已经开发了无细胞的DNA筛选分析,用于将CFDNA样品从50 bp到800 bp进行分离和分析,包括检测高分子量(HMW)DNA污染。cfDNA样品质量控制从来都不是那么容易 - 只需将贴皮系统加载到无单元的DNA屏幕截图设备,加载尖端和样品中的管条或96孔板中,然后每样品少于2分钟获得结果。
生物学资格结果,以评估NGS星MOA上QIASEQ靶向DNA Pro面板方法的生物学性能,使用带有4110引物的自定义面板执行了96个人类基因组DNA样品的库制备。作为输入DNA,使用了五个不同的基因型,每个基因型都使用了两个不同的输入量(10 ng和40 ng)(请参阅应用注释末尾的方法要求)。使用8个PCR循环进行了运行,以实现靶富集,并为25个PCR循环进行通用PCR。DNA浓度和总产率,该运行具有Quant-IT 1X DSDNA HS HS分析套件。使用具有高敏感性D5000试剂的高敏性D5000屏幕截图,用Agilent Tapestation 4150对图书馆DNA的尺寸分布进行了MEA(表1)。
图 4. Charles River Laboratories 共享了小鼠模型患者来源的异种移植瘤 (PDX) 的 FFPE 卷轴。来自 2 名患者样本的 PDX 肿瘤被嵌入 1 至 7 年的石蜡块中。使用 Qiagen AllPrep DNA/RNA FFPE 试剂盒从核材料中提取 gDNA,并通过 Agilent TapeStation 评估 DNA 完整性评分 (DIN)。K562 对照 A (未固定) gDNA 由 Qiagen AllPrep DNA/RNA FFPE 试剂盒提取,K562 对照 B (未固定) gDNA 由 Zymo Quick-DNA/RNA 纯化试剂盒提取,以提供来自 2 个 DNA 提取试剂盒的高质量样本示例。顶部代表性图像:明场碎片。底部代表性图像核标记:碘化丙啶。
7。样品冷却至4°C后,停止程序。在板旋转器中离心板,以在井中收集冷凝器,然后将板放在冰上。继续进行第2节,或在≤-20°C下存放板以供以后使用。如果没有板振动器,则可以将1个PCR反应混合在一起。2建议实时热环体,因为它可以启用所有井的库库,如附录A所示。如果不需要定量,则可以使用非定量系统。3如果未使用实时PCR,放大后进行了几个样品以及阳性对照的PCR清理。对Tapestation®进行分析以确认正确的扩增子大小(〜606 bp)。4 PCR程序用于42个周期,因此从阴性对照中看到一些扩增是正常的。负面对照应与其他样品一起测序。如果适合您的项目,则可以从分析中减去负面控制的分类单元。
库由(a)10 ng和(b)200 ng的人gdna(Na19240)用6个PCR循环稀释为1:3,并在挂接的HSD1000屏幕截图上运行。图4.1.b显示了在晚期PCR周期下200 ng样品的非线性扩增阶段导致的上部标记上方的峰(由红色箭头指示)。尽管在非线性扩增阶段产生的分子是可行的,但它们在屏幕映射上的迁移速度的不同迁移速度会导致文库浓度的定量不准确。在这种情况下,我们建议使用400 bp或预期的库大小来测量纳米体或疯子上的库浓度,以将浓度值转换为纳米尔。以下方程可用于将浓度从ng/μl转换为nm:[(ng/μl中的库浓度)/(bp中的660 g/mol x库尺寸)] x 10 6 = nm中的浓度。
•使用1 O.D的惯例使用A260处的分光光度吸光度来确定DNA浓度。相当于50 µg/ml的双链DNA或量子dsDNA BR分析,这是一种基于染料的荧光方法,具体取决于存储库。有关特定信息,请参见#9。示例至少读取两次以验证阅读。仪器每季度进行测试,并根据需要进行校准。•为了评估DNA完整性,通过安装贴纸评估DNA。挂接软件确定DNA完整性数(DIN)作为GDNA完整性的度量。(注意:所有存储库都不执行。)•使用6个常染色体微卫星标记的多重PCR分析确认DNA样品身份。性别是在同一反应中使用额外的底漆对确定的,该对X和Y-染色体蛋白基因基因之间的等位基因差异区域。此测定的细节及其在质量控制过程中的重要性将在下面讨论。此测定法提供了几个质量控制参数,如下:
碎裂后,将DNA末端修饰以进行下游目标富集,包括最终修复,A尾和适配器连接。修改步骤后,使用Ampure XP珠纯化扩增的DNA样品。用4200贴抽系统和D1000筛选分析确定纯化DNA的尺寸和浓度(图5)。根据30μl的可用体积计算总DNA量。根据Agilent低输入SURESELECT XT人类所有外显子V5方案¹,库应具有225至275 bp的峰值大小。只有两个样品略低于建议的225 bp。以下部分中的杂交协议需要每个扩增的DNA库的750 ng。两个DNA样品略低于建议的总DNA量(图5)。三个样本没有根据大小或定量来满足QC标准,而是通过工作流程处理的,因为自动库的准备不允许排除单个样本。
