抽象背景有雌激素受体(ER)+,孕酮受体(PR)+和HER2+乳腺癌的高效治疗策略。但是,对于被诊断为三阴性乳腺癌的妇女中的10% - 15%的靶向治疗策略有限。在这里,我们假设靶向药物的ER会诱导表型变化,以使乳腺肿瘤细胞对免疫介导的杀戮敏感,无论其ER状态如何。进行了实时细胞分析,流式细胞仪,QRT-PCR,蛋白质印迹和多重RNA分析,以表征ER+和ER-乳腺癌细胞,并询问ER靶向药物的表型效应。通过他莫昔芬代谢产物4-羟基莫昔芬(4-OHT)和输卵剂的乳腺癌细胞对免疫细胞杀死的敏感性,是通过体外健康抑制天然杀伤细胞111释放内杀死测定方法来确定的。进行了一项合成性肿瘤研究,以在体内验证这些发现。用他莫昔芬代谢产物4- OHT或Fulvestrant进行预处理的结果导致ER+和ER-乳腺癌细胞的自然杀伤(NK)介导的细胞裂解增加。通过4-OHT处理的ER+和ER-细胞的多重RNA分析分析,我们确定了凋亡和死亡受体信号传导途径的激活增加,并确定了G蛋白偶联受体的雌激素(GPR30)参与度是一种假定的机制,是一种用于免疫开发的机制。使用特定的GPR30激动剂G-1,我们证明了靶向GPR30信号传导的靶向激活导致NK细胞杀死增加。此外,我们表明GPR30的敲低抑制了4-OHT和拟驱动介导的NK细胞杀伤的增加,这表明这取决于GPR30的表达。此外,我们证明了这种机制在4-OHT耐药的MCF7细胞系中保持活跃,表明即使在具有抗ER+肿瘤的患者群体中,对他莫昔芬的细胞毒性作用有抗性,4-OHT治疗也会使它们敏感它们对免疫介导的杀害。此外,我们发现肿瘤细胞的过饱和预处理与IL-15超级飞机N-803治疗NK细胞的处理协同,并使肿瘤细胞敏感到靶向高亲和力天然杀伤剂(T-Hank)细胞的编程死亡凸起1(PD-L1)。最后,我们证明了荧光动物和N-803的组合有效地在体内三阴性乳腺癌。
摘要简介:PD-1/PD-L1检查点的小分子抑制剂的追求与针对该免疫检查点的单克隆抗体的广泛发展并行。制定药物筛查策略是为了识别新型的PD-L1抑制剂。方法:已经进行了基于分子对接的纯筛选,该筛选已经进行了PD-L1蛋白二聚体,以识别新的粘合剂。使用微观嗜热(MST)As-说,已确定的配体与PD-L1的结合已通过实验验证。基于酪氨酸磷酸酶SHP-2的激活,证明了化合物的细胞效应,我们证明了荧光共振能量转移(FRET)测定。结果:我们已经确定有效的Wnt/β-catenin抑制剂KYA1797K是弱PD-L1粘合剂。分子对接表明,该化合物可以与Pd-L1二聚体的界面结合,几何形状可叠加到参考PD-L1抑制剂BMS-202的几何形状。源自天然
虽然存在多种研究 CRISPR 脱靶 (OT) 编辑的方法,但在临床相关编辑过程后,很少有方法在原代细胞中进行过头对头比较。因此,我们在体外造血干细胞和祖细胞 (HSPC) 编辑后比较了计算机模拟工具 (COSMID、CCTop 和 Cas-OFFinder) 和经验方法 (CHANGE-Seq、CIRCLE-Seq、DISCOVER-Seq、GUIDE-Seq 和 SITE-Seq)。我们使用 11 种与 Cas9 蛋白复合的不同 gRNA(高保真 [HiFi] 或野生型版本)进行编辑,然后对通过计算机模拟和经验方法确定的指定 OT 位点进行靶向下一代测序。我们平均每个向导 RNA (gRNA) 识别出少于一个 OT 位点,使用 HiFi Cas9 和 20-nt gRNA 生成的所有 OT 位点都可通过除 SITE-seq 之外的所有 OT 检测方法识别。这导致大多数 OT 提名工具具有高灵敏度,并且 COSMID、DISCOVER-Seq 和 GUIDE-Seq 获得了最高的阳性预测值 (PPV)。我们发现经验方法无法识别生物信息学方法未识别的 OT 位点。这项研究支持可以开发出既能保持高灵敏度又能保持 PPV 的精细生物信息学算法,从而能够更有效地识别潜在的 OT 位点,而不会影响对任何给定 gRNA 的彻底检查。
胞嘧啶碱基编辑能够在不造成 DNA 双链断裂的情况下安装特定点突变,这对基因治疗等各种应用都有好处,但需要进一步降低脱靶风险并开发有效的递送方法。在这里,我们展示了基于结构的胞嘧啶碱基编辑系统 Target-AID 的合理工程设计,以最大限度地减少其脱靶效应和分子大小。通过密集而仔细的截断,其脱氨酶 PmCDA1 的 DNA 结合域被消除,并引入额外的突变以恢复酶功能。所得的 tCDA1EQ 在与 Cas9 的 N 端融合(AID-2S)或镶嵌结构(AID-3S)中有效,显示出最小化的 RNA 介导的编辑和 gRNA 依赖性/非依赖性的 DNA 脱靶,如在人类细胞中评估的那样。与较小的Cas9直系同源系统(SaCas9)结合,创建在AAV载体大小限制内的胞嘧啶碱基编辑系统。
