• 体外转基因细胞、非病毒载体(如质粒)、复制缺陷型病毒载体(如腺病毒、腺相关病毒、慢病毒)、复制能力强的病毒载体(如麻疹、腺病毒、牛痘)、微生物载体(如李斯特菌、沙门氏菌)
摘要:由于过量使用抗生素,人们对抗菌耐药性(AMR)在疾病暴发中的作用的担忧正在增长。此外,消费者要求以可持续的方式对食品产量进行最小化和生产,而无需使用化学防腐剂或抗生素。葡萄种子提取物(GSE)是从葡萄酒行业浪费中分离出来的,是自然抗菌剂的有趣来源,尤其是在旨在增加可持续加工时。本研究的目的是获得对GSE对单核细胞增生李斯特氏菌(革兰氏阳性),大肠杆菌和沙门氏菌Typhimurium(Gram-negative)在体外模型系统中的微生物激活效率/潜力的系统理解。对于单核细胞增生李斯特菌,初始接种物浓度,细菌生长阶段和环境应激反应调节(SIGB)对GSE微生物失活潜能的不存在的影响。通常,发现GSE在失活的单核细胞增生李斯特菌中非常有效,对于更高的GSE浓度和较低的初始接种水平,其失活较高。通常,与指数相细胞相比,固定相细胞对GSE具有更大的耐药性/耐受性(对于相同的接种水平)。此外,SIGB似乎在单核细胞增生乳杆菌对GSE的耐药性中起重要作用。研究的革兰氏阴性细菌(大肠杆菌和s。鼠伤寒)不易GSE。我们的发现提供了对GSE对食品传播病原体微生物动态影响的影响的定量和机械理解,从而有助于对基于天然抗微生物的可持续食品安全策略进行更系统的设计。
雪松是一种独特的松树,以其木油而闻名。其传统治疗用途主要是抗菌和抗炎。本研究旨在调查从碎木中提取的雪松精油 (CDEO) 的抗菌特性。体外和原位评估了 CDEO 对抗革兰氏阴性 (G - ) 细菌的抗菌活性,其中包括铜绿假单胞菌 CCM 1595、肠道沙门氏菌肠道亚种 CCM 3807 和革兰氏阳性 (G + ) 细菌小肠结肠炎耶尔森氏菌 CCM 5671。单核细胞增生李斯特菌 CCM 4699、金黄色葡萄球菌金黄色葡萄球菌亚种 CCM 2461 和链球菌 CCM 4043。纸片扩散法最佳抑菌范围为4.67~9.67 mm,最低抑菌浓度范围为1.48~5.44 mg.mL -1 。对金黄色葡萄球菌和单核细胞增生李斯特菌的抑菌效果最明显。所用气相在较低的CDEO浓度62.5 µg.L -1下对猕猴桃模型中的铜绿假单胞菌和香蕉模型中的单核细胞增生李斯特菌表现出最佳抑菌效果,在较高的CDEO浓度500 µg.L -1下对马铃薯模型中的铜绿假单胞菌和黄瓜模型中的小肠结肠炎耶尔森菌表现出最佳抑菌效果。CDEO对蔬菜水果模型上的细菌表现出良好的抑菌效果,可能成为蔬菜水果储藏的新型防腐剂。
– 离体转基因细胞 – 非病毒载体(例如质粒) – 复制缺陷型病毒载体(例如腺病毒、腺相关病毒、慢病毒) – 复制能力强的病毒载体(例如麻疹、腺病毒、牛痘) – 微生物载体(例如李斯特菌、沙门氏菌) 干细胞/干细胞衍生
CRISPR-Cas 适应性免疫系统保护细菌和古细菌免受入侵的遗传寄生虫(包括噬菌体/病毒和质粒)的侵害。为了应对这种免疫力,许多噬菌体都具有抑制 CRISPR-Cas 靶向的抗 CRISPR (Acr) 蛋白。迄今为止,抗 CRISPR 基因主要在噬菌体或原噬菌体基因组中发现。在这里,我们使用李斯特菌 acrIIA1 基因作为标记,发现了厚壁菌中存在的质粒和其他接合元件上的 acr 基因座。在李斯特菌、肠球菌、链球菌和葡萄球菌基因组中发现的四个已识别基因可以抑制 II-A 型 SpyCas9 或 SauCas9,因此被命名为 acrIIA16-19。在粪肠球菌中,Cas9 靶向质粒的结合通过源自肠球菌结合元件的抗 CRISPR 得到增强,凸显了 Acrs 在质粒传播中的作用。相互共免疫沉淀表明,每个 Acr 蛋白
