并去除mRNA甲基化[9]。作者促进了M 6 A甲基化,并包括M 6 A甲基甲基甲基甲基化,Mettl3,Mettl5,Mettl14和其他亚基。橡皮擦是脱甲基酶,包括烷基化修复同源蛋白5(ALKBH5)和FTO。读者重新获得M 6 a-甲基化转录本,包括YTHDF1,YTHDF2和YTHDF3。这些调节蛋白通常在人类癌症中失调,并通过调节下游靶标和信号来促进或抑制癌症发展时发挥重要的功能[10]。Accu Multing研究工作已经证实,M 6修改可以通过CIRCRNA调节癌症的发展。例如,M 6 A介导的电路MDK的过表达促进了肝素癌癌的细胞增殖和侵袭[11]。ALKBH5介导的m 6循环CCDC134的修饰通过增强HIF1A转录加速了宫颈中的转移[12]。尽管如此,M 6的功能A的EC修饰及其对CIRCRNA的潜在调节机制尚不清楚。
缩写:AAC:腹主动脉肿块; CVB3:Coxsackie病毒B3; CYLD:囊肿症; DCM:扩张的心肌病; DM:糖尿病; DUSP1:双重特异性磷酸酶1; EGFR:表皮生长因子受体; ER:内质网; FSTL1:卵泡样蛋白1; GPX4:谷胱甘肽过氧化物酶4; HAUSP:疱疹病毒相关的泛素特异性蛋白酶; HIF-1α:低氧诱导因子-1α; I/R:缺血再灌注; JAMMS:JAB1/MPN/MOV34金属蛋白酶; KDM3A:赖氨酸特异性脱甲基酶3a; mettl3:类似甲基转移酶的3; MI:心肌梗塞; MIDYS:MIDYS家庭主题与含有新颖的配音家庭的泛素互动; MJD:Machado Joseph病蛋白; NAD +:烟酰胺腺嘌呤二核苷酸; OTU:卵巢肿瘤相关的蛋白酶;耳鼻蛋白:具有线性链接特异性的OTU去泛素酶; PAC:肺动脉连接; RHD:风湿性心脏病; RVH:右心肥大; SERCA2A:SARCO/内质网Ca2 + -ATPase; sirt:sirtuin; Slim1:骨骼肌lim蛋白1; STAT3:转录3的信号换能器和激活因子; T2DM:type2糖尿病; TAC:跨动脉缩空; TAK1:转化生长因子激活的激酶1; UCHS:泛素C末端水解酶; USP:泛素特异性蛋白酶; YB-1:Y-box结合蛋白-1。
摘要:水产养殖为世界食品市场提供了大量有价值的蛋白质。利用基因组编辑方法可以获得高产的水产养殖鱼类,主要问题是选择目标基因以获得理想的表型。本文综述了五种主要水产养殖鲑科和鲤科物种,例如虹鳟鱼 ( Onchorhynchus mykiss )、大西洋鲑鱼 ( Salmo salar )、鲤鱼 ( Cyprinus carpio )、金鱼 ( Carassius auratus )、银鲫 ( Carassius gibelio ) 和模型鱼斑马鱼 ( Danio rerio ) ,对控制身体发育、生长、色素沉着和性别决定的基因进行基因组编辑的研究。在研究的基因中,最适合水产养殖的是 mstnba 、 pomc 和 acvr2 ,敲除这些基因可增强肌肉生长;runx2b ,其突变体不会在肌隔中形成骨骼; lepr ,其功能缺失使鱼生长迅速; fads2 、 ∆ 6abc/5Mt 和 ∆ 6bcMt ,影响鱼肉中脂肪酸的组成; dnd mettl3 和 wnt4a ,其突变体不育;以及疾病易感基因 prmt7 、 gab3 、 gcJAM-A 和 cxcr3.2 。获得仅由大型雌性组成的鲤鱼种群的方案有望用于水产养殖。固定化和未着色的斑马鱼系对实验室用途很有吸引力。
引言:克唑替尼是一种靶向c-MET/ALK/ROS1的激酶抑制剂,是治疗ALK突变非小细胞肺癌(NSCLC)的一线药物。尽管35-72%的NSCLC中c-MET经常过表达,但大多数NSCLC主要对克唑替尼治疗有耐药性。方法:使用一组NSCLC细胞系在体外和体内测试西达本胺对原发性克唑替尼耐药的影响。通过一系列分子生物学检测系统地研究了西达本胺的协同作用与c-MET表达和RNA甲基化之间的关系。结果:我们首次发现西达本胺可以在一组无ALK突变的NSCLC细胞系中增强克唑替尼的作用,尤其是那些c-MET表达水平高的细胞系。值得注意的是,在不含肝细胞生长因子 (HGF;一种 c-MET 配体) 的无血清培养基中培养的 NSCLC 细胞对克唑替尼的敏感性,西达本胺无法增加该细胞对克唑替尼的敏感性。