少棵树？有多少种不同类型的树？” 活动：首先，你应该确定你希望学生探索的房子院子或社区的区域。这可以是庭院、后院或社区绿地。如果需要，用旗帜标记他们将要探索的区域。 数树： 让学生开始计算或估计研究区域内的树木数量。如果同时使用计数和估算方法，学生可以将他们的估计值与他们计算的实际数量进行比较。
Ty-Rap™ 电缆扎带在太空和地球上的应用
户外建筑和工业应用，如石油和天然气设施、铁路、海运和地面运输。持续创新的 Ty-Rap 热反应电缆扎带可改变颜色以警告潜在的危险高温，而其他彩色扎带则具有浮力，便于目视检测，这对于食品和饮料加工至关重要。
菱形（r Its）普鲁士白色作为阴极材料
图2：普鲁士白色材料，其立方体和菱形晶体结构。在这些结构中，高旋转过渡金属离子由红色球表示，低旋转过渡金属离子由绿色球体表示。配位polyhedra略微透明，根据其中央原子的颜色进行颜色。氮原子由蓝色球体，灰色球体的碳原子和黄色球体代表。
DNA修复的全基因组分析标识更高 -
（a）实验设置和集成的概述。（b）1p染色体上的信号。左：在 +DSB条件下的单细胞热图（RPKM），其顶部为 +DSB（有色）和–DSB（灰色）条件的单细胞聚集体。右：带有覆盖MSR调用的单细胞线图。asisi主题用黑线注释，红色三角形表示经常裂解（或“顶部”）位点。（c）所有修复频率≥10％的ASISI位点的条形图，每个位点的修复频率（目标蛋白质和方法）颜色为颜色。通过增加绝对修复频率（即任何数据集中的最高频率）来订购（在X轴上）。每个站点，通过增加每个数据集的维修频率（前后；即未堆叠栏）来排序条。底部水平条表示先前的（缺乏）注释作为顶部位点。（d）一个代表性核的共聚焦图像显示DAPI，RAD51 DAMID M6 A-TRACER和内源性γH2AX免疫荧光染色。（e）信号共定位（Manders的A和B每个核）的定量，n = 33核。
全基因组的DNA修复蛋白分析鉴定单细胞中的高阶配位
a，实验设置和集成的概述。b，染色体1p上的信号。左：在 +DSB条件下的单细胞热图（RPKM），其顶部为 +DSB（有色）和–DSB（灰色）条件的单细胞聚集体。右：带有覆盖MSR调用的单细胞线图。asisi图案，用黑线注释，红色三角形表示经常裂解（或“顶部”）位点。c，所有ASISI位点的条形图≥10％，每个位点的修复蛋白频率（靶蛋白和方法）都有颜色。通过增加绝对修复蛋白频率（即，任何数据集中的最高频率）。每个站点，通过增加每个数据集的修复蛋白频率（即前后；即未堆叠）来排序条。底部水平条表示先前的（缺乏）注释作为顶部位点。d，一个代表性核的共聚焦图像，显示DAPI，RAD51 DAMID M6A-Tracer和内源性γH2AX免疫荧光染色。e，信号共定位的定量（manders的a和a和b每个核），n = 33核。
全基因组的DNA修复蛋白分析鉴定单细胞中的高阶配位
a，实验设置和集成的概述。b，染色体1p上的信号。左：在 +DSB条件下的单细胞热图（RPKM），其顶部为 +DSB（有色）和–DSB（灰色）条件的单细胞聚集体。右：带有覆盖MSR调用的单细胞线图。asisi图案，用黑线注释，红色三角形表示经常裂解（或“顶部”）位点。c，所有ASISI位点的条形图≥10％，每个位点的修复蛋白频率（靶蛋白和方法）都有颜色。通过增加绝对修复蛋白频率（即，任何数据集中的最高频率）。每个站点，通过增加每个数据集的修复蛋白频率（即前后；即未堆叠）来排序条。底部水平条表示先前的（缺乏）注释作为顶部位点。d，一个代表性核的共聚焦图像，显示DAPI，RAD51 DAMID M6A-Tracer和内源性γH2AX免疫荧光染色。e，信号共定位的定量（manders的a和a和b每个核），n = 33核。