比利时传染病的准备结构(BE。最初的微生物研究病例是:李斯特菌,结核分枝杆菌,脑膜炎奈瑟氏菌,沙门氏菌,流感和SARS-COV-2。在这里,我们介绍了Be.BE.准备架构的组成部分:中央生物信息学平台(Bioit)平台,中央国家参考中心(NRC)平台和HealthData.Be平台(图1)。
全球摘要,每天数十亿人食用牛奶和乳制品。在15个牛奶收集中心(牛奶超市)收集了牛奶样品。根据分层随机采样设计。样品的总板数(TPC)。确定了选定的病原体(如单核细胞增生李斯特菌,大肠杆菌和沙门氏菌)的患病率。TPC,精神分裂和热嗜热的平均计数分别为12×106、7.5×103和9.1×103。在价格激励计划中,MCC将小于106 CFU ML -1的TPC用作基本标准。从测试的150个牛奶样品中,大约90%被大肠菌菌污染,大肠杆菌阳性65%,平均计数为103至104 CFU ML -1。从超过60%的样品中分离出金黄色葡萄球菌,平均计数为12×103。同时,在20(33.5%)样品中也检测到大肠杆菌。然而,仅在1.4%的样品中检测到沙门氏菌,中央区域的分离频率最高。确定了13种沙门氏菌血清型,包括S. Muenchen,S。Anatum和S. Agona。从4.4%的李斯特菌阳性样品中分离出47种李斯特菌菌株,包括单核细胞增生李斯特菌(1.9%),Innocua(2.1%)和L. welshimeri(0.6%)。存在致病细菌,例如大肠杆菌,沙门氏菌和李斯特菌属。在生牛奶中是公共卫生的关注点,因为喝生牛奶仍然被认为对农村人口的健康有益。引用本文。Altwanesy S,Abokridighah A.Alq J Med App Sci。从在黎波里市牛奶超级市场收集的生牛奶中隔离细菌。2024; 7(3):546-549。 https://doi.org/10.54361/ajmas.247317简介牛奶是人类的营养食品,但它也是许多微生物(尤其是细菌病原体)生长的好媒介。乳酸球菌,乳杆菌,链球菌,葡萄球菌和微球菌属。是新鲜牛奶的常见细菌菌群之一[1]。如果在进一步加工之前保持牛奶保持凉爽,则菌群也可能占主导地位。牛奶中大肠菌菌和病原体的检测表明,所使用的乳房,牛奶器皿或供水可能会受到细菌的污染[2]。从健康牛中提取新鲜牛奶时,其微生物负载通常很低(小于1000 mL -1)。但是,在室温下储存一段时间后,负载可以上升到100倍或更高。但是,在农场的挤奶和运输到加工厂之间,在冷藏温度下存放在干净的容器中的牛奶可能会延迟初始微生物负荷的增加,并防止牛奶中微生物的繁殖。用新鲜清洁牛奶污染乳腺炎牛奶可能是散装牛奶的高微生物负荷的原因之一[3,4]。
RAW,即食(RTE)海鲜产品,例如酸橘汁腌鱼,Poke和Sushi,在全球范围内经历了增长的需求;但是,这些产品有可能被食源性病原体污染。这项研究的目的是确定在美国加利福尼亚州奥兰治县的零售一级出售的酸橘汁腌鱼,poke和寿司菜的Escher Ichiacoli /Coliforms,沙门氏菌和李斯特菌的普遍存在。在测试过程中检测到的其他生物。从加利福尼亚州奥兰治县的餐馆和杂货店收集了总共105种原始的酸橘汁腌鱼,oke和寿司样品。样品使用食品药品监督管理局(FDA)BACTE RIOLICOGALICY手册(BAM)的方法测试了沙门氏菌和李斯特菌。大肠杆菌和总大肠菌列,利用3 M petrifilm板进行了列举。总体而言,普通大肠杆菌的两个样品(1.9%)为阳性,范围为5-35 cfu/g。在85个样品(81%)中检测到大肠菌群,范围为5-1710 CFU/g。根据Kruskal-Wallis H测试,酸橘汁腌鱼样品中的平均大肠菌水平明显高于寿司样品(95 cfu/g)的水平(95 cfu/g)。oke样品中的大肠菌属水平(196 cfu/g)与酸橘汁腌鱼或寿司中的大肠杆菌水平没有显着差异。根据RTE海鲜的标准,所有级别的大肠杆菌和大肠菌群都被认为是可以接受的或Satis工厂/边界。均未对沙门氏菌或单核细胞增生李斯特菌呈阳性的样品;然而,在包括李斯特菌属的17个样品中检测到其他微生物。,Proteus mirabilis,Providencia rettgeri和Morganella Morganii。这项研究的结果是新颖的,因为它们介绍了在美国零售业出售的酸橘汁腌鱼,oke和寿司菜肴的微生物安全和质量的数据,并提供了三种RAW,RTE海鲜的Com Parison。
