Paul Zamechnik和Mary Stephenson在1978年首次在Rous肉瘤病毒上发现了使用修饰的反义寡核苷酸的部分可能性(Zamecnik和Stephenson,1978年)。一年后,当海伦·唐尼斯·凯勒(Helen Donis-Keller)提出的结果表明,RNase H在RNA中切割RNA - DNA异质振动台时的结果(Donis-Keller,1979年)。花了三十年的时间才以未修饰的反义寡核苷酸的形式以未修饰的反义DNA(CUAD)生物技术(Oberemok,2008)和寡核苷酸杀虫剂(Brie -off y,Olinscides或DNA昆虫剂使用植物保护剂)(MAN 22)(MAN 2)(MAN)(MAN)(han)(han)(han)(oligonucletide)(Oberemok,2008年)(Oberememok,2008)(Oberemok,2008年),以概念上的形式应用了三十年的时间。 Gal'chinsky等人,2024年; Trilink Biotechnologies,2024)(图1)。在2008年,在未修饰的反义DNA寡核苷酸和接触杀虫剂之间放置了一个相等的迹象(Oberemok,2008)。到那时,磷氧矿体DNA合成的发展(Hoose等,2023)使得以负担得起的价格在大量害虫上合成和测试反义DNA碎片。寡核苷酸杀虫剂在海绵状的蛾lymantria dispar进行了第一次测试。靶向IAP基因的反义DNA寡核苷酸的接触应用在无杆状病毒和LDMNPV感染的海绵状蛾毛虫(Oberemok等,2016,2017; Kumar等,2022)上表现出了其有效性。在2019年,发生了三个重要的变化,这些变化显着推动了Cuad Biotechnology的发展。第二,寡核苷酸杀虫剂的长度成功降低至11首先,虫害的rRNA开始用作寡核苷酸杀虫剂的靶标(这导致寡核苷酸杀虫剂的效率提高,因为RRNA占细胞中所有RNA的80%,因此)(Oberemok等)(Oberemok等)(Oberemok等)。
董事批准启动前III-A-1-A-A:如果这种收购可以损害使用药物来控制人类,兽医医学或农业的药物,则将耐药性性状的故意转移给微生物。III-B节:在开始之前需要NIH/OBA和机构生物安全委员会注册的实验III-B-1:克隆毒素分子的克隆,其体重<100ng/kg的LD 50。III-B-2:已批准(根据IIII-A-1-A节)为NIH指南第III-C节中的重大行动的实验:需要制度性生物安全委员会注册和机构审查委员会和机构审查委员会和RAC批准,然后研究参与者招募III-C-1:有意转移DNA或RNA的rna或RNA源自RNA的主题。第三节:使用风险第2组,风险组3,风险组4或限制性药物作为宿主矢量系统III-D-1-A-A:将rDNA引入风险2组2组2组2组的实验,需要机构生物安全委员会注册III-D-1启动III-D-1实验之前的实验; BSL-2/ABSL-2示例:使用腺病毒,腺病毒 - 卢西法酶或与腺相关的病毒转染细胞;通常涉及使用病原体或缺陷的病原体载体(有或没有辅助病毒),例如腺病毒,腺病毒,腺病毒,杆状病毒,疱疹病毒,疱疹病毒,慢病毒,逆转录病毒,乳发病毒,乳酸病毒和囊泡病毒病毒病毒病毒,shigella,shigella,shigella,shymonella和E. asterylytorta。III-D-1-B:将rDNA引入风险3组代理; BSL-3/ABSL-3(UTHSC上的不寻常)III-D-1-C:将rDNA引入风险4组代理; BSL-4/ABSL-4(不允许在UTHSC上允许)III-D-1-D:在BSL-4/ABSL-4处将RDNA引入受限制的代理中,除非在NIH/OBA审查后逐案,否则将RDNA引入bsl-4/absl-4,除非在uthsc允许的III-D-2实验中,否则在NIH/OBA审查和USDA许可证(不允许在UTHSC)中限制了风险组的DNA,或者限制了风险组4,或限制了风险组4,或限制了风险组4,或者限制了风险组4,或
核糖核酸酶测定DRR:在37°C下将10 µL DRR与160 ng 2 Kb RNA转录物一起孵育10 µL DRR后,检测到无污染的RNase。对于DNase I:在37°C下以160 ng的2KB RNA转录本与160 ng的2KB RNA转录本孵育5U后,未检测到污染RNase 4小时。