theranostics的扩大领域结合了靶向共有疾病分子标记的诊断和治疗药物的使用。疗法药物对的诊断成分类似于伴侣诊断,因为它为安全有效地使用相应的治疗产品提供了必不可少的信息(1)。但是,伴随诊断被调节为医疗设备,通常由体外测定组成,但通常是出于医学成像的目的,thera-postic范式依赖于体内作用的诊断药物。2022年3月23日,食品药品监督管理局(FDA)批准了第一对前列腺癌症治疗药物:Plu-Victo(177 lu-vipivotide tetraxetan; Advanced Accelerator appererator applastor appeperations; avation Appriptions ippartions;抗原[PSMA] -11;这些内部施用的药物含有不同的螯合放射性同位素,但两者都是靶标PSMA,这是大多数前列腺腺癌(2)的跨膜肽酶(一种跨膜肽酶)。作为治疗药物对的治疗成分,Pluvicto包含177 lu,发出B 2辐射以治疗该药物定位的PSMA阳性肿瘤病变。pluvicto是针对PSMA阳性转移性castra-耐药前列腺癌的男性进行治疗的,这些男性已接受了雄激素受体途径抑制和基于紫杉烷的化学疗法的治疗(3)。locametz是疗法药对的诊断成分,用68 GA进行放射标记,以通过评估PET上的PSMA阳性来证明其批准的患者选择PLUVICTO治疗的指示(4)。有效性证明Locametz的有效性和PLUVICTO的治疗指示,主要来自多中心视觉试验(NCT03511664),其中符合68名Ga-gozetotide Pet标准以及
1 + TIM-3 + CD8 + )、TNF-α + IFN-γ + CD8 + T 细胞和颗粒酶 B + 穿孔素 + CD8 + T 细胞。
摘要 背景 过继性 T 细胞转移 (ACT) 疗法可改善晚期恶性肿瘤患者的预后,然而许多个体因输入功能不佳或持久性的 T 细胞而复发。 Toll 样受体 (TLR) 激动剂直接给患者使用时可以激发抗肿瘤 T 细胞反应,但这些反应往往与毒性同时出现。我们假设 TLR 激动剂可以在体外重新用于调节具有显著效力的 T 细胞,从而避免 TLR 相关毒性。 方法 在本研究中,我们调查了肿瘤特异性小鼠 CD8 + T 细胞和人类肿瘤浸润淋巴细胞 (TIL) 在用 TLR9 激动剂 CpG 进行体外扩增时会受到怎样的影响。 结果 在此,我们揭示了一种使用 TLR 激活的 B 细胞逆转过继转移的 CD8 + T 细胞对肿瘤的耐受状态的新方法。我们重新利用了临床上常用的 TLR9 激动剂 CpG,以增强 ACT 扩增过程中的 T 细胞—B 细胞相互作用。从 CpG 处理的培养物中体外扩增的 T 细胞表现出强大的抗肿瘤功效和体内持久性。这种抗肿瘤功效是在没有体内施用 TLR 激动剂或其他高剂量白细胞介素 (IL)-2 佐剂或疫苗接种的情况下实现的,而这些通常是有效 ACT 治疗所必需的。CpG 条件化的 CD8 + T 细胞获得了独特的蛋白质组学特征,其特点是 IL-2R α 高 ICOS 高 CD39 低表型和改变的代谢特征,所有这些都依赖于培养物中暂时存在的 B 细胞。同样,人类 TIL 也受益于体外使用 CpG 扩增,因为它们也具有 IL-2R α 高 ICOS 高 CD39 低表型。 CpG 通过增强 B-T 细胞直接相互作用,促进具有特征表型和抗肿瘤能力的强效 CD8 + T 细胞的扩增。分离的 B 细胞还赋予 T 细胞 CpG 相关表型,并提高肿瘤免疫力,而无需培养中额外的抗原呈递细胞或其他免疫细胞的帮助。结论我们的研究结果展示了一种使用 TLR 激动剂改善免疫疗法的新方法,并揭示了 B 细胞在产生强效 CD8 + T 细胞疗法中的重要作用。我们的研究结果对晚期实体瘤的临床治疗具有直接意义。