摘要 已发现香叶醇和芳樟醇在体外可有效对抗食源性微生物。 然而,由于它们的疏水性,很难在水分含量高的食物中均匀分散,导致活性急剧丧失。 该研究的目的是制备香叶醇或芳樟醇纳米乳液,并研究它们在肉类模拟培养基中对抗大肠杆菌 K12、无害李斯特菌和伦登假单胞菌的效果。 琼脂扩散试验表明香叶醇和芳樟醇对所有细菌都有有效的抗菌活性。 动态光散射表明香叶醇和芳樟醇纳米乳液的平均直径分别为 68.22±2.46 和 173.59±4.15 纳米。 杀灭试验结果表明,这两种纳米乳液都能显著减少大肠杆菌和无害李斯特菌的数量,大约 3 log CFU/ml。事实证明,Ps. lundensis 对两种纳米乳剂的抵抗力更强,细菌数量减少了约 1.2 log CFU/ml。总体而言,这项研究表明,含有香叶醇或芳樟醇的纳米乳剂是一种很有前途的抗菌系统,可以改善食品保鲜和食品安全。
1。al-Zeyara,S.A.,B。Jarvis和B.M.Mackey。2011。天然菌群对食物的抑制作用对富集肉汤中李斯特氏菌生长的生长。int。J.食物微生物。145:98 115。2。Andrews,W.H.,H。Wang,A。Jacobson和T. Hammack,细菌分析手册,第5章。 沙门氏菌。 2017。 3。 Bailey,J.S。 和N.A. Cox。 1992。 普遍的普遍肉汤,用于同时检测食品中沙门氏菌和李斯特菌。 J. 食物蛋白质。 55:256-259。 4。 Baranyi,J。和T.A. 罗伯茨。 1994。 一种动态方法来预测食物中细菌的生长。 int。 J. 食物微生物。 23:277-294。 5。 Brehm-Stecher,B.,C。Young,L.A。Jaykus和M.L. tortorello。 2009。 样本准备:被遗忘的开始。 J. 食物蛋白质。 72:1774-1789。 6。 Chen,J。,J。Tang,J。Liu,Z。Cai和X.Bai。 2012。 多路复用PCR的开发和评估,用于同时检测五种食源性病原体。 J. Appl。 微生物。 112:823-830。 7。 Chen,J。,J。Tang,A.K。 Bhunia,C。Tang,C。Wang和S. Hui。 2015。 开发多种病原体富集肉汤,以同时生长五种常见的食源性病原体。Andrews,W.H.,H。Wang,A。Jacobson和T. Hammack,细菌分析手册,第5章。沙门氏菌。 2017。 3。 Bailey,J.S。 和N.A. Cox。 1992。 普遍的普遍肉汤,用于同时检测食品中沙门氏菌和李斯特菌。 J. 食物蛋白质。 55:256-259。 4。 Baranyi,J。和T.A. 罗伯茨。 1994。 一种动态方法来预测食物中细菌的生长。 int。 J. 食物微生物。 23:277-294。 5。 Brehm-Stecher,B.,C。Young,L.A。Jaykus和M.L. tortorello。 2009。 样本准备:被遗忘的开始。 J. 食物蛋白质。 72:1774-1789。 6。 Chen,J。,J。Tang,J。Liu,Z。Cai和X.Bai。 2012。 多路复用PCR的开发和评估,用于同时检测五种食源性病原体。 