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我们改变了VII分子中的单个氨基酸（D60A）。实验室测试表明，这种变化（D60A）显着降低了VIIA因子X的能力，这是血液凝结的关键步骤，同时保持相似的酰化活性。这导致凝血酶产生较慢（形成血凝块的过程）。重要的是，修改后的RFVIIA具有与原件类似的等离子体半衰期。
与牛组织分离的DNA：血液，精液或任何类型的组织，包括耳朵活检
当我们使用商业精子吸管进行萃取时，我们并不总是知道这些吸管的组成，所含的材料量，稀释剂的性质和所使用的防腐剂。这就是为什么有时需要使用几种吸管获得足够的测序材料的原因。有时也是明智的做法（请参见步骤3），以消除稀释剂和防腐剂中的污染物。
生物工程会开发可生物降解的电极，这些电极可能有助于修复受损的脑组织
通过利用人体的先天修复机制，研究人员的方法代表了治疗神经系统疾病的潜在一步，这是全球残疾的主要原因。虽然神经系统疾病通常会导致不可逆的细胞损失，刺激NPC（能够修复神经组织的可培养细胞）在扩大有限的治疗方案时表现出了希望。
循环肿瘤DNA测序的临床实用性在患有晚期软组织肉瘤的患者中
到编辑软组织肉瘤（STS）代表了包括100多种不同亚型的非常异构的稀有肿瘤组[1]。 手术和新/辅助放射疗法代表了STS治疗的基石。 然而，尽管肿瘤最佳切除，但多达40％的患者会出现转移性复发，并死于疾病[1]。 阿霉素代表自1970年代以来患有晚期疾病患者的一线护理标准，尽管有几次尝试确定更好的治疗方法。 转移性疾病患者的总体生存期（OS）<18个月，在过去20年中仅适度改善[2]。 我们和其他人先前已经报道说，肿瘤组织的下一代测序（NGS）允许鉴定基因组畸变，并可能影响高达50％的晚期STS患者的潜力和个性化治疗[3，4]。 循环肿瘤DNA（CTDNA）的基因组分析越来越多地用于调整癌症患者的治疗。 的确，这种液体活检具有多个优点：无侵入性，减少周转时间以获得更快的结果，以及完全捕获肿瘤异质性景观的能力[5]。 本研究的目的是研究ctDNA分析在两种前瞻性精确医学研究中包含的大量晚期STS患者中的影响，并破译肉瘤的ctDNA分子景观。 他们的角色 -到编辑软组织肉瘤（STS）代表了包括100多种不同亚型的非常异构的稀有肿瘤组[1]。手术和新/辅助放射疗法代表了STS治疗的基石。然而，尽管肿瘤最佳切除，但多达40％的患者会出现转移性复发，并死于疾病[1]。阿霉素代表自1970年代以来患有晚期疾病患者的一线护理标准，尽管有几次尝试确定更好的治疗方法。转移性疾病患者的总体生存期（OS）<18个月，在过去20年中仅适度改善[2]。我们和其他人先前已经报道说，肿瘤组织的下一代测序（NGS）允许鉴定基因组畸变，并可能影响高达50％的晚期STS患者的潜力和个性化治疗[3，4]。循环肿瘤DNA（CTDNA）的基因组分析越来越多地用于调整癌症患者的治疗。的确，这种液体活检具有多个优点：无侵入性，减少周转时间以获得更快的结果，以及完全捕获肿瘤异质性景观的能力[5]。本研究的目的是研究ctDNA分析在两种前瞻性精确医学研究中包含的大量晚期STS患者中的影响，并破译肉瘤的ctDNA分子景观。他们的角色 -在2020年12月至2021年8月之间，有98例晚期ST患者被包括在两项正在进行的机构分子概况研究中（Bergonie Institute Propiling，BIP：NCT02534649; Gustave Roussy Propiling，Sting，Sting：NCT049322525）。
植物组织中的RNA和DNA共萃取
该方案描述了如何从植物组织样品中共配合RNA和DNA。样品是均质的，并通过珠珠的同时散布。细胞碎屑被滤波器柱捕获，然后将DNA与二氧化硅柱结合，而RNA通过膜。然后，用100％乙醇沉淀出流通中的RNA并与第二个二氧化硅柱结合。均用不同的洗涤缓冲液洗涤DNA和RNA，以去除剩余的蛋白质和其他污染物，最后在单独的管中洗脱。如果用户只是对RNA感兴趣，则可以将DNA旋转柱丢弃。
DNA/RNA从新鲜冻结组织，Allprep DNA/RNA/miRNA通用试剂盒中提取
准备工作：FRN缓冲液：将42毫升异丙型物添加到新的瓶子RPE缓冲液中：将44 ml EtoH添加到新瓶AW1缓冲液中：向新瓶AW2缓冲液添加25 ml EtoH：添加30 ml EtoH DNase I股票：550 µL无RNase rnase for lyophifiend dnase dnase i，Aliquot and ealiquot and aT -20个月
识别3D组织模型中老化成纤维细胞激活的调节剂
该版本的版权持有人于2025年2月11日发布。 https://doi.org/10.1101/2025.02.10.636275 doi：Biorxiv Preprint
能源政策是否支持低碳发电的杀伤能源存储？
英国伦敦UCL考古研究所； B英国米德尔斯堡蒂赛德大学卫生与生命科学学院； c化学系和质谱卓越中心，约克大学，英国约克大学； D德国图宾根大学的史前，早期历史和中世纪考古研究所； E约克大学考古学系，英国约克大学； F UCL神经病学研究所，UCL神经病学研究所，UCL神经病学研究所，英国伦敦UCLH；英国伦敦的G摩尔领域眼科医院； H荷兰阿姆斯特丹神经科学校园神经科学系； i神经科学校园阿姆斯特丹，荷兰阿姆斯特丹神经科学校园； J哥本哈根大学，丹麦哥本哈根大学地球遗传学的J部分； K考古和法医科学，英国布拉德福德大学布拉德福德大学； L哥本哈根大学哥本哈根大学哥本哈根哥本哈根哥本哈根大学的生物学组学部分； M麦当劳考古研究所，英国剑桥
组织再生的牙科干细胞条件培养基
尽管间充质干细胞（MSC）最初是从骨髓中分离出来的，但牙科和牙周组织（DMSC）的MSC由于其实际和技术优势而引起了未来疗法的国际关注[1]。Since 2000, when Gronthos et al [ 2 ] described a population of pluripotent progenitors in adult dental pulp, studies have shown that dental tissues can be an important resource of MSCs: dental pulp stem cells (DPSC), exfoliated deciduous tooth stem cells (SHED), apical papilla stem cells (SCAP) which are situated at the ends of growing dental roots[ 3 ], periodontal ligament stem cells （PDLSC），位于牙齿胚芽周围的牙齿卵泡干细胞（DFPC），并在牙齿发育过程中负责牙骨质，牙周韧带和肺泡骨形成[4]，牙龈衍生的间充质干细胞（GMSC）（GMSC）（图1）。在发育早期（贝尔阶段）的牙齿中，已经描述了来自牙齿间充质的多能祖细胞，称为牙齿胚芽祖细胞（TGPC）[5]。