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使用 WUS/BBMand GRF-GIFgenes 的新机会......
摘要 植物转化的广泛应用仍然具有挑战性，因为许多植物物种的植物再生和基于再生的转化效率极低。许多物种和基因型对传统的基于激素的再生系统没有反应。这种再生顽固性阻碍了许多技术在各种植物物种（包括观赏花卉、灌木和树木）中的应用，例如微繁殖、转基因育种和基因编辑。长期以来，人们一直在研究各种发育基因改善植物分生诱导和再生的能力。最近，有研究表明，形态发生调节基因 WUSCHEL 和 BABY BOOM 的组合和精细表达可以减轻它们的多效性并允许顽固性单子叶植物进行转化。此外，单独或与 GRF 相互作用因子 (GIF) 组合异位表达植物生长调节因子 (GRF) 可改善双子叶和单子叶物种的再生和转化。微调这些基因的表达为提高转化效率和促进新育种技术在观赏植物中的应用提供了新的机会。
亮雪干旱：长矛大合奏中的美国西部雪带的未来
美国西部的抽象季节性积雪（WUS）对于满足夏季水文需求，降低野火的强度和频率以及支持雪道经济体至关重要。虽然积雪（SD）的频率和严重程度（即，在持续的全球变暖下都会增加雪的雪带，但内部气候变异性的不确定性仅通过观察结果来量化。使用30人的大型集合，来自现状的全球气候模型，预测和地球系统研究（SPEAR）的无缝系统以及基于观测的数据集，我们发现WUS SD的变化已经很大。到2100年，Spear Project SDS在共享的社会经济途径5-8.5（SSP5-8.5）下的频率近9倍，而SSP2-4.5的频率则高出5倍，而1921- 2011年的平均平均水平则高出5倍。通过研究SD的两个主要驱动因素，温度和降水量的影响，我们发现平均WUS SD会变得更温暖和潮湿。为了评估这些变化如何影响未来的夏季水的可用性，我们跟踪了遍布Wus流域的冬季和春季雪带，发现区域之间“无诺夫”阈值的发作时间和整体内部的较大内部变异性的差异。我们将区域间可变性归因于区域平均冬季温度和区域内变异性的差异，这是不可减至的内部气候变异性，仅由温度变化很好地解释。尽管有强大的场景强迫，但内部气候变异性将继续驱动SD和NO -NOW条件的变化。
从芽型农业菌株中利用发育基因进行利他转化
• LEC 1, 2 – LEAFY COTYLEDON • EBB1 - EARLY BUD BREAK 1 (ESR family) • BBM – BABY BOOM • WOX 5, 11 -- WUSCHEL RELATED HOMEOBOX • IPT – ISOPENTYL TRANSFERASE (cytokinin) – Agrobacterium • Agrobacterium oncogenes • ROL – Hairy root-inducing genes – Agrobacterium • WUS – WUSCHEL • GRF-GIF - 生长调节因子4和GRF相互作用因子1
将能源挑战转变为弹性的未来
世界公用事业峰会（WUS）一直处于赋予公用事业能力以韧性和转变为未来的最前沿。2025年版标志着这次享有声望的峰会的第五次迭代，该峰会将着重于将重塑公用事业行业的尖端技术。在此版本中 - 监管机构，科技公司，顾问，政府官员和公用事业领导者都将在那里分享他们对未来所面临的挑战和机遇的看法。这次聚会为网络，知识共享和合作的机会提供了无与伦比的机会，以塑造公用事业的未来。
将能源挑战转化为弹性未来
世界公用事业峰会 (WUS) 一直处于帮助公用事业以弹性和转型驾驭未来的前沿。2025 年是这一著名峰会的第五次举办，将重点关注重塑公用事业行业的尖端技术。在这一届峰会上，监管机构、科技公司、顾问、政府官员和公用事业领导者都将齐聚一堂，分享他们对未来挑战和机遇的看法。这次聚会为交流、知识共享和合作提供了无与伦比的机会，共同塑造公用事业的未来。
植物基因编辑不再需要组织培养