抽象背景在肿瘤微环境中发现了多种类型的产生IL-17的免疫细胞。然而,它们在CD8 +肿瘤浸润淋巴细胞(TILS)的肿瘤进展和精疲力尽中的作用尚不清楚。确定17型免疫力在肿瘤中的作用的方法,我们研究了B16F10黑色素瘤的生长以及CD8 + TIL在IL17A - / - 小鼠中的耗尽,IL17A CRE R26 DTA小鼠,RORγT抑制剂造成的小鼠,或其相应的对照组。在B16F10的先天小鼠中进行了肿瘤特异性IL-17产生的T细胞的过继转移。抗CD4或抗Ly6g抗体分别用来耗尽CD4 + T细胞或CD11b + Gr-1 HI髓样细胞的体内。通过询问TCGA数据集,评估了人类癌症中17型免疫力与T细胞衰竭之间的相关性。结果CD4 + T细胞的耗竭促进了CD8 + T细胞的耗尽,而肿瘤中产生IL-17的CD8 + T(TC17)细胞的耗尽。与产生CD8 + T(TC1)细胞不同,肿瘤浸润的TC17细胞表现出CD103 + KLRG1-IL-7RαHIHI组织驻留的记忆样表型,并且细胞溶解度不佳。产生IL-17的肿瘤特异性T细胞的产物转移增加,而产生IL-17的细胞的耗竭降低,肿瘤中PD-1 HI TIM3 + TOX +终末耗尽的CD8 + T细胞的频率。封锁IL-17或RORγT途径抑制CD8 + T细胞的耗尽,还会延迟体内肿瘤的生长。封锁IL-17或RORγT途径抑制CD8 + T细胞的耗尽,还会延迟体内肿瘤的生长。与这些结果一致,人类TCGA分析揭示了多种癌症中17型和CD8 + T细胞耗尽签名基因集之间存在很强的正相关。结论IL-17产生的细胞促进了CD8 + T细胞的末端衰竭和体内肿瘤进展,可以通过IL-17或RORγT途径的阻断来逆转。这些发现揭示了IL-17-产生细胞作为促进CD8 + T细胞耗尽的肿瘤细胞的新作用,并提出17型免疫力作为癌症免疫疗法的有希望的靶标。
我们对慢性抗原环境中CD8 + T细胞功能,干性和精疲力尽的大部分理解都来自淋巴细胞绒毛膜炎病毒(LCMV)和癌症的工作。这项工作已将TCF1 + CD8 + T细胞鉴定为类似茎状的人口,它为分化的效应子和耗尽的CD8 + T细胞群体燃料,通常通过缺乏TCF1表达和抑制性受体的高表达和末端分化标记的高表达(包括CD39 1,2)。为HIV设计更好的T细胞治疗方法,我们旨在理解HIV感染后这些相同CD8 + T细胞亚群的动力学和相关性。此外,鉴于淋巴结作为病毒复制的主要部位以及淋巴结淋巴结生物学在淋巴结3、4中的唯一证明,我们还希望以特别关注淋巴结CD8 + T细胞的特定关注探索这种问题。
本研究评估了用基于抗独特型抗体(功能上模拟酵母杀伤毒素)的工程杀伤肽 (KP) 处理的猪免疫细胞的表型和细胞因子分泌的早期调节。使用猪生殖与呼吸综合征病毒 (PRRSV) 和猪圆环病毒 2 型 (PCV2) 作为体外抗原研究了 KP 对特异性免疫的影响。用 KP 和杂乱肽刺激健康猪的外周血单核细胞 (PBMC) 20 分钟、1、4 和 20 小时或保持不刺激。使用流式细胞术和 ELISA 分析细胞。使用相同的时间段进行 KP 预孵育/共孵育,以使用 ELISPOT 确定对病毒回忆干扰素-γ (IFN- γ ) 分泌细胞 (SC) 频率和单细胞 IFN- γ 生产力的影响。KP 诱导早期剂量依赖性转变至促炎性 CD172 α + CD14 +high 单核细胞和增加 CD3 + CD16 + 自然杀伤 (NK) T 细胞。KP 触发经典 CD4 − CD8 αβ + 细胞毒性 T 淋巴细胞 (CTL) 和双阳性 (DP) CD4 + CD8 α + Th 记忆细胞 (CD4 + CD8 α +low CD8 β +low) 上的 CD8 α 和 CD8 β 表达。一部分 DP 细胞也表达高水平的 CD8 α 。已鉴定的两种 DP CD4 + CD8 α +高 CD8 β +低/+高 CTL 亚群与肿瘤坏死因子 α (TNF- α ) 和 IFN- γ 分泌有关。KP 显著增强了 PRRSV 1 型和 PCV2b 特异性 IFN- γ SC 的反应性和交叉反应性。结果表明 KP 在刺激 Th1 偏向免疫调节方面有效,并支持将 KP 作为免疫调节剂或疫苗佐剂进行研究。
