为了增加知识,必须深入研究大型动物模型中的基因编辑,以便将来将其应用于转化医学和食品生产。线粒体转录因子 A(TFAM)是 HMGB 亚家族的成员,可与 mtDNA 启动子结合。该基因维持 mtDNA,并且对于 mtDNA 转录的起始至关重要。最近,我们通过 CRISPR/Cas 9 技术破坏牛成纤维细胞中的 TFAM 基因,生成了一种新的细胞系。我们通过生成杂合突变克隆证明了 CRISPR/Cas9 设计是有效的。在这种情况下,一旦该基因调节 mtDNA 复制特异性,该研究旨在确定后编辑细胞是否能够在体外维持,并评估它们在培养中连续传代后是否会出现 mtDNA 拷贝数和线粒体膜电位的变化。编辑后的细胞在培养中扩增,我们进行了生长曲线、倍增时间、细胞活力、线粒体 DNA 拷贝数和线粒体膜电位测定。编辑过程并没有使细胞培养变得不可行,尽管与对照组相比,细胞生长率和活力有所下降,因为我们观察到在补充有尿苷和丙酮酸的培养基中培养时,细胞生长良好。它们还表现出典型的成纤维细胞样外观。用于确定 mtDNA 拷贝数的 RT-qPCR 表明,与不同细胞代次中未编辑的克隆(对照)相比,编辑后的克隆有所减少。用 Mitotracker Green 和 red 进行细胞染色表明,与未编辑的细胞相比,编辑后的细胞中的红色荧光有所减少。因此,通过表征,我们证明了 TFAM 基因对于线粒体的维持至关重要,因为它会干扰不同细胞传代中线粒体 DNA 拷贝数和膜电位的稳定性,从而证实了杂合编辑的细胞中线粒体活性的降低。
为了增加知识,必须深入研究大型动物模型中的基因编辑,以便将来将其应用于转化医学和食品生产。线粒体转录因子 A(TFAM)是 HMGB 亚家族的成员,可与 mtDNA 启动子结合。该基因维持 mtDNA,并且对于 mtDNA 转录的起始至关重要。最近,我们通过 CRISPR/Cas 9 技术破坏牛成纤维细胞中的 TFAM 基因,生成了一种新的细胞系。我们通过生成杂合突变克隆证明了 CRISPR/Cas9 设计是有效的。在这种情况下,一旦该基因调节 mtDNA 复制特异性,该研究旨在确定后编辑细胞是否能够在体外维持,并评估它们在培养中连续传代后是否会出现 mtDNA 拷贝数和线粒体膜电位的变化。编辑后的细胞在培养中扩增,我们进行了生长曲线、倍增时间、细胞活力、线粒体 DNA 拷贝数和线粒体膜电位测定。编辑过程并没有使细胞培养变得不可行,尽管与对照组相比,细胞生长率和活力有所下降,因为我们观察到在补充有尿苷和丙酮酸的培养基中培养时,细胞生长良好。它们还表现出典型的成纤维细胞样外观。用于确定 mtDNA 拷贝数的 RT-qPCR 表明,与不同细胞代次中未编辑的克隆(对照)相比,编辑后的克隆有所减少。用 Mitotracker Green 和 red 进行细胞染色表明,与未编辑的细胞相比,编辑后的细胞中的红色荧光有所减少。因此,通过表征,我们证明了 TFAM 基因对于线粒体的维持至关重要,因为它会干扰不同细胞传代中线粒体 DNA 拷贝数和膜电位的稳定性,从而证实了杂合编辑的细胞中线粒体活性的降低。
从根治性前列腺切除术(RP)后挽救放射疗法(SRT)是前列腺癌(PCA)患者的护理标准,患有生化复发(BCR)。与在PSA水平高于此阈值时接受SRT的男性相比,与接受SRT的男性相比,早期SRT(在前列腺特异性抗原(PSA)水平低于0.25 ng/ml的情况下,以低于0.25 ng/ml的速度发起的递送[1]。 后一组患者以及具有其他不利疾病特征的患者(例如快速PSA倍增时间-PSA -DT和ISUP组≥4)需要进行治疗强度,以改善临床结果。 与初级放射疗法相反,SRT设置中激素治疗的好处较少。 四个随机对照试验(RCT)研究了向SRT添加激素治疗的好处(Getug-Afu 16,RTOG 9601,SPPORT/RTOG 0534,激进S)。 getug-afu 16和Spport试验表明,在SRT延迟PSA进展无生存期(PFS)中添加短期雄激素剥夺治疗(ADT)。 对getug-afu 16的事后分析也表明,在5年和10年时,无转移生存期(MFS)的增长6%,但没有总体生存(OS)的好处[2]。 RTOG 9601是唯一显示出添加激素治疗的OS的RCT [3]。 有趣的是,它不使用ADT,而是Bicalutamide 150 mg,这是第一代雄激素受体途径抑制剂(ARPI)两年。 十二年的OS在Bicalutamide组中为76.3%,安慰剂组为71.3%(HR 0.77; 95%CI 0.59 - 0.99; P = 0.04)。 