植物基因编辑可对植物进行有针对性的改造，在作物的基因功能分析和精准育种方面显示出巨大的潜力[1]。要生产基因编辑植物，需要将基因编辑试剂[2]（例如 CRISPR/Cas9 成分）递送到植物细胞中。这涉及一个漫长、昂贵且劳动密集型的组织培养步骤，而且目前仅在有限数量的植物物种中可行，这成为植物基因编辑的主要瓶颈。在最近一期的《自然生物技术》上，由 Daniel F. Voytas 领导的明尼苏达大学研究小组描述了一种生产基因编辑植物的新方法，同时避免了组织培养的需要（图 1）[3]。该方法利用了分生组织的从头诱导。分化的植物细胞通常不能分裂或产生不同类型的细胞。然而，之前的研究表明，通过异位表达特定的发育调节因子，可以诱导已经分化的细胞形成分生组织。分生组织是包含未分化干细胞（分生细胞）的植物组织，这些干细胞能够进行细胞分裂，并能产生各种组织和器官。例如，在拟南芥中，WUSCHEL ( WUS ) 基因在胚胎发生中起着关键作用，过表达 WUS 可以促进营养生长向胚胎生长的转变 [ 4 ] 。SHOOT MERISTEMLESS ( STM ) 和 WUS 的联合异位表达可激活拟南芥中的一组分生组织功能，包括细胞分裂和器官发生 [ 5 ] 。 ipt 基因位于土壤细菌农杆菌的 Ti 质粒上，该基因编码异戊烯基转移酶，这种酶在植物中诱导细胞分裂素的生物合成，从而刺激器官发生[6]。在单子叶植物中，婴儿潮基因（Bbm）和 WUS 基因的过度表达可促进体细胞形成胚胎，从而提高转化效率[7]。Voytas 研究小组假设分生组织可以在发育调节因子的帮助下诱导。为了验证这一想法，使用多种启动子以不同的组合在本氏烟植物中表达了玉米 WUS2、拟南芥 STM、农杆菌 ipt 和其他发育调节因子。农杆菌用于传递转基因，并以荧光素酶作为报告基因。形成了分生组织状结构，这些结构长成具有荧光素酶表达的转基因植物，并且发现该特性是可遗传的。然后，使用相同的方法，将针对两个测试基因的单个向导 RNA (sgRNA) 与成功组合的发育调节剂一起引入组成性表达 Cas9 的转基因本氏烟叶中。在产生的芽中，可以验证目标基因的编辑，并且发现突变会传递给下一代。随后出现了一个问题，即在土壤中生长的植物上是否也能诱导分生组织。这种方法确实在许多双子叶植物中被证明是成功的，除了本氏烟草，在马铃薯和葡萄中也是如此。此外，还产生了基因编辑的本氏烟草植物，并且发现一些编辑过的植物不含有用于编辑的转基因。从头分生组织诱导方法被称为 Fast-TrACC（快速处理的农杆菌共培养），与传统的组织培养程序相比具有明显的优势（图 1）。首先，它大大缩短了生产基因编辑植物所需的时间，从几个月缩短到几周。其次，Fast-TrACC 不需要无菌条件，并且适用于在土壤中生长的植物。组织培养方法要求使用无菌工作台和无菌培养基，因此无组织培养方法需要的资源更少，并且适用于较小的群体。第三，当 Cas9 与 sgRNA 一起递送时，在某些情况下会产生基因编辑植物
一种新型的极高生长素转运的化学抑制剂通过HD -ZIP III转录局部增强
div de Novo射击器官发生是植物研究和繁殖中众多应用的先决条件，但通常是基因组编辑方法中的限制因素。III类同源核心蛋白拉链（HD-ZIP III）转录因子已被视为芽规范的关键调节剂，但是在芽再生过程中控制其活性的上流集成部分仅部分鉴定。在化学遗传筛选中，我们分离了ZIC2，这是HD-ZIP III活性的新型激活剂。使用拟南芥和阳光（Helianthus annuus）中的分子，生理和激素转运分析，我们检查了该药物促进HD-ZIP III表达的分子机制。ZIC2依赖性上调促进了拟南芥中的芽再生，并伴随着芽的指定因子WUS和RAP2.6L的诱导以及细胞分裂素生物合成酶的子集。ZIC2对HD-ZIP III的影响和再生是基于限制极性生长素转运的能力。我们进一步提供了证据，表明生长素的化学调节可以在再生顽固物种阳光下增强从头芽的形成。在芽再生过程中，HD-ZIP III转录的激活取决于生长素的局部分布和生长素转运的化学调节，可用于克服组织培养中较差的芽器官发生。
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