这项研究旨在通过化学和感觉评估来表征Zelen(Vitis Vinifera L.)葡萄酒的芳香独特性,这是一种来自斯洛文尼亚西部的Vipava山谷的自多品种。通过HS-SPME-GC-MS分析了七十种芳香族化合物,包括品种硫醇,酯,C6-醇,挥发性苯酚,萜类化合物,萜类化合物和丙烯酸酯,在两个调查中,通过HS-SPME-GC-MS进行了比较,将Zelen Wines与Vipava Valley的其他四种种植者进行了比较。Zelen葡萄酒的嗅觉空间是通过将其芳香剖面与Pinela葡萄酒的芳香剖面在分类任务中进行比较,并通过HPLC分数获得的芳香族馏分的嗅探。Zelen葡萄酒的特征是干草药和辣味,例如百里香,迷迭香和罗勒,与Pinela Wines相比。Zelen葡萄酒的化学特征是由单烯烯的原始混合物(包括萜烯异构体,林烯,limonene,p-甲苯,萜酚,linalool,linalool和α-耐酚)的原始混合物所支配的。获得的4-乙烯基鸟醇和甲基水杨酸酯的浓度位于与报道的嗅觉阈值接近或更高的水平上,从而推断了这些化合物对Zelen葡萄酒的辛辣芳香族成分的潜在贡献。通过HPLC半生育分级溶解的Zelen葡萄酒的两种芳族馏分,并通过HS-SPME-GC-MS进行了进一步分析,并通过HS-SPME-GC-MS进行了浏览的存在,这些原始混合物的存在是水合碳单位烯的原始混合物,包括定量测量的化合物,以及其他β-Myrc-β-Myrc,例如β-Myrc,以及其他化合物,以及其他化合物。 E-β-乙烯,Z-β-乙二烯和两个2,4,6-二十二烯-2,6-二甲基异构体。半定量测量结果表明,这组新的单甲烯类也比Pinela,Malvasia Istriana,Chardonnay和Sauvignon Blanc葡萄酒更高。
欧洲绿色协议旨在减少农药的使用,特别是开发生物防治产品以保护农作物免受疾病的影响。的确,使用显着量的化学物质对环境产生负面影响,例如土壤微生物生物多样性或地下水质量以及人类健康。葡萄藤(Vitis Vinifera)被选为第一个目标作物之一,因为其经济重要性及其对杀菌剂的依赖,以控制全球主要的破坏性疾病:灰色霉菌,柔软和白粉病。壳聚糖是一种从甲壳类外骨骼中提取的生物聚合物,在包括葡萄藤在内的许多植物物种中已被用作生物防治剂,以针对多种隐脂性疾病,例如唐尼霉菌(plasmopara viticola),粉状降落(elysiphe necator)和灰色霉菌(bilyea)和灰色霉菌(Brighodis)(byeaea)。但是,其作用方式的确切分子机制尚不清楚:它是直接的生物农药效应还是间接启发活性,还是两者兼而有之?在这项研究中,我们研究了六个具有不同程度的聚合(DP)(DP)的壳聚糖,范围从低到高DP(12、25、33、44、100和470)。我们通过评估其抗真菌特性及其诱导葡萄藤免疫反应的能力来仔细检查其生物学活性。为了研究其启发性活性,我们分析了它们诱导MAPK磷酸化的能力,防御基因的激活和葡萄藤中代谢物变化的能力。我们的结果表明,DP较低的壳聚糖在诱导葡萄的防御能力方面更有效,并且具有针对灰果芽孢杆菌和viticola的最强生物农药作用。我们用DP12将壳聚糖识别为最有效的抗性诱导剂。然后,在过去三年中进行的葡萄园试验中,壳聚糖DP12已针对柔软和白粉病进行了测试。获得的结果表明,当病原体接种量很低时,基于壳聚糖的生物防治产物可能会有效地有效,并且只能与两个
