KAPA3G热门DNA聚合酶是一种茶产生DNA聚合酶,可以显示出一致的结果,并具有浑浊的生产率,而无需进行任何准备和短期反应时间。Roche CustomBiotech通过通过ISO 13485认证的生产设施中的广泛测试生产KAPA3G HOTSTART DNA聚合酶,并且可以伴随客户的需求。很容易冻结冻结期,因此非常适合需要有效或以各种形式设计的额外体外。
•KAPA终端维修和A-tailing(Erat)readymix•KAPA连接redymix•KAPA HIFI HOTSTART READYMIX(2 x)
Catalogue No Description PackSize GEN-TaQ5 GENTaq Taq DNA Polymerase 5U/ul, 500U GEN-RMX-50 GenKit RT-PCR Master Mix kit for cDNA synthesis 50 RXN GEN-TQMX-100 GenKit qPCR Master Mix Kit with SYBRGREEN and ROX 100RXN GEN-TMXG-100 Green Dye PCR Master Mix 100Rxn GEN-PCR-MM-100 PCR主混合套件(2x)(带有100 bp的DNA梯子),每个Gen-PCR-RMM-5-100红色染料PCR主混合(2x),5x100,每个反应每个反应,每个反应,每个gen-Hottaq-3-1000-A HotStart Taq DNA聚合酶(3 U/µL)每个Gen-HotpCr-MM-1x100 diverist Masterivions diverip Master
对于 HRM 检测,采用补充表 S1 中报告的优化内含子引物。PCR 在 20 μ L 中进行,其中包含 100 ng DNA、0.5 单位 HotStart Taq 聚合酶以及 1x 缓冲液(Qiagen,德国希尔登)、1.5 mM MgCl 2、800 μ M dNTP、300 nM 每种引物和 1x EvaGreen(Idaho Technologies,犹他州盐湖城)作为插入染料。循环和 HRM 分析在 Rotor-Gene ™ 6000 实时分析仪上进行,采用以下热方案:95°C 持续 15 分钟(一个循环);95°C 持续 30 秒,55°C 持续 30 秒,72°C 持续 30 秒(50 个循环);72°C 持续 10 分钟(一个循环);熔化温度从 85°C 升至 95°C,每秒上升 0.1°C。使用相关的 Rotor-Gene ™ 6000 系列软件 (v1.7.87) 分析数据。标准化条在前导范围的 88°C 和 88.5°C 之间,在尾随范围的 92.5°C 和 93°C 之间,置信阈值为 90%:如果 HRM 图超出了指定参考基因型的置信范围,则软件会将样本识别为变异。图 S1A 显示了健康受试者和 3 名 MPN 患者的 DNA 样本的 HRM 图谱,这些样本先前已通过微电子微芯片分析进行了基因分型(未显示数据)。患者 PV02_113 为 MPL (W515K) 纯合子(TGG>AAG 转换),其 HRM 曲线相对于野生型序列向左移向较低温度,这与纯合变体导致熔解温度 (Tm) 降低的预期一致。患者 PV04_494 为 MPL (W515A) 纯合子(TGG>GCG 转换)等位基因
补充材料。材料与方法文库制备和 Miseq (Illumina®) 测序使用文库制备指南 (LPG) ( https://support.illumina.com/downloads/16s_metagenomic_sequencing_library_preparation.html ) 中报告的 Illumina 接头序列和引物悬垂部分(正向和反向)扩增 16S rRNA 基因的 460 bp V3-V4 高变区。使用以下 PCR 反应扩增每个 DNA 样本:2.5 µl 5 ng/ µl DNA、5 µl 引物正向悬垂部分、5 µl 引物反向悬垂部分、12.5 µl 2x KAPA HiFi HotStart ReadyMix (KAPA Biosystems)。使用 LPG 中报告的循环程序。 PCR 产物在 2% 琼脂糖凝胶(GellyPhor LE,Euroclone SPA,意大利米兰)上电泳分离,并用 GelRed™ 核酸凝胶染料(Biotium,美国加利福尼亚州海沃德)染色。通过紫外光透射仪观察预期长度的 PCR 产物的存在。然后,用 NucleoMag 试剂盒纯化 DNA 扩增子以清理和选择 NGS 文库制备反应的大小(Macherey-Nagel),并按照制造商的说明使用 Illumina® DNA/RNA UD Indexes Tagmentation 试剂盒对每个样本进行索引。在验证和定量之前,对文库进行进一步纯化。在 Agilent 4150 TapeStation D1000 ScreenTape 检测仪(安捷伦科技公司)上对文库进行验证,以验证大小,而定量则使用 Qubit 4 荧光计(赛默飞世尔科技,美国)。根据 DNA 扩增子的大小,应用 Illumina LPG 中报告的公式,以 nM 为单位计算最终的 DNA 浓度。最后,将每个文库中的 5 µl 稀释 DNA 等分试样混合,以合并具有唯一索引的文库。在 Miseq 加载之前,根据 Illumina LPG 说明对合并的文库进行变性和稀释。使用 MiSeq Reagent Micro Kit v2(500 个循环)加载合并的文库,运行包括 20% PhiX 作为内部对照。生物信息学分析测序数据包含在包含带有原始读取的 FASTQ 文件的文件夹中(R1 文件包含每个样本的正向读取,R2 文件包含每个样本的反向读取),使用 FastQC(英国剑桥 Babraham Institute)进行质量检查。然后,使用 DADA2 R 包(Callahan 等人,2016 年)处理 R1 和 R2 文件以生成扩增子序列变体 (ASV)(图 1)。最终生成了 ASV 表,总结了每个样本的不同 ASV 的数量。