的不同DNA中,并作为模板进行了绝对定量的16S rRNA植物群分析。从获得的标准物质导线中制备了校准曲线,并计算了百日咳芽孢杆菌的16S rRNA基因的拷贝数,并对不同来源的DNA平均计算了百日咳的拷贝数。这表明该产品可用于比较不同样品之间的细菌体积和控制每个分析测试的准确性。
此快速参考指南旨在适用于经验丰富的用户,这些用户已经熟悉处理16件包幻灯片上的Angilent HT微阵列,以进行比较基因组杂交(CGH)。如果您是新用户,请参阅出版物G4132-90000,使用Agilent HT Microars-azymatic-emzymatic标记GDNA的高通量ACGH分析,该标记使用SERETAG HT KIT协议,这是该快速参考指南的全长版本。全长协议包括其他说明和详细信息,以及程序注释,套件内容的信息,所需的材料和设备以及故障排除提示。
数量:5 µg 产品描述 人类神经束膜细胞基因组 DNA (HPNC gDNA) 是使用 Qiagen Allprep DNA/RNA Mini Kit 从早期传代人类神经束膜细胞中制备的。通过分光光度计和凝胶电泳测试基因组 DNA 的质量和纯度。基因组 DNA 可随时用于各种分析,包括:SNP 分析、DNA 甲基化分析、Southern 印迹和 PCR。ScienCell Research Laboratories 的基因组 DNA 对研究人员来说既方便又经济,因为它无需获取昂贵的组织来分离 DNA。质量控制
数量:5 µg 产品描述 人类神经束膜细胞基因组 DNA (HPNC gDNA) 是使用 Qiagen Allprep DNA/RNA Mini Kit 从早期传代人类神经束膜细胞中制备的。通过分光光度计和凝胶电泳测试基因组 DNA 的质量和纯度。基因组 DNA 可立即用于各种分析,包括:SNP 分析、DNA 甲基化分析、Southern 印迹和 PCR。ScienCell Research Laboratories 的基因组 DNA 对研究人员来说既方便又经济,因为它无需获取昂贵的组织来分离 DNA。质量控制
(Cytiva)。LNP 货物是编码工程 AsCas12a 核酸酶和 gRNA 的 mRNA,重量比为 1:1。通过 RiboGreen 测定法(ThermoFisher Scientific)评估 LNP 的包封率大于 80%,多分散性指数 (PDI) <0.2,通过 Zetasizer 分析(Malvern Panalytical,型号 ZSU3205)评估平均直径大小 <105 nm。• 细胞培养处理:用指定浓度的包封 AsCas12a mRNA 的 LNP 处理细胞,并在转染后 72 小时分离 gDNA。原代人肝细胞 (PHH) 的转染包括重组人载脂蛋白 E。进行基于扩增子的下一代测序 (NGS) 以确定编辑百分比。 • 小鼠眼内体内编辑:通过前房内注射将 LNP 递送至每只 hMYOC Y437H(具有 Y437H 突变的人类肌动蛋白基因)敲入小鼠的一只眼中。注射后一周,解剖眼球,从前房分离 mRNA。采用基于转录本的 RT-ddPCR 检测来测量剩余 hMYOC mRNA 的程度。 • 小鼠肝脏内体内编辑:通过尾静脉静脉注射将 LNP 递送至 hMYOC Y437H 小鼠。注射后一周,解剖肝脏,分离 gDNA,并进行基于扩增子的 NGS 以确定编辑百分比。 • 体外结合亲和力测量:将标记的未修饰的向导与重组工程 AsCas12a 和浓度不断增加的修饰“测试”向导混合,在室温下孵育 3 小时,然后在硝酸纤维素印迹膜 (Cytiva) 和 Hybond N+ 膜 (Cytiva) 上进行双重过滤分离。在每个膜上定量荧光标记的未修饰向导,并计算结合的未修饰向导的百分比。标记的未修饰向导的结合百分比降低是由于来自修饰的“测试”向导的结合竞争。
图 3:HBV-ARCUS-POL 核酸酶在各代中表现出更高的特异性 • 含有一个部分整合的 HBV 基因组的 HepG2 细胞被转染了高水平的 HBV-ARCUS- POL 核酸酶以及 DNA“标签”。分离 gDNA 并使用 Oligo Capture NGS 评估脱靶编辑。 • 每个蓝点代表一个潜在的切割位点,X 轴表示恢复的读取次数,点的颜色表示每个位点与预期的 22bp 目标位点相比的错配数。 • 最有可能真实的脱靶位点是那些具有大量读取次数或错配较少的位点。这些包含在黄色轮廓框内。橙色圆圈表示已整合到 HepG2 细胞系基因组中的预期目标位点。
