报告(N=622 名参与者)或修订停止日期后的审查天数(N=883 名参与者)以及针对主要依从性终点的预先指定的主要分析(N=883 名参与者)............................................................................................. 30
1-Aryl-1 H -1,2,3-三唑是生物活性分子和药物11中重要的结构基序,导致了许多合成方法的构建方法。12这些方法包括1,2,3-三唑与由金属催化的交叉偶联促进的合适的芳基卤化物(ARBR,ARI)的直接反应。然而,这些倾向于通过限制其效用的选择性差的选择性提供1-芳基异构体的混合物。首选13,14种方法是,可以通过适当选择具有DE ned且可预测的反应性的试剂/合成子来控制1-芳基三唑的特异性。铜(I)催化叠氮化物 - 炔烃环加成(CUAAC)促进了[3 + 2]旋风,其中三个连续的n原子由芳基叠氮化物Synthon(AR - N 1 - N 2 - N 2 - N 3)提供。芳基叠氮化物很容易通过重18Zonium盐从苯胺中获得,因此这种方法变得流行,尤其是与适当保护的炔烃结合在一起时(例如tms - c ^ ch,C 4 - C 5合成),必要时可以方便地删除。1986年Sakai等。 描述了一种新方法,可以在轻度条件下从原代胺中制备1,2,3-三唑,A,A-Dichloro tosylhy-drazone 2a作为叠氮化物的无金属替代品 - 碱性环节。 15直到2012年Westermann等人,Sakai的反应可能被低估了。 探索了反应的范围和局限性。 16结果和1986年Sakai等。描述了一种新方法,可以在轻度条件下从原代胺中制备1,2,3-三唑,A,A-Dichloro tosylhy-drazone 2a作为叠氮化物的无金属替代品 - 碱性环节。15直到2012年Westermann等人,Sakai的反应可能被低估了。探索了反应的范围和局限性。16结果和
您将在实验室中学习如何安全处理和使用有机化学品。这将包括正确使用化学通风橱和个人防护设备。您将识别常见有机官能团(烷烃、烯烃、炔烃、烷基卤化物、醇、醚和胺)的化学性质,并测试这些物质的化学反应性。还将使用分子模型探索有机分子中的立体化学和手性概念。将遵循单步合成方案,并探索常见的合成有机技术。这些技术将包括液-液萃取、基于蒸馏、过滤和色谱的分离,以及通过熔点测定、红外光谱和色谱技术对有机分子进行简单表征。学分:3.0 先决条件:无 共同要求:化学 150 同等课程:无
该碳通过晶格的逐渐溶解最初会引起地下,最终引起块状碳化物。[12,29]对于炔烃半氢化反应,该PDC X相通过抑制对烷烃的过度氢化来提高对烷烃的选择性。[12,13,18,22,29]这种对选择性的影响是多方面的。首先,最大的层阻止氢填充地下。[13]此外,现有的溶解氢通过碳化物相的迁移率降低了。[22,12]最后,碳化物相增加了进料的进一步碳氢化合物的吸附。[29]在低转化率下,藻类的表面中毒作用也是高选择性的原因。[18]这种提高选择性的一些证明包括乙炔,丙烷和1-pentyne的半氢化。[12,22,28,29]
ucd-pymt,产生显性阴性蛋白,该蛋白特异性抑制了由Charles Vinson(NCI,Bethesda,MD,MD,USA)提供的C/EBP成员的DNA结合。根据制造商的说明,使用JetPEI(Polytransfection; Qbiogene,Irvine,CA,美国)进行瞬态转染。允许转染进行16小时,并用1 nm TCDD或0.1%DMSO(对照)处理细胞24小时,然后再诱导凋亡或用TCDD处理TCDD进行RNA表达分析。用于DRE荧光素酶报告基因测定UCD-PYMT细胞用DRE报告基因质粒瞬时转染。 16小时后,用1 nm TCDD或0.1%DMSO(对照)处理4小时。将细胞裂解,并使用Luminometer(Berthold Lumat LB9501/16;宾夕法尼亚州匹兹堡)使用荧光素酶报告基因测定系统(Promega Corp.,Madison,WI)测量荧光素酶活性。 使用Bradford染料测定法(Bio-Rad Laboratories,Inc。,Hercules,CA)将相对光单元标准化为蛋白质浓度。用于DRE荧光素酶报告基因测定UCD-PYMT细胞用DRE报告基因质粒瞬时转染。16小时后,用1 nm TCDD或0.1%DMSO(对照)处理4小时。将细胞裂解,并使用Luminometer(Berthold Lumat LB9501/16;宾夕法尼亚州匹兹堡)使用荧光素酶报告基因测定系统(Promega Corp.,Madison,WI)测量荧光素酶活性。使用Bradford染料测定法(Bio-Rad Laboratories,Inc。,Hercules,CA)将相对光单元标准化为蛋白质浓度。
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汽油范围碳氢化合物 (GRH) 有两种:汽油范围 GRH 和柴油范围 GRH。DRH (PHC) 包括多环芳烃和长链烷烃等。GRH 包括甲苯、苯、二甲苯和乙苯等碳氢化合物 [3]。糖苷水解酶(称为木聚糖酶 (EC 3.2.1.x))可催化木聚糖中 1,4-D-木糖苷键的内水解。包括细菌、藻类、真菌、原生动物、腹足类和人足类在内的多种生物都会产生这种普遍存在的酶组,这些酶参与木糖的形成(木糖是细胞代谢的关键碳源)以及植物病原体对植物细胞的感染 [4]。木聚糖是自然界中第二常见的多糖,是植物细胞的主要结构成分,约占整个地球可再生有机碳的三分之一。半纤维素、木葡聚糖、葡甘露聚糖、半乳葡甘露聚糖和阿拉伯半乳聚糖的主要成分是木聚糖 [4, 5]。在酿造过程中,木聚糖酶可以提高麦芽汁的过滤性并减少最终产品的浑浊度。它们还可用于咖啡提取和速溶咖啡的制备、洗涤剂、植物细胞的原生质体化、生产用作抗菌剂或抗氧化剂的药理活性多糖,以及生产用作表面活性剂的烷基糖苷 [6]。
菊苣主根积累倍半萜内酯乳酸素、乳苦素和 8-脱氧乳酸素,主要以草酸形式存在。菊苣倍半萜内酯的生物合成途径仅部分阐明;将法呢基焦磷酸转化为木香烃内酯的酶已被描述。木香烃内酯转化为三环结构愈创木香烃内酯的下一个生物合成步骤,迄今为止在菊苣中尚未阐明。在这项研究中,在菊苣中发现了三种假定的木香烃内酯合酶基因,分别名为 CiKLS1、CiKLS2 和 CiKLS3。使用酵母微粒体测定法在体外证明了它们将木香烃内酯转化为木香烃内酯的活性。接下来,将 CRISPR/Cas9 试剂引入菊苣原生质体,以灭活多个菊苣 KLS 基因,并成功再生了几个菊苣品系。通过 CRISPR/Cas9 方法灭活菊苣中的 kauniolide 合酶基因,导致菊苣叶和主根中倍半萜内酯的生物合成中断。在菊苣主根中观察到木香烃内酯及其结合物的积累量很高,即 1.5 mg/g FW,但在叶子中没有。这些结果证实,尽管程度不同,但所有这三个基因都有助于 STL 的积累。这些观察结果表明,菊苣基因组上串联的三个基因编码 kauniolide 合酶,可启动菊苣中木香烃内酯向倍半萜内酯的转化。