arpi对转移性PCA的管理深远影响。递送[1]。后一组患者以及具有其他不利疾病特征的患者(例如快速PSA倍增时间-PSA -DT和ISUP组≥4)需要进行治疗强度,以改善临床结果。与初级放射疗法相反,SRT设置中激素治疗的好处较少。四个随机对照试验(RCT)研究了向SRT添加激素治疗的好处(Getug-Afu 16,RTOG 9601,SPPORT/RTOG 0534,激进S)。getug-afu 16和Spport试验表明,在SRT延迟PSA进展无生存期(PFS)中添加短期雄激素剥夺治疗(ADT)。对getug-afu 16的事后分析也表明,在5年和10年时,无转移生存期(MFS)的增长6%,但没有总体生存(OS)的好处[2]。RTOG 9601是唯一显示出添加激素治疗的OS的RCT [3]。有趣的是,它不使用ADT,而是Bicalutamide 150 mg,这是第一代雄激素受体途径抑制剂(ARPI)两年。十二年的OS在Bicalutamide组中为76.3%,安慰剂组为71.3%(HR 0.77; 95%CI 0.59 - 0.99; P = 0.04)。arpi对转移性PCA的管理深远影响。最后,自由基-HD随机2839例BCR患者无需ADT,6个月或24个月[4,5]。作者报告说,在术后RT中增加6个月的ADT并不能改善MFS,而没有ADT,而在ADT的6个月中,增加了24个月的ADT改善MF。收益保持边缘,在6个月的ADT组中,10年的MF为71.9%,在24个月的ADT组中为78.1%。总体而言,这4个试验的DADSPORT元分析没有表明具有激素治疗的OS益处的证据,而不论是6个月还是24个月的激素抑制[6]。最近的研究表明,它们可能会影响高危局部PCA的处理。abiraterone增加了由RT和ADT处理的非常高风险或淋巴结阳性PCA的OS [7,8]。在engark试验,恩扎拉胺,单一疗法或ADT中,高危BCR患者的MF增加,即psa-dt≤9个月,在RT或
目的:三阴性乳腺癌 (TNBC) 是一种高度侵袭性的乳腺癌亚型,缺乏有效的诊断和治疗方法。膜型 1 基质金属蛋白酶 (MT1-MMP) 是一种有吸引力的生物标志物,可用于改善患者选择。本研究旨在开发一种治疗诊断工具,使用高肿瘤选择性抗 MT1-MMP 抗体 (LEM2/15) 用 89 Zr 放射性标记用于 PET,用 177 Lu 放射性标记用于 TNBC 小鼠模型的治疗。方法:用 89 Zr 放射性标记 LEM2/15 抗体和 IgG 同型对照。在给药后 1、2、4 和 7 天在 TNBC 原位小鼠模型中进行 PET 成像。分析组织生物分布和药代动力学参数,并使用 Patlak 线性化计算不可逆摄取的流入率。 TNBC 小鼠接受 [ 177 Lu]Lu-DOTA-LEM2/15(单剂量或 3 剂量方案)或生理盐水治疗。[ 177 Lu]Lu-DOTA-LEM2/15 的疗效通过 MDA 231-BrM2-831 肿瘤中的肿瘤生长和 DNA 损伤 (γ H2AX) 进行评估。结果:注射后 7 天,肿瘤异种移植中的 PET 摄取显示,与阻断组和 IgG 同种型对照组相比,非阻断组的 [ 89 Zr]Zr-Df-LEM2/15 的肿瘤与血液比率分别高出 1.6 倍和 2.4 倍。 Patlak 线性化方法证实了 TBNC 肿瘤中 LEM2/15 的特异性摄取是由 MT1-MMP 结合介导的,这为基于 LEM2/15 的治疗的潜在疗效提供了见解。注射后 7 天,发现肿瘤中 [ 89 Zr]Zr-Df-LEM2/15 和 [ 177 Lu]Lu-DOTA-LEM2/15 的摄取相似(6.80 ± 1.31 vs. 5.61 ± 0.66 %ID/g)。与对照组相比,[ 177 Lu]Lu-DOTA-LEM2/15 3 剂量方案治疗组的肿瘤倍增时间更长(分别为 50 天和 17 天)。与未治疗或用 [ 177 Lu]Lu-DOTA-LEM2/15 单剂量治疗的肿瘤相比,用 [ 177 Lu]Lu-DOTA-LEM2/15 3 剂量方案治疗的肿瘤中具有 γ H2AX 焦点的细胞百分比更高(12% vs. 4 – 5%)。结论:结果表明,89 Zr/177 Lu 标记的抗 MT1-MMP mAb (LEM2/15) 对促进了免疫 PET 成像并减少了临床前 TNBC 异种移植模型中的肿瘤生长。