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单倍体胚胎只含有一组亲本染色体(n),而不是经典的两组染色体(2n),一组来自母亲,一组来自父亲。尽管如此,单倍体胚胎及其随后的单倍体幼苗代表了双单倍体(DH)技术的基础,而双单倍体(DH)技术是一种重要的植物育种工具[1,2]。DH技术可以简单地概括为:(i)生产单倍体胚胎,以及(ii)复制(复制粘贴)单倍体基因组以恢复正常倍性状态。DH技术可以实现高效的植物育种周期,主要是通过缩短创建固定遗传物质(自交系)的时间来实现的,因为只需要两代就可以获得纯合植物,而使用常规杂交则需要六代或更多代[1,2]。因此,DH流程可以快速评估植物的表型性状
双单倍体 (DH) 技术通过使单倍体胚胎/幼苗的染色体加倍,产生严格纯合的可育植物。单倍体胚胎来自雄性或雌性生殖系细胞,仅含有植物体细胞组织中发现的染色体数量的一半,尽管由于减数分裂遗传重组而呈重组形式。DH 生产允许以完全纯合植物(自交系)的形式快速固定这些重组单倍体基因组,这些植物在两代而不是六代或更多代中产生。DH 育种能够快速评估同质后代的表型性状。虽然对于大多数作物来说,单倍体胚胎是通过昂贵且通常依赖基因型的体外方法生产的,但对于玉米,有两种独特的植物体内系统可用于直接在种子中诱导单倍体胚胎。从玉米自然突变体中鉴定出的两种“单倍体诱导系”能够诱导父本或母本来源的胚胎。尽管与目标系轻松杂交足以触发单倍体胚胎,但需要进行大量改进才能将 DH 技术大规模生产。它们包括开发具有高诱导率(8-12%)的现代单倍体诱导系,以及将具有单倍体胚胎的玉米粒与正常玉米粒分选的方法。染色体加倍也是 DH 过程中的关键步骤。最近鉴定出的参与自发加倍的基因组位点为玉米的完全植物内 DH 流程开辟了前景。尽管玉米单倍体诱导系是在 50 多年前发现的,但由于新的应用和发现,它仍然成为头条新闻。事实上,母本单倍体诱导被巧妙地转移到难以转化的种质中,以提供基因组编辑机制。最近发现的两个控制单倍体诱导的分子因素使我们能够重新审视玉米母体单倍体诱导的机制基础,并成功地将单倍体诱导能力转化为其他作物。
摘要:气候变化的新威胁要求快速开发对非生物和生物因素具有更高耐受性的优良品种。尽管传统农业实践取得了成功,但仍需要精确操纵作物基因组的新技术。几十年来,双单倍体 (DH) 方法已在主要作物中使用,以在短时间内在优良背景中固定所需的等位基因。DH 植物还广泛用于数量性状基因座 (QTL) 的定位、标记辅助选择 (MAS)、基因组选择 (GS) 和杂交生产。最近发现的负责单倍体诱导 (HI) 的基因允许通过基因编辑 (GE) 在不同作物的非诱导品种中设计这种性状。直接编辑配子或单倍体胚胎可在染色体加倍后产生无效纯合植物,从而提高 GE 效率。对单倍体植物中负责自发染色体加倍的潜在遗传机制的深入了解可能允许将这种性状转移到不同的优良品种中。总体而言,进一步提高 DH 技术效率并结合优化的 GE 可以加速主要作物的育种工作。
在复杂的细胞生物学世界中,单倍体细胞在生命的形成和延续中起着至关重要的作用。这些专门的细胞只有一组染色体,是繁殖和遗传多样性过程的基础。本文旨在阐明单倍体细胞在生物系统背景下的特征,功能和意义。HAPLOID细胞是一种仅包含一组完整的染色体的细胞,通常以生物学术语表示为“ N”。这与包含两组染色体的二倍体细胞形成对比,称为“ 2n”。单倍体细胞是通过称为减数分裂的过程产生的,其中二倍体细胞经历了两个连续的分裂,以将其染色体数减少一半。配子,例如人类的精子和卵细胞,是单倍体细胞的经典例子[1,2]。