2013•修饰的RHCMV载体•诱导强大的SIV特异性CD8 T细胞•未诱导的抗体反应•所有猴子都变成SIV感染•55%,然后清除SIV感染•其他45%无疫苗效应•由CD8 T细胞介导的病毒效应•CD8 T细胞
Espinosa-Carrasco 等人最近发表的一篇论文 1 阐明了肿瘤内免疫三联体(由 CD4 + T 细胞、CD8 + T 细胞和树突状细胞 (DC) 组成的独特集群)在介导有效的抗肿瘤反应中的关键作用。这些三联体确保 CD8 + T 细胞通过相同的 DC 介导从 CD4 + T 细胞获得必要的帮助,从而有效地靶向和摧毁癌细胞。该文章的新颖见解表明,重点应从增加免疫细胞数量转移到优化它们在肿瘤微环境中的相互作用。这项开创性的研究不仅强调了 CD4 + T 细胞和 DC 的关键作用,而且突出了肿瘤微环境中免疫细胞亚群之间错综复杂的相互作用。先前的研究已经揭示了 CD4 + T 细胞在支持 CD8 + T 细胞反应中的重要性 2 。肿瘤微环境中免疫细胞的空间定位和相互作用的重要作用也得到了强调 3,4 。过继性 T 细胞疗法的研究表明,同时转移 CD4 + 和 CD8 + T 细胞比单独转移 CD8 + T 细胞可获得更好的治疗效果 2,5 ,因为 CD4 + T 细胞有助于维持 CD8 + T 细胞的效应功能并防止其衰竭。这些研究共同支持了免疫细胞类型(特别是 CD4 + 和 CD8 + T 细胞)之间协调相互作用的要求,以实现有效的抗肿瘤免疫。
CRISPR/Cas9 技术彻底改变了原代细胞的基因工程。尽管它在 CD8 + T 细胞生物学研究中的应用势头迅猛,但 CRISPR/Cas9 对 CD8 + T 细胞体内功能的影响程度仍不清楚。在这里,我们优化了基于核转染的 CRISPR/Cas9 基因工程,用于幼稚和体外激活的小鼠原代 CD8 + T 细胞,并测试了它们的体内免疫反应。幼稚 CD8 + T 细胞的核转染保留了它们体内抗病毒免疫反应,其程度与未核转染的细胞没有区别,而体外激活的 CD8 + T 细胞的核转染导致在过继转移后的早期时间点扩增/存活率略有受损,收缩更为明显。值得注意的是,不同的靶蛋白在基因编辑后显示出不同的衰减率。这与完成基因失活所需的相当一段时间形成了鲜明对比。因此,为了实现最佳实验设计,确定靶基因产物丢失的动力学以适应基因编辑后的潜伏期至关重要。总之,基于核转染的 CRISPR/Cas9 基因组编辑可高效、快速地生成突变 CD8 + T 细胞,而不会对其体内功能造成不利限制。
Postow 博士的项目获得了 MRA 既定研究员学术行业合作伙伴奖的支持。Postow 博士领导了这项工作,他与一家公司合作开发一种新兴技术,使某些免疫细胞(称为 CD8 T 细胞)可视化,这些细胞是寻找和杀死肿瘤的重要“战士”。由于先前的研究表明,对新辅助治疗 nivolumab + ipilimumab 的良好反应取决于 CD8 T 细胞的数量,因此通过成像可见的 CD8 细胞程度预计与手术时的结果有关。通过这种称为 CD8 PET 示踪剂的成像技术,Postow 和他的团队将能够在手术前和治疗期间查看 CD8 细胞,并将反应(或抵抗力)与单剂量免疫疗法治疗相关联。这最终将使临床团队能够在必要时调整治疗,或者在治疗成功的情况下仅使用一剂治疗,并使患者免于接受可能导致额外毒性的第二剂新辅助治疗。