J. Appl。 微生物。 112:823-830。 7。 Chen,J。,J。Tang,A.K。 Bhunia,C。Tang,C。Wang和S. Hui。 2015。 开发多种病原体富集肉汤,以同时生长五种常见的食源性病原体。沙门氏菌。2017。3。Bailey,J.S。 和N.A. Cox。 1992。 普遍的普遍肉汤,用于同时检测食品中沙门氏菌和李斯特菌。 J. 食物蛋白质。 55:256-259。 4。 Baranyi,J。和T.A. 罗伯茨。 1994。 一种动态方法来预测食物中细菌的生长。 int。 J. 食物微生物。 23:277-294。 5。 Brehm-Stecher,B.,C。Young,L.A。Jaykus和M.L. tortorello。 2009。 样本准备:被遗忘的开始。 J. 食物蛋白质。 72:1774-1789。 6。 Chen,J。,J。Tang,J。Liu,Z。Cai和X.Bai。 2012。 多路复用PCR的开发和评估,用于同时检测五种食源性病原体。 J. Appl。 微生物。 112:823-830。 7。 Chen,J。,J。Tang,A.K。 Bhunia,C。Tang,C。Wang和S. Hui。 2015。 开发多种病原体富集肉汤,以同时生长五种常见的食源性病原体。Bailey,J.S。和N.A.Cox。 1992。 普遍的普遍肉汤,用于同时检测食品中沙门氏菌和李斯特菌。 J. 食物蛋白质。 55:256-259。 4。 Baranyi,J。和T.A. 罗伯茨。 1994。 一种动态方法来预测食物中细菌的生长。 int。 J. 食物微生物。 23:277-294。 5。 Brehm-Stecher,B.,C。Young,L.A。Jaykus和M.L. tortorello。 2009。 样本准备:被遗忘的开始。 J. 食物蛋白质。 72:1774-1789。 6。 Chen,J。,J。Tang,J。Liu,Z。Cai和X.Bai。 2012。 多路复用PCR的开发和评估,用于同时检测五种食源性病原体。 J. Appl。 微生物。 112:823-830。 7。 Chen,J。,J。Tang,A.K。 Bhunia,C。Tang,C。Wang和S. Hui。 2015。 开发多种病原体富集肉汤,以同时生长五种常见的食源性病原体。Cox。1992。普遍的普遍肉汤,用于同时检测食品中沙门氏菌和李斯特菌。J.食物蛋白质。55:256-259。 4。 Baranyi,J。和T.A. 罗伯茨。 1994。 一种动态方法来预测食物中细菌的生长。 int。 J. 食物微生物。 23:277-294。 5。 Brehm-Stecher,B.,C。Young,L.A。Jaykus和M.L. tortorello。 2009。 样本准备:被遗忘的开始。 J. 食物蛋白质。 72:1774-1789。 6。 Chen,J。,J。Tang,J。Liu,Z。Cai和X.Bai。 2012。 多路复用PCR的开发和评估,用于同时检测五种食源性病原体。 J. Appl。 微生物。 112:823-830。 7。 Chen,J。,J。Tang,A.K。 Bhunia,C。Tang,C。Wang和S. Hui。 2015。 开发多种病原体富集肉汤,以同时生长五种常见的食源性病原体。55:256-259。4。Baranyi,J。和T.A. 罗伯茨。 1994。 一种动态方法来预测食物中细菌的生长。 int。 J. 食物微生物。 23:277-294。 5。 Brehm-Stecher,B.,C。Young,L.A。Jaykus和M.L. tortorello。 2009。 样本准备:被遗忘的开始。 J. 食物蛋白质。 72:1774-1789。 6。 