方法:一种回顾性分析应用了1,675个胚胎的数据集,对1,305个个体的非植入基因测试(PGT-A)进行了植入前基因检测,涉及2015年1月和12月在2019年1月和12月之间的单个Eploid Embryo的Cryotransfers。在NGS平台(n = 40),生物学特征的相关性(n = 1,635)和生殖结果的相关性(n = 1,340)的相关性(n = 1,340)的相关性(n = 1,635),将研究的队列分为算法建立(n = 40)。,分别通过QPCR分析和运行间控件验证了可靠性和可重复性。跨生物学特征的相关性,应用地层分析来评估单个贡献者的效果。最终,根据显着效应子(S)调整了mtDNA比与生殖结果之间的相关性。
(未经同行评审认证)是作者/资助者。保留所有权利。未经许可不得重复使用。此预印本的版权所有者此版本于 2023 年 11 月 16 日发布。;https://doi.org/10.1101/2023.11.15.567202 doi:bioRxiv preprint
双单倍体技术旨在生成纯种自交系,用于基础研究和商业栽培品种。双单倍体技术首先生成单倍体植物,然后进行染色体加倍,根据每个物种的程序,染色体加倍可以分开进行,也可以重叠进行。长期以来,人们一直致力于通过雄核发育、雌核发育或孤雌生殖来生产单倍体。获得单倍体植物是第一步,由于这通常需要进一步优化,染色体加倍方法的研究已经落后。然而,染色体加倍最近重新引起了人们的兴趣,人们通过试验和优化不同的程序来提高双单倍体植物的生产率和效率。人们正在研究新的抗有丝分裂化合物和应用方法,以确保在单倍体材料再生后染色体加倍成功。此外,单倍体诱导物介导的 CRISPR/Cas9 基因组编辑系统是生产单倍体植物材料的突破性方法,对于传统单倍体再生方法无法成功的物种或顽固物种可能具有重要意义。在所有情况下,该系统的新部署都需要合适的染色体加倍方案。在这篇评论中,我们探索了现有的双单倍体和染色体加倍方法,以确定增强主要作物育种过程的机会。
在胚胎中混合母本和父本基因组不仅是有性生殖进化成功的原因,也是植物育种的基石。然而,一旦获得了有趣的基因组合,进一步的基因混合就会出现问题。为了快速固定遗传信息,可以生产双单倍体植物:允许仅具有来自一个亲本的遗传信息的单倍体胚胎发育,染色体加倍产生完全纯合的植物。双单倍体生产的有效途径是基于单倍体诱导系。单倍体诱导系与具有待固定基因组合的系之间的简单杂交将触发单倍体胚胎发育。然而,植物体内单倍体诱导的确切机制仍然是一个长期未解之谜。最近发现的触发玉米作物和模式植物拟南芥单倍体诱导的分子因子明确了与配子发育、配子相互作用和基因组稳定性相关的过程的重要作用。这些发现使得单倍体诱导能力能够应用于其他作物,并利用单倍体诱导物系将基因组编辑机制引入各种作物品种。这些最新进展不仅为下一代植物育种策略带来了希望,而且还为植物有性生殖的基本基础提供了更深入的见解。
Jiang J, Stührwohldt N, Liu T, Huang Q, Li L, Zhang L, Gu H, Fan L, Zhong S, Schaller A 等 (2022) 卵细胞分泌的天冬氨酸蛋白酶 ECS1/2 促进配子附着,使卵细胞优先于中心细胞受精。J Integr Plant Biol. doi: 10.1111/jipb.13371 Google Scholar:仅限作者 仅限标题 作者和标题