2。pdec培养物pdec培养物是在蒙恩(Munne)详细介绍的。等,(2021)。Briefly, tumor material was processed into small fragments through incubation overnight (O/N) with gentle shaking (130 rpm) at 37 °C in MammoCult basal medium containing 0.2% of Collagenase A, MammoCult proliferation supplements, 4 μg/ml heparin, 50 μg/ml gentamicin, and penicillin/streptomycin (diluted 1:100).第二天将混合物以1300 rpm离心3分钟,然后将颗粒重悬于1 ml哺乳动物培养基中。碎片最近被分解,重悬于1.0%的growdex或未稀释的毛状膜中,并播种到8孔室载玻片中以进行3D培养。growDex。简短地,将500 µL的乳腺培养基放入Eppendorf管中,然后加入1 ml的growdex。这被充分混合并根据需要使用。总共在8孔室载玻片中添加了每孔的40μl基质,并补充了500μl乳腺生长培养基。将PDEC培养物在标准的细胞培养培养箱(37°C,5%CO₂)中孵育3天。表1中总结了
☐ BSL-1 ☐ BSL-2 ☐ BSL-2+ (BSL-2 with BSL-3 practices) ☐ BSL-3 Laboratory Hazards ☐ Aerosol-generating procedures (centrifugation, sonication, high pressure systems, vortexing, tube cap popping) ☐ Handling of sharps (needles and syringes, scalpels, microtome blades, broken glass, razor blades,等)☐飞溅生成活动(移液,摇动孵化器,液体培养物)☐设备污染☐暴露的皮肤/未覆盖的伤口☐其他(指定):先前已知的实验室获得的感染(LAIS),如果是的,则提供背景信息,如果是的,如果是 div>
图2杀死CHO-K1细胞的摇瓶中的曲线,抗生素尿霉素的浓度不同。实验总共进行了四个重复。每隔第二天(用黑色箭头表示)通过离心和在新鲜培养基中与补充纯嘌呤霉素重悬于细胞分离中。(a)描绘的是由Kuhner Tom设备确定的氧转移速率(OTR)。为了清楚起见,随着时间的推移,每个第十二个测量点都被标记为符号。在从数据中删除了由于温度适应引起的每个介质交换后,OTR数据中的单个Outliner。有关原始数据,请参阅图S2A。两个在线监视的生物学重复用实线和填充符号或虚线和开放符号表示。(b)离线培养了另外两种生物学重复。离线分析的生物学重复被描述为固体和填充的符号或虚线和开放符号。通过离线摇瓶通过Neubauer室法在每个培养基交换处确定可行的细胞密度(VCD)。(c)可行性是从相同样品中计算出来的。在Kuhner Tom设备中进行培养。培养条件:100 ml玻璃瓶,温度(T)= 36.5 C,摇动频率(n)= 140 rpm,摇动直径(D 0)= 50 mm,填充体积(V L)= 20 ml,5%CO 2,70%rel。哼。启动细胞密度:5 10 5细胞/mL。
该行业正处于转折点;领导者认为,现有框架已不足以管理当今最紧迫的所有问题,包括太空垃圾和低地球轨道 (LEO) 商业化。快速的技术进步正在释放新的能力,鼓励更多商业资金进入太空,并使各国和私营部门更容易进入太空。这些发展正在撼动长期存在的运营模式,推动从单片架构向分布式架构的转变。随着太空变得拥挤,它们也引发了更多的竞争,公共和私人参与者争相争夺有限的资源,如轨道和频谱。
关键词:轨道式振荡生物反应器 (OSB)、禽类 AGE1.CR.pIX 悬浮细胞、流感病毒、动物疱疹病毒、腺相关病毒 (AAV)、人胚胎肾 (HEK) 293 细胞、一次性灌注至高细胞密度、制造。悬浮细胞的预培养在摇瓶中成功完成。特别是新开发的设计细胞在高摇动频率下在摇瓶中传代多达 100 次,然后完美适应在具有 pH 控制和最大氧气供应(通常高于 80% pO 2 )的 CO 2 培养箱中生长。当它们随后被转移到搅拌槽生物反应器进行扩大时,特定细胞生长率通常较低,并且细胞对通过酸/碱添加和由于潜水器放气(气泡)而产生的剪切应力的 pH 控制变得敏感。禽类 AGE1.CR.pIX 和人类 HEK 293 细胞也出现了这种情况。为了避免这些问题,评估了在振荡模式下的扩大规模。这里我们介绍了 SB10-X OSB 生物反应器在袋子设计和控制单元改进方面的最新进展。引入了一种新的控制策略,从而可以更快、更精确地控制 pH 和 DO。此外,还优化了灌注袋,以便可以轻松连接一个或两个 TFF ATF 系统。这两项发展都带来了更强大的 SB10-X 系统,可以轻松执行批量、补料分批或灌注运行。在 10 L 一次性标准袋中,在化学定义的培养基 CD-U3(Biochrom-Merck,德国)中以 70 rpm 的摇动频率培养 Avian AGE1.CR.pIX 细胞(ProBioGen AG,德国)。对于灌注,使用了交替切向流系统(ATF2,Repligen,500 kDa 截止值)。感染流感病毒 A/PR/8/34 (H1N1) 后,MOI 为 0.001,工作体积从 5 升增加到 9 升,同时保持灌注。使用不同的填充体积评估 25 和 50 x 10 6 细胞/毫升的细胞浓度,以了解顶部空间通气的影响。总体而言,可以获得 3500 个病毒体/细胞的非常高的细胞特异性病毒产量,导致 HA 滴度高达 3.7 log 10(HA 单位/100 µL),感染滴度高达 8.8 x 10 9 TCID 50 /毫升。基于重组 AAV 的载体不仅是基因治疗目的的合适载体,而且还能够诱导针对各种抗原的强烈、主要是细胞的免疫反应。到目前为止,AAV 生产主要使用瞬时转染的贴壁人类 HEK 293 细胞(例如在细胞堆栈中),这对大规模 AAV 生产来说是一个重大挑战。在这里,我们测试了内部适应悬浮生长的 HEK 293 细胞,以通过一种允许简单扩大规模的过程生产 AAV9 的能力。因此,HEK 293 悬浮细胞在 5 L 化学定义的无血清培养基中培养,细胞密度为 1 x 10 6 个细胞/毫升,使用 SB10-X OSB 生物反应器,摇动频率为 65 rpm。24 小时后以 70 rpm 的振荡频率进行聚乙烯亚胺 (PEI) 介导的三重转染(包括 GFP 报告基因)。最后,转染后 48 小时,收获细胞和上清液进行 AAV 分离,并测定裂解物中 DNase I 抗性载体颗粒 (DRP) 的数量。由于转染效率高(基于 GFP 报告基因的转染率 >90%)且 SB10-X 系统中整个批处理过程性能良好,因此达到了 1.4 x 10 12 DRP/ml 或 7 x 10 15 DRP/批(5 L)范围内的制造相关 AAV 滴度。总之,在轨道上生产病毒可能是创新疫苗制造的一种有吸引力的替代方案。
但是,在接受凯西·洛尼(Kathy Loney)的采访中,他不断地偏转,试图通过雄鹿。试图责怪任何东西,除了他自己之外,不仅要为此负责,而且要对他的生活中的其他任何事情负责。被告的陈述总是别人的错。其他人正在对他做事。其他人讨厌他。这是对他的个人仇杀。不承认危害,持续的伤害。您看到[Emma]坐在这里的见证椅上像叶子一样摇晃着,因为她试图告诉您被告对她做了什么。这种情况的持续危害。