摘要。DNA 折纸是 DNA 纳米技术的支柱,人们已经投入了大量精力来了解自组装反应的各种因素如何影响目标折纸结构的最终产量。本研究分析了碱基序列如何通过在自组装过程中产生脱靶副反应来影响折纸产量。脱靶结合是一种未被充分探索的现象,可能会在折纸折叠途径中引入不必要的组装障碍和动力学陷阱。我们开发了一种多目标计算方法,该方法采用给定的折纸设计,并对不同的支架序列(及其互补的钉书钉)进行评分,以确定四种不同类型的脱靶结合事件的发生率。使用我们在 DNA 折纸上的方法,我们可以选择生物序列(如 lambda DNA 噬菌体)的“坏”区域,当用作折纸支架序列时,每种形状的脱靶副反应数量过多。我们利用高分辨率原子力显微镜 (AFM) 显示,尽管支架序列具有完全互补的订书钉组,但这些支架序列在体外大多无法折叠成目标三角形或矩形结构。相反,使用我们的方法,我们还可以选择生物序列的“良好”区域。这些序列缺乏脱靶反应,当用作折纸支架时,可以更成功地折叠成其目标结构,如 AFM 所表征。这些结果已在两个不同实验室的“盲”折叠实验中得到验证,其中实验者不知道哪些支架是好的或坏的折叠者。为了进一步研究组装行为,光镊实验揭示了不同的机械响应曲线,与支架特定的脱靶相互作用相关。虽然 GC 含量较高的变体显示出较高的平均展开力,但脱靶结合较低的变体表现出更均匀的力-延伸曲线。我们的分析证实,高脱靶结合会导致结构异质性增加,如 OT 实验展开轨迹的聚类行为所示。总体而言,我们的工作表明,如果脱靶反应足够普遍,碱基序列中隐含的脱靶反应会破坏折纸自组装过程,并且我们提供了一种软件工具来选择支架序列,以最大限度地减少任何 DNA 折纸设计的脱靶反应。
未经同行评审认证)是作者/资助者。保留所有权利。未经许可不得重复使用。此预印本的版权所有者(此版本于 2020 年 6 月 4 日发布。;https://doi.org/10.1101/2020.06.04.134759 doi:bioRxiv preprint
结果:我们首次对 CRISPR/Cas9 预测进行了独立评估。为此,我们收集了八项 SpCas9 脱靶研究的数据,并将它们与流行算法预测的位点进行了比较。我们在一项实施中发现了问题,但发现基于序列的脱靶预测非常可靠,可以识别出大多数突变率高于 0.1% 的脱靶,而通过切断脱靶分数可以大大减少假阳性的数量。我们还根据可用数据集评估了靶向效率预测算法。预测与向导活性之间的相关性差异很大,尤其是对于斑马鱼。结合我们实验室的新数据,我们发现最佳靶向效率预测模型在很大程度上取决于向导 RNA 是从 U6 启动子表达还是体外转录。我们进一步证明,最佳预测可以显著减少向导筛选所花费的时间。
根据美国食品药品监督管理局 (FDA) 的规定,基因治疗通过转录或翻译转移的遗传物质或特异性改变宿主(人类)基因序列来发挥作用 (FDA 2020)。基因组编辑技术,例如锌指核酸酶 (ZFN)、转录激活因子样效应核酸酶 (TALEN) 和成簇的规律间隔短回文重复序列 (CRISPR)-Cas 相关核酸酶,包括碱基编辑器,提供了各种工具来高精度地修改基因组 (Li et al. 2020)。这些基因编辑技术极大地加快了基因组编辑基础研究 (Doudna 2020) 和治疗产品的创造速度。尽管这些基因组编辑模式对于高度特异性的基因工程具有巨大的前景,但必须严格审查潜在的脱靶效应,以改进技术并优化其安全性和有效性。意外改变(也称为脱靶或脱靶编辑)的潜在影响是基因组编辑作为一种治疗策略的安全性的关键考虑因素。基因组的意外改变可能是由修改除故意针对的位点以外的 DNA 引起的(美国国家科学院 2017 年)。
为了进一步确定最终产品中各杂质的最大可容忍残留水平,且不增加脱靶编辑,我们分别以差异比例将脱靶风险最高的杂质A02U和U17A添加到FLP中。我们利用这些样本在原代T细胞中进行CRISPR基因编辑,并用Sanger测序评估每个样本在OT1位点(这两个杂质样本中脱靶率最高的位点)的编辑效率(图1)。结果显示,杂质A02U的残留水平为50%,杂质U17A的残留水平为10%会导致脱靶编辑显著增加。当杂质水平低于4%时,本例中观察到的脱靶效应最小。
Tingting Fan 1,2Ɨ , Yanhao Cheng 3Ɨ , Yuechao Wu 4,5Ɨ , Shishi Liu 1Ɨ , Xu Tang 1,2Ɨ , Yao He 1 , Shanyue Liao 1 , Xuelian Zheng 1,2 ,Tao Zhang 4,5* , Yiping Qi 3,6* , Yong Zhang 2* 1 Department of Biotechnology, School of Life Sciences and Technology, Center for