单隔间加温柜由 22 号不锈钢外壳和门构成,手柄和铰链设计用于承受高强度使用。柜子由 Halo Heat® 系统加热,该系统包含安装在隔间壁上的低瓦特密度电缆。该系统提供均匀分布的热量,无需热循环风扇。柜子由可调节的电子恒温器控制,其中包括热量指示灯 LED、温度设置按钮、温度升高和降低按钮以及用于监控隔间温度的数字显示屏。恒温器的温度范围为最低 90°F (32°C) 至最高 200°F (93°C)。该室配备一 (1) 个带搁板的白色环氧涂层毯式支撑组件,并配有一 (1) 套 5 英寸 (127 毫米) 重型脚轮 — 两个刚性脚轮和两个带刹车的旋转脚轮。
• 如果已知心脏骤停是由创伤性原因引起的,请参阅创伤性心脏骤停治疗方案。 • 如果无法确定心脏骤停是创伤性原因还是医疗性原因,且患者未达到现场死亡终止复苏程序方案中的现场死亡标准,则开始 CPR 并继续执行该方案。 • 如果患者体温过低,请参阅低温/冻伤治疗方案,了解适用的加温技术。 • 患者显示“不复苏”(DNR)医嘱、手镯或项链;或有效的密歇根州医嘱治疗范围(MI POST)– 请相应地遵循 DNR 程序方案或 MI-POST 程序方案。 • 只有在现场不安全、患者所处位置不允许进行适当治疗或有直接医疗控制命令时,才应移动正在接受复苏的心脏骤停患者。
摘要:电穿孔动物基因敲除系统技术(TAKE)是一种简单有效的方法,利用成簇的规律间隔短回文重复序列(CRISPR)/CRISPR 相关蛋白 9(Cas9)系统生成转基因小鼠。为了增强电穿孔在小鼠基因编辑中的多功能性,针对玻璃化冷冻小鼠胚胎优化了电条件,并将其应用于广泛使用的近交系(C57BL/6NCr、BALB/cCrSlc、FVB/NJcl 和 C3H/HeJJcl)的新鲜胚胎。电脉冲设置(穿孔脉冲:电压,150 V;脉冲宽度,1.0 ms;脉冲间隔,50 ms;脉冲数,+4;转移脉冲:电压,20 V;脉冲宽度,50 ms;脉冲间隔,50 ms;脉冲数,±5)对于玻璃化冷冻加温的小鼠胚胎是最佳的,其可以有效地将 gRNA/Cas9 复合物递送到受精卵中而无需透明带变薄过程并编辑目标位点。这些电条件在广泛使用的近交系小鼠中有效地产生了转基因小鼠。此外,使用间隙为 5 mm 的电极进行电穿孔可以在 5 分钟内引入超过 100 个胚胎,而无需特殊的预处理和复杂的技术技能,例如显微注射,并且在产生的后代中表现出较高的胚胎发育率和基因组编辑效率,从而快速高效地产生基因组编辑小鼠。本研究中使用的电条件用途广泛,可以更轻松高效地生成转基因小鼠,有助于了解人类疾病和基因功能。关键词:CRISPR/Cas9、电穿孔、冻融胚胎、基因组编辑
0.5 g称重为聚丙烯离心管(50 mL体积),并使用离子 - 脱位树脂类型的DNA提取和纯化试剂盒(Qiagen Genomic-TIP)提取DNA并纯化DNA。在样品中加入7.5 ml的G2缓冲液 *1和20μL-淀粉酶 *2,与涡旋混合器剧烈混合,并在37°C下孵育1小时。加入7.5 mL的G2缓冲液,200μl蛋白酶K*3和20μlRNASEA*4,搅拌直至样品保持在管的底部,并在50°C下孵育1小时。同时,将离心管反转2-3次以混合样品。接下来,在4°C下在5,000 x g处离心15分钟,然后将所得的上清液(在2 mL部分中)转移到五个2 ml管(总计10毫升) *5中,在4°C下在20,000 x g处离心15分钟。从每2毫升管中收集1 ml上清液,以提前用1 mL qBT缓冲液 *1平衡的Qiagen Genomic-TIP 20/g,并提前加载(总计5 mL)。然后用QC缓冲液 *1洗涤尖端3次,然后转移到新的离心管和预热的QF缓冲液