相反,在无血清/无 HGF 的培养基中添加 HGF 可以恢复西达本胺的协同作用。此外,用 c-MET 抗体治疗或 siRNA 敲低 c-MET 表达也可以消除西达本胺的协同作用。虽然 c-MET 表达低或无表达的细胞主要对西达本胺-克唑替尼联合治疗具有抗性,但强制 c-MET 过表达可以增加这些细胞对西达本胺-克唑替尼联合治疗的敏感性。此外,西达本胺可以通过下调 METTL3 和 WTAP 表达来抑制 mRNA N6-甲基腺苷 (m6A) 修饰,从而降低 c-MET 表达。西达本胺联合克唑替尼治疗可显著抑制c-MET下游分子的活性。结论:西达本胺通过降低c-MET mRNA的m6A甲基化水平,下调c-MET的表达,从而以c-MET/HGF依赖的方式增加NSCLC细胞对克唑替尼的敏感性。
前列腺癌 (PCa) 是男性中第二常见的癌症。虽然根治性前列腺切除术和放射疗法通常可以成功治疗局部疾病,但治疗后复发很常见。由于雄激素受体 (AR) 和雄激素在前列腺癌变和进展中起着至关重要的作用,因此雄激素剥夺疗法 (ADT) 通常用于剥夺 PCa 细胞的雄激素促增殖作用。ADT 通过阻断雄激素生物合成(例如阿比特龙)或阻断 AR 功能(例如比卡鲁胺、恩杂鲁胺、阿帕鲁胺、达洛他胺)起作用。ADT 通常在最初抑制 PCa 生长和进展方面有效,但 ADT 后出现去势抵抗性 PCa 和进展为神经内分泌样 PCa 是主要的临床挑战。因此,迫切需要找到调节雄激素信号的新方法,以阻止 PCa 进展,同时防止或延迟治疗抵抗。雄激素和表观转录组信号传导的机制融合为治疗 PCa 提供了一种潜在的新方法。表观转录组涉及 mRNA 的共价修饰,特别是在本综述中提到的 N(6)-甲基腺苷 (m 6 A) 修饰。m 6 A 参与调节 mRNA 剪接、稳定性和翻译,最近已被证明在 PCa 和雄激素信号传导中发挥作用。m 6 A 修饰受含 METTL3 的甲基转移酶复合物以及 FTO 和 ALKBH5 RNA 去甲基化酶的动态调节。鉴于需要新的方法来治疗 PCa,人们对针对调节 AR 表达和雄激素信号传导的 m 6 A 的新疗法产生了浓厚的兴趣。本综述严格总结了此类表观转录组疗法对 PCa 患者的潜在益处。
N6-甲基腺苷(m6A)是高等生物中最常见的修饰,研究表明m6A修饰广泛存在于哺乳动物、植物、真菌等生物体中(1),m6A修饰主要发生在DRACH序列的腺嘌呤上(2,3),高通量测序发现m6A主要分布在终止密码子、mRNA外显子、3'UTR及蛋白质编码区(4)。RNA的生物学功能依赖于多种修饰,其中甲基化占有很大比例(5,6)。m6A修饰在基因表达调控中起着基础性作用(7),同时m6A修饰还参与RNA的翻译、降解、剪接、去核和折叠等过程(5,8,9)。m6A的调控主要依赖于m6A的酶系统,包括“Writer”、“Eraser”、“Reader”。 “Writer”是一种甲基转移酶,主要包括METTL3、METTL14和WTAP,这些甲基转移酶将甲基从甲基供体S-腺苷甲硫氨酸(SAM)转移到RNA腺嘌呤的第六个N原子上。“Eraser”是一种去甲基化酶,主要包括脂肪质量与肥胖相关蛋白(FTO)和ALKBH5。FTO是第一个在m6A修饰中发现的去甲基化酶(9,10)。研究发现,用siRNA敲除FTO,mRNA中M6A含量增加,而过表达FTO则可降低细胞内m6A水平(11)。但也有学者认为FTO对m6A无明显影响,尤其是对核小RNA。相对于FTO作为去甲基化酶发挥作用的观点,有学者认为FTO和ALKBH5的调控位点为了逆转甲基化,倾向于维持非甲基化状态的稳定性(12)。在FTO被抑制或去除的情况下,异常的m6Am会干扰输出机制,可能导致mRNA的异常预剪接(13)。结合以上观点,FTO与m6A酶系统中其他蛋白的作用需要更加平衡和充分的研究。甲基化修饰要实现其生物学功能,需要与相应的识别蛋白结合,也就是“Reader”,包括YT521-B同源结构域家族(YTHDF)蛋白(14)。目前的研究更多集中在YTHDF1/2/3上,虽然这三者被认为具有不同的作用,但由于其序列的相似性和结合靶标的趋同,它们很可能具有叠加或协同作用(15)。根据目前的结果,Reader 包括 YTHDF 和 IGF2BP3 等蛋白质,