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从无DNA编辑的葡萄藤原生质体中的植物再生Simone scintilla 1*,Umberto salvagnin 1,Lisa Giacomelli 2,Tieme Zeilmaker 2,Mickael A. Mickael A. Malnoy A. Malnoy 1,Jeroen Rouppe Van der Voort 2,Claudio Moser 1。1果实作物,研究与创新中心的基因组学和生物学系,E. Mach 1,I-38010,San Michele A/Adige(TN)意大利; 2 Enza Zaden,Haling 1-E,1602 dB,Enkhuizen,荷兰。*通讯作者:Simone Scintilla博士(Simone.scintilla@unitn.it)。抽象的CRISPR-CAS技术已广泛扩展了植物育种中基因组编辑的应用领域,从而使遗传库中可能的特定和最小突变。关于标准基因组编辑技术,可以以核糖核蛋白(RNP)的形式引入CRISPR-CAS机械,从而避免将外源性DNA引入细胞中。对将无DNA递送到植物细胞中应用中的兴趣不断增加,尤其是在有价值的木本植物精英品种的情况下,CRISPR-CAS9技术将保留其基因型,同时仍导致靶向遗传修饰。通过确保CRISPR-CAS DNA-RNP作为RNP的无效递送,并且由于单个编辑的单元将不存在嵌合体,因此,使用CRISPR-CAS DNA-无需递送,非常适合新育种技术的需求。然而,通常通过低编辑效率和不成功的再生过程来阻碍木质植物中原生质体的细胞培养。深红色的L.胚胎愈伤组织。此策略符合无DNA策略要求。我们在这里描述了一种成功的无DNA方法,以获得完全编辑的葡萄植物,该方法是从V. vinifera cv获得的原生质体中再生的。在浓霉敏感性基因VVDMR6-2上编辑了转染的原生质体。再生的编辑植物表现出1bp或2bp的纯合缺失,以及1BP的纯合插入。引言基因组编辑技术允许以高度精确度修改细胞DNA。尤其是随着CRISPR-CAS9的出现(群集定期间隔短的短质重复 - CAS9)技术,基因组编辑的应用领域已被广泛扩展。该系统基于通过互补的RNA序列和CAS核酸酶介导的DNA双链破裂对DNA编辑位点的识别,这使得插入,缺失,甚至仅仅使一个核苷酸的修饰成为可能。因此,尤其是在木质植物遗传改善的情况下(例如葡萄藤或苹果)精英品种,CRISPR-CAS9技术可确保其基因型保存,同时导致靶向遗传修饰。CRISPR-CAS成分可以以核酸的形式引入细胞内(即DNA/mRNA编码整个系统),或以核糖核蛋白(RNP)复合物的形式进行编码。虽然DNA可以整合到基因组中,而mRNA受其内在不稳定性的影响,但RNP的直接细胞递送打开了有吸引力的场景,因为它有可能体现出强大的方法论,导致特定而最小的突变,而没有外源性DNA的痕迹(Woo等,2015)。从这种角度来看,与经典的转基因生物相比,对植物的应用兴趣可能会更好地接受消费者(Saleh等,2021)。到目前为止,已经提出了三种主要策略将CRISPR-CAS系统输送到植物细胞中。1)使用工程化的农杆菌,可以轻松克服植物细胞壁。然而,该策略采用外源质粒DNA,这些DNA含有农杆菌的DNA部分,在转化后,该策略在细胞DNA中积分为细胞DNA。对于木本植物,外源性DNA只能通过杂交去除,从而导致遗传背景的变化。成功地应用于包括木本植物在内的许多农作物的替代方法,包括T-DNA的分子切除(Dalla Costa等,2020),几乎完全去除外源性DNA。但是,剩余的最小残留外国DNA可能与许多国家的当前严格转基因生物法规不相容。2)粒子轰击使用装有生物材料的纳米颗粒子弹来射击植物组织,从而超过了细胞壁垒,并释放了纳米颗粒装载的生物货物以诱导基因组编辑。尽管如此,各种物理参数严重影响了这种方法的效率。,并非所有细胞都会被子弹击中,因此下游再生过程可能会引起嵌合植物。3)替代解决方案是暂时清除细胞壁,有效地将生物材料递送到单个细胞中。根据此策略,细胞壁是酶法消化的,因此提供了一个“裸”植物细胞(即原生质体)由质膜界定。在有利的条件下,可以通过PEG浸润,电穿孔或LiPofection轻松实现RNP的细胞递送。2-3天后,恢复了细胞壁,进一步的细胞划分