参考文献中引入的设计。1需要-20 dB的最大回报损失,可以通过使用纯CPW线结构在下部阻抗侧使用1- µm间隙宽度来实现。在许多研究设施中,通过光刻工具以高收率制造这样的CPW线是不可行的。相比之下,我们对克洛普芬斯坦锥度的设计需要在较低阻抗侧的间隙宽度为3 µm,这是可以使用常用的光刻光刻工具可以很容易地实现的。另一方面,klopfenstein锥的-10 dB最大回报损失导致-0.45 dB的最小插入损失。当信号通过Klopfenstein锥度两次时,这种插入损失将使信号增益降低-0.9 dB,与放大器的标称15至20 dB增益相比,这是可以忽略的。
图S3。 三元地块描述了细菌和真菌DNA的基于真菌和真菌DNA或基于RNA的OTU在植物土壤实验结束时土壤处理之间的分布(灰色圆圈),表明基于DNA的或基于RNA的基于DNA或基于RNA的富集或激活的OTU,或者是由T.绿色圆圈或通过T. eestivum(blue cirdie)(或蓝色圆形),或在blue coundere(blue cirdiean),或者在blue counder coundere coundere coundere counce,或者在blue councered counder counder counder(blue cirdie),或depleta。或通过T. aestivum(浅蓝色),两种植物(橙色)富集或激活的Otus以及两种植物(黄色)耗尽或抑制的OTU。 对总细菌和真菌的丰度(基因拷贝数)进行了此分析。 每个圆圈描绘了一个单独的OTU,其位置取决于指示的方式对丰度的贡献。 圆的大小反映了OTU的相对丰度。图S3。三元地块描述了细菌和真菌DNA的基于真菌和真菌DNA或基于RNA的OTU在植物土壤实验结束时土壤处理之间的分布(灰色圆圈),表明基于DNA的或基于RNA的基于DNA或基于RNA的富集或激活的OTU,或者是由T.绿色圆圈或通过T. eestivum(blue cirdie)(或蓝色圆形),或在blue coundere(blue cirdiean),或者在blue counder coundere coundere coundere counce,或者在blue councered counder counder counder(blue cirdie),或depleta。或通过T. aestivum(浅蓝色),两种植物(橙色)富集或激活的Otus以及两种植物(黄色)耗尽或抑制的OTU。对总细菌和真菌的丰度(基因拷贝数)进行了此分析。每个圆圈描绘了一个单独的OTU,其位置取决于指示的方式对丰度的贡献。圆的大小反映了OTU的相对丰度。
图S1:CBIPS30-4F-5的表征人类干细胞系衍生的视网膜色素上皮细胞(RPE)表达GFP。(a,b)转导的CBIPS30-4F-5-GFP克隆的表征。(a)HIPSC菌落表达了多能标记SOX2,SSEA4,NANOG和TRA-1-60(比例尺:100 µM),(B)保持正常的46,XY karyotype。(c,d)培养中分化的HIPSC-RPE-GFP细胞的荧光激活细胞分选。(c)HIPSC-RPE细胞种群的正向与侧散射图显示出均匀的分布,侧散射与GFP荧光强度(在Abscissas中)显示了人们认为阳性的种群(在正方形中突出显示)。(d)细胞分选之前和之后培养中的HIPSC-RPE细胞。比例尺:75 µm。(E,F)通过视网膜下注射套管(直径23/38G)后HIPSC-RPE细胞的生存力测试。(E)侧散射强度与碘化丙啶的流式细胞仪定量分析图显示出极好的细胞活力率(98.65%)相似的非注射细胞(98.36%)。(f)通过套管后,hipsc-rpe细胞未损坏,培养10天后保持活跃。比例尺:75 µm。使用25/41g视网膜下注射套管获得了相似的结果(未显示)。