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culex quinquefasciatus说是在世界的热带和亚热带地区分布的蚊子。这是一种夜间活性的,机会性的血液源,媒介是许多动物和人类疾病,包括西尼罗河病毒和禽类疟疾。当前向量控制方法(例如物理/化学)越来越无效;杀虫剂的使用还对人类和生态系统健康构成危害。基因组编辑的进步允许开发遗传昆虫控制方法,这些方法是特异性物种特异性的,从理论上讲,非常有效。crispr/cas9是一种细菌衍生的可编程基因编辑工具,可在一系列物种中起作用。我们描述了Quinquefasciatus中同源性修复的第一个成功的种系基因基因概括。使用CRISPR/CAS9,我们将编码荧光蛋白荧光团(HR5/IE1 -DSRED,CQ7SK -SGRNA)编码的SGRNA表达盒和标记基因集成到kynurenine 3 − 3-单核酶(KMO)基因中。我们达到的最小转化率为2.8%,类似于其他蚊子物种的速率。确定了预期基因座的精确敲门in。插入纯合子在早期幼虫中表现出白眼表型,并且通过化合物表现出隐性致命表型。这项工作为工程C. Quinquefasciatus提供了一种有效的方法,为该向量开发遗传控制工具提供了一种新工具。
(未通过同行评审认证)是作者/资助者。保留所有权利。未经许可就不允许重复使用。此预印本版的版权持有人于2021年5月30日发布。 https://doi.org/10.1101/2021.05.30.446338 doi:Biorxiv Preprint
•永远不要掉落,敲门,钻或淹没电动机。将电源线保持在适当的位置,如下所示。•安装前阅读所有安全说明。•不正确的安装会导致严重伤害,并且会使制造商的责任和保修无效。
摘要CRISPR/CAS9系统的使用在过去几年中迅速增长。在这里,描述了在人类非机智的体细胞系(NTHY-ORI)中的单核苷酸多态性的优化,突出了以克服有关递送和脱靶的问题的策略。,我们同时使用慢病毒和化学脂质作为递送剂以及两种创建双链断裂(DSB)的策略。前者通过经典的Cas9核酸酶(标准策略)诱导了DSB,而第二个则采用了修改后的CAS9产生单链破裂(SSB)。使用单链供体寡核苷酸或HR410-PA供体矢量(HR)进行敲门。可以通过将双镍酶系统与HR载体化学转染相结合来获得所需的细胞。此结果可能是由于DSB的类型造成的,这可能主要是由于Blunt(标准策略)和伸出时HR(Double Nickase)时的非同源末端连接而进行的。我们的结果表明,双镍酶适合在永生的NTHY-ORI细胞系中敲门,而标准CRISPR/ CAS9系统适合在/ DEL突变中创建基因敲除基因敲除。
CRISPR-CAS基因组编辑技术的最新进展在提高效率方面产生了重要的作用,以产生基因修饰的动物模型。在这项研究中,我们结合了四种非常有前途的方法,以提出高效的管道来产生敲击小鼠和大鼠模型。四种组合方法包括:AAV介导的DNA递送,单链DNA供体模板,2细胞胚胎修饰和CRISPR-CAS核糖核蛋白(RNP)电穿孔。使用这种新的组合方法,我们能够成功地产生含有CRE或FLP重组酶序列的成功靶向敲击大鼠模型,具有超过90%的敲击效率。此外,我们能够产生一个含有CRE重组酶靶向插入的敲门小鼠模型,其效率超过50%,将效率直接比较与其他常用方法。我们使用2细胞胚胎CRISPR-CAS9 RNP电穿孔技术进行了修改的AAV介导的DNA递送,已证明对生成敲入小鼠和敲门大鼠模型非常有效。