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在外太空的军备竞赛？
CRISPR – CAS系统需要在适应和干扰过程中歧视自我与非自我DNA。然而，已经报道了含有自动靶向垫片（STS）的细菌的多种情况，即CRISPR垫片针对同一基因组上的蛋白酶。sts被建议将电力自动免疫作为CRISPR-CAS防御的不良副作用或基因表达的调节机制。在这里，我们研究了超过1万个细菌基因组中STS的刺激性，分布和逃避。我们在所有CRISPR- CAS类型中发现了STS，并且在所有携带CRISPR的细菌的五分之一中。值得注意的是，多达40％的I-B和I-F CRISPR - CAS系统包含STS。我们观察到，含有基因组的STS几乎总是带有预言，并且在超过一半的情况下，STS映射到预言区域。尽管携带了STS，但CRISPR-CAS系统的遗传降低似乎很少见，这表明通过其他机制（例如抗crispr蛋白质和CRISPR靶标），STS对STS的潜在有害作用有很高的水平。我们提出了一种场景，在该方案中，可以通过I型系统中的启动间隔者获取启动间隔者的获取，而没有有害的Au-Au-tomunity效应，这可能会触发更广泛的STS堆积，而无需将自动免疫性逃避的机制造成了耐受性，从而耐受了STS的预测耐受性。
使用基于CRISPR的设计器外显子插入
。cc-by 4.0国际许可（未经Peer Review尚未获得认证）是作者/资助者，他已授予Biorxiv的许可证，以永久显示预印本。这是该版本的版权持有人，该版本发布于2020年12月3日。 https://doi.org/10.1101/2020.12.03.409417 doi：Biorxiv Preprint
crispr/cas9介导的基因编辑
简介评论：引言有效地介绍了CRISPR/CAS9系统的历史背景，从而将其从Escherichia Coli的发现成为其作为基因编辑工具的发展。Jennifer Doudna和Emmanuelle Charpentier的贡献得到了充分的详细说明，强调了他们独立的研究工作和最终的合作。CRISPR机制的解释是彻底的，涵盖了关键组成部分，例如Cas9蛋白，引导RNA，tracrrna和crrna。基因编辑过程的分步分解，包括DNA裂解，序列靶向和基因剪接，为理解系统的功能提供了强大的基础。提及PAM序列及其在特异性中的作用可确保在解释目标位点选择方面的清晰度。
基于单细胞打印技术和乳液偶联分析对 CRISPR/Cas9 RANKL 敲除间充质干细胞克隆进行表征，作为单细胞克隆的低细胞工作流程
基因改造单细胞的同质性对于许多应用（例如细胞系开发、基因治疗和组织工程，尤其是再生医学应用）而言是必需的。缺乏有效分离和表征 CRISPR/Cas9 工程细胞的工具被认为是这些应用中的一个重大瓶颈。尤其是蛋白质检测技术不兼容，无法在没有先决条件大规模克隆扩增的情况下确认蛋白质表达变化，这在许多应用中造成了僵局。为了改善工程细胞的表征，我们提出了一种改进的工作流程，包括基于高产量荧光特性的单细胞打印/分离技术、基因组编辑筛选（测量测定）、评估改变的基因表达的 mRNA rtPCR 和一种称为乳化偶联的多功能蛋白质检测工具，以提供高含量、统一的单细胞工作流程。该工作流程以 RANKL 敲除永生化间充质干细胞的工程和功能验证为例，这些细胞的骨形成能力发生了改变。由此产生的工作流程经济实惠，无需大规模克隆扩增细胞，整体克隆效率高于 CRISPR/Cas9 编辑细胞的 30%。尽管如此，由于单细胞克隆在细胞发育的早期高度并行阶段得到全面表征，包括 DNA、RNA 和蛋白质水平，因此该工作流程可提供更多成功编辑的细胞以供进一步表征，从而降低开发过程中后期失败的可能性。
跨发散啮齿动物的基因编辑的AAV-CRISPR/CAS9策略：靶向神经催产素受体作为概念证明。 Boender，A.J。