Chen,J。,J。Tang,J。Liu,Z。Cai和X.Bai。 2012。 多路复用PCR的开发和评估,用于同时检测五种食源性病原体。 J. Appl。 微生物。 112:823-830。 7。 Chen,J。,J。Tang,A.K。 Bhunia,C。Tang,C。Wang和S. Hui。 2015。 开发多种病原体富集肉汤,以同时生长五种常见的食源性病原体。Baranyi,J。和T.A.罗伯茨。1994。一种动态方法来预测食物中细菌的生长。int。J.食物微生物。23:277-294。 5。 Brehm-Stecher,B.,C。Young,L.A。Jaykus和M.L. tortorello。 2009。 样本准备:被遗忘的开始。 J. 食物蛋白质。 72:1774-1789。 6。 Chen,J。,J。Tang,J。Liu,Z。Cai和X.Bai。 2012。 多路复用PCR的开发和评估,用于同时检测五种食源性病原体。 J. Appl。 微生物。 112:823-830。 7。 Chen,J。,J。Tang,A.K。 Bhunia,C。Tang,C。Wang和S. Hui。 2015。 开发多种病原体富集肉汤,以同时生长五种常见的食源性病原体。23:277-294。5。Brehm-Stecher,B.,C。Young,L.A。Jaykus和M.L.tortorello。2009。样本准备:被遗忘的开始。J.食物蛋白质。72:1774-1789。6。Chen,J。,J。Tang,J。Liu,Z。Cai和X.Bai。 2012。 多路复用PCR的开发和评估,用于同时检测五种食源性病原体。 J. Appl。 微生物。 112:823-830。 7。 Chen,J。,J。Tang,A.K。 Bhunia,C。Tang,C。Wang和S. Hui。 2015。 开发多种病原体富集肉汤,以同时生长五种常见的食源性病原体。Chen,J。,J。Tang,J。Liu,Z。Cai和X.Bai。2012。多路复用PCR的开发和评估,用于同时检测五种食源性病原体。J. Appl。微生物。112:823-830。7。Chen,J。,J。Tang,A.K。 Bhunia,C。Tang,C。Wang和S. Hui。 2015。 开发多种病原体富集肉汤,以同时生长五种常见的食源性病原体。Chen,J。,J。Tang,A.K。Bhunia,C。Tang,C。Wang和S. Hui。2015。开发多种病原体富集肉汤,以同时生长五种常见的食源性病原体。J. Gen. Appl。 微生物。 61:224-231。 8。 Cheng,C.M。,K。Van,W。Lin和R.M. 红宝石。 2009。 实时PCR 24小时快速方法检测食品中沙门氏菌的实时验证。 J. 食物蛋白质。 72:945-951。 9。 Cheng,C.M.,W。Lin,K.T。 van,L。phan,n.n。 tran和D. Farmer。 2008。 使用实时PCR快速检测食品中沙门氏菌。 J. 食物蛋白质。 71:2436-2441。 10。 国内和进口产品分配2014财年DFP&G#14-05/14-06。 “在木瓜方法中检测沙门氏菌的样品制备” pg。 50。http://inside.fda.gov:9003/downloads/programsinitiatives/food/fieldprograms/ucm400671.pdf11。 Doran,T。Hanes,D.,Weagent,S.,Torosian,S.,Burr,D.,Yoshitomi,K.,Jinneman,K.,Penev,R.,Adeyemo,O.,Williams-Hill,D。和P. Morin。 2013。 蕨类植物念珠筛查方法。 