DNA,并使用贴纸确定DIN评分。使用XGEN CFDNA和FFPE DNA库Prep V2 MC Kit从DNA的25 ng输入中制备示例库,并带有UG库放大套件和自定义IDT索引引物等效于XGEN索引引物,以实现Ultima P1。在图1中,挂毯痕迹(安捷伦)显示了从低质量的FFPE样品中生成的PCR放大库。即使在DIN得分低的情况下也产生了质量库,而没有任何适配器二聚体的证据。表2显示了从UG 100序列上的12 XGEN CFDNA和FFPE库中获得的质量测序指标。图书馆的读取与参考基因组有很高的读数,并且在DIN水平不同的样品中的结果一致。数据显示较低的Indel,不匹配和嵌合体速率以及Q20高的Q20,表明在UG 100系统上生成了质量测序读数。表表示三个重复的平均值。
细菌学实验室分子生物学实验室已配备了用于标准PCR和实时PCR的热循环器。设备还包括Illumina ISEQ 100,值,线探针测定,GenExpert,琼脂糖凝胶电泳,跨粉碎机,冷却的离心机和生物安全罩。我们的敏捷贴纸提供了传统凝胶电泳的自动替代品,使研究人员能够分析仅来自少数几微升的DNA或RNA样品的数量和大小和大小。该中心的几个冰期设置为-20 O C,-80 O C,-150 O C,-150 O C,-150 O C,-150 O C,-150 O C,一个冷房间设置为4-8 0 C以用于样品存储。液氮可用于研究。我们新建的昆虫学实验室具有寄生虫文化的能力。我们新建的最新爆发准备块具有处理新疾病爆发所需的所有设施。诸如生物安全3级实验室(BSL-3),生物安全2级实验室,分子生物学,测序,生物信息学,电信,科学家的会议室和办公室等设施。安装的太阳系为BSL-3实验室的连续电力提供了保证。
补充材料。材料与方法文库制备和 Miseq (Illumina®) 测序使用文库制备指南 (LPG) ( https://support.illumina.com/downloads/16s_metagenomic_sequencing_library_preparation.html ) 中报告的 Illumina 接头序列和引物悬垂部分(正向和反向)扩增 16S rRNA 基因的 460 bp V3-V4 高变区。使用以下 PCR 反应扩增每个 DNA 样本:2.5 µl 5 ng/ µl DNA、5 µl 引物正向悬垂部分、5 µl 引物反向悬垂部分、12.5 µl 2x KAPA HiFi HotStart ReadyMix (KAPA Biosystems)。使用 LPG 中报告的循环程序。 PCR 产物在 2% 琼脂糖凝胶(GellyPhor LE,Euroclone SPA,意大利米兰)上电泳分离,并用 GelRed™ 核酸凝胶染料(Biotium,美国加利福尼亚州海沃德)染色。通过紫外光透射仪观察预期长度的 PCR 产物的存在。然后,用 NucleoMag 试剂盒纯化 DNA 扩增子以清理和选择 NGS 文库制备反应的大小(Macherey-Nagel),并按照制造商的说明使用 Illumina® DNA/RNA UD Indexes Tagmentation 试剂盒对每个样本进行索引。在验证和定量之前,对文库进行进一步纯化。在 Agilent 4150 TapeStation D1000 ScreenTape 检测仪(安捷伦科技公司)上对文库进行验证,以验证大小,而定量则使用 Qubit 4 荧光计(赛默飞世尔科技,美国)。根据 DNA 扩增子的大小,应用 Illumina LPG 中报告的公式,以 nM 为单位计算最终的 DNA 浓度。最后,将每个文库中的 5 µl 稀释 DNA 等分试样混合,以合并具有唯一索引的文库。在 Miseq 加载之前,根据 Illumina LPG 说明对合并的文库进行变性和稀释。使用 MiSeq Reagent Micro Kit v2(500 个循环)加载合并的文库,运行包括 20% PhiX 作为内部对照。生物信息学分析测序数据包含在包含带有原始读取的 FASTQ 文件的文件夹中(R1 文件包含每个样本的正向读取,R2 文件包含每个样本的反向读取),使用 FastQC(英国剑桥 Babraham Institute)进行质量检查。然后,使用 DADA2 R 包(Callahan 等人,2016 年)处理 R1 和 R2 文件以生成扩增子序列变体 (ASV)(图 1)。最终生成了 ASV 表,总结了每个样本的不同 ASV 的数量。