神经科学的一个主要问题是，研究结果是动物临床前研究到临床结果的不良翻译性。比较神经科学可以通过研究多种物种在神经回路功能的物种特异性和一般机制之间差异来克服这一障碍。针对性的神经回路的操纵通常取决于遗传解剖，并且该技术的使用仅限于几种模型物种，从而限制了其在比较研究中的应用。然而，基因组学的持续进展使得在越来越多的物种中可以实现遗传解剖。为了证明比较基因编辑方法的潜力，我们开发了一种病毒介导的CRISPR/CAS9策略，该策略预测靶向> 80种啮齿动物物种中的催产素受体（OXTR）基因。该策略专门降低了所有评估物种（n = 6）的OXTR水平，而不会引起总体神经元毒性。因此，我们表明基于CRISPR/CAS9的工具可以同时在多种物种中起作用。因此，我们希望鼓励比较基因编辑并改善神经科学研究的转化性。
产品表HK-Crispr-Nup188-MEGFP Cellen | 300657 产品表CélulasHCC78 | 302156 产品表CélulasNeuro-2a | 400394 产品表CélulasT406 | 300361 产品表CélulasNIH-3T3-RAS | 400100 产品表Cellule U2OS-CRISPR-NUP96-HALO | 300448 产品表Komórkiu2os-crispr-nup96-snap 产品表célulasasb-xiv | 400120 产品表HK-Crispr-CAP-H-MEGFP细胞| 301568
亚培养从粘附细胞中去除旧培养基，并用无钙和镁的PBS洗涤它们。使用3-5毫升PBS进行T25瓶，T75瓶子使用5-10毫升。然后用电池完全覆盖电池，用1-2 mL盖住T25瓶，T75瓶的2.5毫升。让细胞在室温下产生8-10分钟，以松开它们。孵育后，将细胞与10 ml培养基仔细混合，以重悬于它们，然后以300xg离心3分钟。扔掉上清液，将细胞重悬于新鲜培养基中，然后将其转移到已经包含新鲜培养基的新瓶中。
CRISPR/CAS9介导的ALS/FTD的切除 - 引起C9orf72中六核苷酸重复扩张，从而在体内营救了主要的疾病机制和体外
C9ORF72基因中的GGGGCC 24+六核苷酸重复膨胀（HRE）是肌萎缩性侧向硬化症（ALS）和额颞痴呆（FTD）最常见的遗传学原因（ALS），致命的神经退行性疾病，没有治疗或不接受疾病的疾病疾病的疾病降低或不得已。神经元死亡的机械基础包括C9orf72单倍依耐酸，核中RNA结合蛋白的隔离以及二肽重复蛋白的产生。在这里，我们使用了腺相关的病毒载体系统来提供CRISPR/CAS9基因编辑机构，以实现从C9ORF72基因组基因座中移除HRE。我们证明了三种含有膨胀的小鼠模型（500 - 600重复）以及患者来源的IPSC运动神经元和脑类动物（450重复）的三种小鼠模型（450个重复）中HRE的成功切除。这导致了RNA焦点，多二肽和单倍耐酸的降低，这是C9-ALS/FTD的主要标志，这使得这是这些疾病的有前途的治疗方法。
![事实文字。生物技术 - 企业技术。 [骑。 4-6]](/simg/8/87bb101bb7afdbc5cd1a0024163b13a385a4d111.webp)
事实文字。生物技术 - 企业技术。 [骑。 4-6]
crispr是生物技术中的开创性技术，它改变了我们看待基因编辑的方式。通过实现DNA的精确变化，CRISPR可以为新疗法打开门，改善农作物等等。同时，管理道德和安全挑战以确保对技术的负责任使用。
产品表Cellule U2OS-CRISPR-NUP96-HALO | 300448产品表Komórkiu2os-crispr-nup96-snap产品表célulasasb-xiv | 400120产品表HK-Crispr-CAP-H-MEGFP细胞| 301568
HK-CRISPR-CAP-H-MEGFP细胞系是一种为晚期基因编辑和荧光应用而设计的人类衍生模型。该细胞系基于亲本人类细胞系，并已使用CRISPR-CAS9技术进行了修改，以表达用单体增强的绿色荧光蛋白（MEGFP）标记的CAP-H（染色体相关蛋白H）基因。这种修饰允许CAP-H的精确可视化和跟踪，CAP-H是冷凝蛋白复合物的组成部分，对于细胞分裂期间的染色体凝结和稳定至关重要。MEGFP标签提供了强烈而稳定的荧光信号，这使该细胞系非常适合活细胞成像和基于荧光的测定。