Fern-Mic.0004.02。 12。 冯,P.,S.D。 Weagant和K. Jinneman,细菌学分析手册,第4A章。 腹泻大肠杆菌。 2017。 13。 Gasanov,U.,D。Hughes和P.M.汉斯布罗。 2005。 剖析和鉴定李斯特氏菌和单核细胞增生李斯特菌的方法:综述。 fems微生物。 修订版 29:851–875。 14。 Gehring,A.G.,D.M。 Albin,又名 Bhunia,H。Kim,S.A。Reed和S. Tu。J. Gen. Appl。微生物。61:224-231。8。Cheng,C.M。,K。Van,W。Lin和R.M. 红宝石。 2009。 实时PCR 24小时快速方法检测食品中沙门氏菌的实时验证。 J. 食物蛋白质。 72:945-951。 9。 Cheng,C.M.,W。Lin,K.T。 van,L。phan,n.n。 tran和D. Farmer。 2008。 使用实时PCR快速检测食品中沙门氏菌。 J. 食物蛋白质。 71:2436-2441。 10。 国内和进口产品分配2014财年DFP&G#14-05/14-06。 “在木瓜方法中检测沙门氏菌的样品制备” pg。 50。http://inside.fda.gov:9003/downloads/programsinitiatives/food/fieldprograms/ucm400671.pdf11。 Doran,T。Hanes,D.,Weagent,S.,Torosian,S.,Burr,D.,Yoshitomi,K.,Jinneman,K.,Penev,R.,Adeyemo,O.,Williams-Hill,D。和P. Morin。 2013。 蕨类植物念珠筛查方法。 Fern-Mic.0004.02。 12。 冯,P.,S.D。 Weagant和K. Jinneman,细菌学分析手册,第4A章。 腹泻大肠杆菌。 2017。 13。 Gasanov,U.,D。Hughes和P.M.汉斯布罗。 2005。 剖析和鉴定李斯特氏菌和单核细胞增生李斯特菌的方法:综述。 fems微生物。 修订版 29:851–875。 14。 Gehring,A.G.,D.M。 Albin,又名 Bhunia,H。Kim,S.A。Reed和S. Tu。Cheng,C.M。,K。Van,W。Lin和R.M.红宝石。2009。实时PCR 24小时快速方法检测食品中沙门氏菌的实时验证。J.食物蛋白质。72:945-951。9。Cheng,C.M.,W。Lin,K.T。 van,L。phan,n.n。 tran和D. Farmer。 2008。 使用实时PCR快速检测食品中沙门氏菌。 J. 食物蛋白质。 71:2436-2441。 10。 国内和进口产品分配2014财年DFP&G#14-05/14-06。 “在木瓜方法中检测沙门氏菌的样品制备” pg。 50。http://inside.fda.gov:9003/downloads/programsinitiatives/food/fieldprograms/ucm400671.pdf11。 Doran,T。Hanes,D.,Weagent,S.,Torosian,S.,Burr,D.,Yoshitomi,K.,Jinneman,K.,Penev,R.,Adeyemo,O.,Williams-Hill,D。和P. Morin。 2013。 蕨类植物念珠筛查方法。 Fern-Mic.0004.02。 12。 冯,P.,S.D。 Weagant和K. Jinneman,细菌学分析手册,第4A章。 腹泻大肠杆菌。 2017。 13。 Gasanov,U.,D。Hughes和P.M.汉斯布罗。 2005。 剖析和鉴定李斯特氏菌和单核细胞增生李斯特菌的方法:综述。 