Gel Purification 60,68 R Post PCR Clean-up 34,39 R Bead based Post PCR clean-up 43,08 R DNA sequencing reaction 105,21 R Sequencing Electrophoresis only 60,77 R Fragment Analysis run 67,65 R Use of Realtime instrument 103,69 R RT 0.1ml Fast Plate 158,97 R BigDye kit (800ul) 24 590,07 R Sequencing Buffer (800ul) 1 329,34 R Qubit assay Price on request PerkinElmer LabChip (gDNA) Price on request PerkinElmer LabChip (Fragment analysis ) Price on request TapeStation (RNA Screen tape) Price on request TapeStation (Fragment analysis - D1000) Price on request TapeStation (Fragment analysis - D5000) Price on request Covaris shearing Price on request
A) RT4 细胞转染 312 pM TALEN mRNA 16 小时后的免疫荧光显微镜图像。B) RT4 细胞转染 TALEN mRNA 5 天后,通过 RT-qPCR 测量 LPA 转录本的剂量反应性减少。C) TALEN mRNA 转染后 RT4 全细胞裂解物中 Apo(a) 蛋白水平的毛细管电泳图像。D) TALEN mRNA 转染后 RT4 细胞的靶向基因编辑分析。通过基因组 DNA (gDNA) 模板的 PCR 扩增子的下一代测序 (NGS) 确定导致移码的插入和缺失的频率 (编辑百分比)。E) mRNA 序列优化的示意图。转染 TALEN-Ex3_v2 mRNA 后 RT4 全细胞裂解物中 Apo(a) 蛋白水平的毛细管电泳图像 (F) 和靶向基因编辑分析 (G)。
遗传改性细胞的基因分型是针对转基因和基因组编辑的至关重要的步骤,例如CRISPR/CAS等系统。检测基因组编辑事件可以与所使用的基因分型方法直接相关,该方法受其成本影响,因为许多实验需要分析大量样品。这项研究的目的是比较基因组DNA(GDNA)提取的直接裂解方法的性能,以检测原代山羊细胞中的敲蛋白和敲除。最初,使用差异量(1,000、5,000和10,000个细胞)和goat Ortiparts(fibroblblasts and fibroblblasts and gote anctermarem Migalsmary Migalmary Migalmary Migalmary Migatiars Migatiars Migatiars)测试了三种GDNA提取方案(方案A,水中的温度A; Prote变性/冻结;小(GAPDH)和大扩增子(HLF转基因)的PCR扩增。所有方案在检测小扩增子方面均成功;但是,在GMEC中,只有协议B仅导致有效的扩增(协议A - 0%,协议B- 93%,协议C- 13.33%,p <0.05)。In a proof- of-principle experiment, the TP53 gene was knocked out in GMECs by CRISPR/Cas9-medi- ated deletion while constructs containing the anti-VEGF monoclonal antibody (pBC-anti- VEGF) and bacterial L-Asparaginase (pBC-ASNase) transgenes were knocked-in sepa- rately in fibroblasts.使用协议B和PCR进行了成功编辑的检测。根据PCR,PBC-ASNase和PBC-Anti-VEGF转基因的整合速率分别为93.6%和72%。使用CRISPR/CAS9对TP53缺失在GMEC中的双重编辑效率为5.4%。我们的结果表明,方案B(热变性/蛋白酶K)可以用作一种廉价且快速的方法,用于检测不同类型的原代山羊细胞中的遗传修饰,其效率率与先前使用提取试剂盒或更复杂的蛋白酶K配方中先前描述的值一致。