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RNA 转录和修饰
启动子因它“促进”基因表达而得名。该碱基序列控制转录起始的准确位置。大部分启动子位于基因转录实际开始位点的正前方或上游。按照惯例，启动子序列中的碱基是相对于转录起始位点进行编号的。此位点是用作转录模板的第一个碱基，记为 +1。此位点之前的碱基按负方向编号。没有碱基被编号为零。因此，大部分启动子都用负数标记，以描述转录开始前的碱基数。启动子序列内有两个重要序列，位于大约 −35 和 −10 位点。−35 位点顶部 DNA 链中的序列为 5′–TTGACA–3′，−10 位点的序列为 5′–TATAAT–3′。 TATAAT 序列以 1975 年首次发现该序列的 David Pribnow 的名字命名为 Pribnow 盒。
病毒RNA的功能
病毒 RNA 分子含有多层调控信息。这包括一级序列以外的特征，例如 RNA 结构和 RNA 修饰，包括 N6-甲基腺苷 (m 6 A)。许多近期研究已确定病毒 RNA 中 m 6 A 的存在和位置，并发现这种修饰在病毒感染过程中具有多种调控作用。然而，迄今为止，病毒 m 6 A 映射策略存在局限性，阻碍了对 m 6 A 对单个病毒 RNA 分子功能的全面了解。虽然已在许多病毒的大量 RNA 上分析了 m 6 A 位点，但迄今为止描述的病毒 RNA 的 m 6 A 图谱呈现了受感染细胞中病毒 RNA 分子中 m 6 A 的综合图像。因此，对于大多数病毒而言，尚不清楚在整个感染过程中是否存在独特的病毒 m6A 谱，也不清楚它们是否调节特定的病毒生命周期阶段。在这里，我们描述了定义 m6A 在病毒 RNA 分子中的功能的几个挑战，并为未来的研究提供了一个框架，以帮助理解 m6A 如何调节病毒感染。
第 2 部分：RNA 处理
现在，您一定已经熟悉了真核生物的蛋白质编码基因指导相应 RNA 分子合成的过程。这个过程称为转录，发生在原核生物和真核生物中。原核生物中的过程更简单。原核生物只有一种 RNA 聚合酶，负责合成 mRNA 以及所有其他类型的 RNA 分子。此外，刚刚合成的 mRNA 能够指导蛋白质合成，因为细菌 mRNA 不需要进一步处理即可翻译。另一方面，真核生物有三种不同类型的 RNA 聚合酶，真核 mRNA 的合成由 RNA 聚合酶 II 催化，使用 dsDNA 的一条链作为模板。这个过程发生在细胞核中，由此产生的 RNA 分子被称为 hnRNA（异质核 RNA），因为它们
mRNA疫苗感应的SARS-COV-2 的免疫力的纵向监测
在60多年前提出了分子生物学的中心教条时，mRNA被假定为瞬态信使或不稳定的中间体，并将核糖体提供信息以供蛋白质合成（Brenner等，1961; Crick，1958; Gros et al。，1961）。随着对基因表达的研究，转录后调节的重要性，RNA世界的证据和RNA的中心性得到了极大的认识（Gilbert，1986; Sharp，2009）。因此，对RNA代谢的机械理解提供了有关基于RNA的技术和治疗学的新见解（Damase等，2021）。特定基因由CRISPR-CAS基因组编辑平台中的指导RNA（GRNA）靶向，而mRNA表达则由反义寡核苷酸（ASOS）和RNA干扰（RNAI）技术调节。这些功能丧失方法是针对疾病中致病基因表达的，并且正在演变为有前途的治疗剂。同样，功能获取的方法已成为一种有吸引力的治疗性，这是通过在2019年冠状病毒病（COVID-19）大流行期间引入的有效mRNA疫苗技术的明显说明的。在有关“生物学和治疗学的RNA”的特刊中，我们描述了RNA生物学的基本概念如何转化为新型治疗学（图1）。在第一篇文章中，达娜·卡罗尔（Dana Carroll）（犹他大学）回顾了CRISPR-CAS基因组编辑平台的一般原则以及基础编辑技术的最新进展。CRISPR-CAS技术的临床应用得到了很好的总结，还讨论了基于CRISPR的疗法的其他问题；后者中的一些也可能适用于其他基于RNA的治疗应用。
FlashRNA® 用于 RNA 治疗
- 淋巴回流受损和四肢肿胀 - 未排出的间质液/淋巴液积聚。它可能发生在癌症手术和淋巴结切除后。事实上，10-15% 的女性在乳腺癌康复后会出现手臂继发性淋巴水肿。淋巴水肿没有治愈方法。Theralymph 临床计划的主要目标是建立一种针对继发性淋巴水肿的多基因疗法，基于两种因子的瞬时表达，允许恢复正常的淋巴功能。FlashRNA ® 将用于通过皮内注射递送两种治疗性 RNA。
RNA COVID-19疫苗
接种疫苗后的症状 一些症状可能是由疫苗引起的（例如注射部位疼痛）。其他问题可能偶然发生，与疫苗无关（例如感冒、胃痛）。大多数反应是无害的，不会持续很长时间。儿童和 55 岁及以上的人群中反应较少。这些反应更常发生在第二剂后。
出版物
2019 1。Cunningham-Bryant，D.，Sun，J.，Fernandez，B。和Zalatan，J.G。CRISPR-CAS介导的酵母转录动力学的化学控制。Chembiochem。6月14日； 20（12）：1519–1523。应用：使用GRNA与MS2结构域的诱导CRISPRA募集包含融合到诱导型激活剂和DCAS9的MS2外套蛋白的复合物。2。Taghbalout，A。等。通过Casilio-Me介导的RNA引导的甲基胞苷氧化和DNA修复途径的RNA引导的偶联增强了基于CRISPR的DNA去甲基化。自然通讯。10（4296）。doi.org/10.1038/S41467-019-12339-7应用：使用具有MS2结构域的GRNA，DCAS9，DCAS9和MS2涂层蛋白融合到DNA脱甲基化结构域。3。Tran，N.T。等。通过Cas9与同源重组因子的关联增强精确基因编辑。遗传学的前沿。10（365）。doi：10.3389/fgene.2019.00365应用：使用具有MS2域的GRNA以及Cas9和MS2涂层蛋白融合到同源性修复（HDR）的增强子。