fems微生物。 修订版 29:851–875。 14。 Gehring,A.G.,D.M。 Albin,又名 Bhunia,H。Kim,S.A。Reed和S. Tu。Cheng,C.M.,W。Lin,K.T。van,L。phan,n.n。tran和D. Farmer。2008。使用实时PCR快速检测食品中沙门氏菌。J.食物蛋白质。71:2436-2441。10。国内和进口产品分配2014财年DFP&G#14-05/14-06。“在木瓜方法中检测沙门氏菌的样品制备” pg。50。http://inside.fda.gov:9003/downloads/programsinitiatives/food/fieldprograms/ucm400671.pdf11。Doran,T。Hanes,D.,Weagent,S.,Torosian,S.,Burr,D.,Yoshitomi,K.,Jinneman,K.,Penev,R.,Adeyemo,O.,Williams-Hill,D。和P. Morin。2013。蕨类植物念珠筛查方法。Fern-Mic.0004.02。12。冯,P.,S.D。Weagant和K. Jinneman,细菌学分析手册,第4A章。腹泻大肠杆菌。2017。13。Gasanov,U.,D。Hughes和P.M.汉斯布罗。 2005。 剖析和鉴定李斯特氏菌和单核细胞增生李斯特菌的方法:综述。 fems微生物。 修订版 29:851–875。 14。 Gehring,A.G.,D.M。 Albin,又名 Bhunia,H。Kim,S.A。Reed和S. Tu。Gasanov,U.,D。Hughes和P.M.汉斯布罗。2005。剖析和鉴定李斯特氏菌和单核细胞增生李斯特菌的方法:综述。fems微生物。修订版29:851–875。14。Gehring,A.G.,D.M。 Albin,又名 Bhunia,H。Kim,S.A。Reed和S. Tu。Gehring,A.G.,D.M。Albin,又名 Bhunia,H。Kim,S.A。Reed和S. Tu。Albin,又名Bhunia,H。Kim,S.A。Reed和S. Tu。Bhunia,H。Kim,S.A。Reed和S. Tu。2012。大肠杆菌O157:H7,单核细胞增生李斯特菌,肠道沙门氏菌和小肠结肠炎的混合培养物富集。食物控制。26:269-273。15。Hitchins,A.D。,K。Jinneman和Y. Chen,细菌学分析手册,第10章。单核细胞增生李斯特菌的检测和枚举。2017。16。Jasson,V.,A。Rajkovic,J。Debevere和M. Uyttendaele。 2009。 单核细胞增生李斯特菌的复苏和生长的动力学作为选择适当的富集条件作为快速检测方法的先前步骤的工具。 食物微生物。 26:88-93。 17。 Kanki,M.,K。Seto,J。Sakata,T。Harada和Y. Kumeda。 2009。 使用普遍的preenrichment肉汤在食物样品中同时富集了产生大肠杆菌O157和O26的大肠杆菌O157和O26和沙门氏菌的富集。 J. 食物蛋白质。 72:2065-2070。Jasson,V.,A。Rajkovic,J。Debevere和M. Uyttendaele。2009。单核细胞增生李斯特菌的复苏和生长的动力学作为选择适当的富集条件作为快速检测方法的先前步骤的工具。食物微生物。26:88-93。17。Kanki,M.,K。Seto,J。Sakata,T。Harada和Y. Kumeda。2009。使用普遍的preenrichment肉汤在食物样品中同时富集了产生大肠杆菌O157和O26的大肠杆菌O157和O26和沙门氏菌的富集。J.食物蛋白质。72:2065-2070。