利用我们高通量的定向进化工程平台,Capsida确定了一个系统地给药的(IV)Capsid,该capsID可实现NHP脑范围的生物分布,除了提供治疗相关的心脏转移水平外,还可以在关键FA相关的大脑区域中转导大量的神经元。在NHP研究中,同时给予一小片capsID(n = 3 NHP),工程化的衣壳驱动的RNA表达水平比CNS中的AAV9高约100倍,同时在心脏组织中保持相似的RNA表达,并且在肝脏中降低了约10x。重要的是,Capsida已经确定了一种与我们工程化的衣壳结合的新型血脑屏障受体。受体在猕猴和人类之间表现出完整的氨基酸序列同源性,从而使临床翻译变得过时。
使用自然衍生的AAV的当前与腺相关病毒(AAV)基因治疗受到非最佳组织靶向的限制。在治疗肌肉疾病(MD)时,通常需要高剂量,但会导致严重的不良反应。在这里,我们合理地设计了一种aav capsid,该capsid特异性地靶向绞肌以降低治疗剂量。我们将骨骼肌受体的人内整合素alphav beta6的结合基序计算整合到肝脏capsid中。与父母相比,设计的AAVS显示出更高的生产率和优质的肌肉转导。一种变体LICA1,示例可与其他肌肉AAV相比的肌肉转导,肝脏靶向降低。lica1在包括非人类灵长类动物在内的物种之间观察到了肌体性。因此,LICA1(而不是AAV9)有效地以低剂量(5E12 VG/kg)的两种小鼠MD模型(雄性小鼠)提供了治疗性转基因和改善的肌肉功能。这些结果强调了我们设计方法对MD基因疗法的AAV工程和LICA1变体的潜力。
我们正在接受MDS和PHD的申请,以进行“图像指导,精度诊断和治疗”(IGPDT)培训计划,即哈佛医学院(BWH/HMS),立即生效。学员将在尼克·托德(Nick Todd)博士的主要指导下在重点的超声实验室工作。该项目将将重点的超声介导的血脑屏障破坏与AAV CAPSID发育相结合。我们旨在利用这两种免费技术来开发一种新型的FUS特异性AAV CAPSID,并克服将基因疗法传递给大脑的关键挑战。主要职责和职责:
背景升级(DeLandistrogene moxeparvovec-rokl)是重组基因治疗产物,由非复制,重组,腺相关病毒(AAV)血清型RH74(AAVRH74)(AAVRH74)capsid capsid和ssdna表达cassetter cassetter cassetter farank farank flank farank farank farank canverne cassever2 rank farank farank farank canverne cassever2。盒式盒包含:1)MHCK7基因调节成分,其中包括肌酸激酶7启动子和α-肌动蛋白重链增强剂,以及2)编码工程化的levetidys微型疾病蛋白(1)的DNA转基因。载体/capsid:临床和非临床研究表明骨骼肌细胞中的AAVRH74血清型转导。此外,在非临床研究中,在心脏和diaphragm肌肉细胞中已经证明了AAVRH74血清型转导(1)。启动子:MHCK7启动子/增强子驱动转基因表达,并已在动物模型中显示,以驱动转基因升降机微肌营养蛋白蛋白表达,主要在骨骼肌(包括diaphragragm)和心脏肌肉中。在临床研究中,肌肉活检分析已经证实了骨骼肌中的levidys微肌营养蛋白表达(1)。转基因:DMD是由DMD基因突变引起的,导致缺乏功能性肌营养不良蛋白。leviDys携带一个编码微肺炎蛋白的转基因,该蛋白由正常肌肉细胞中表达的肌营养不良蛋白的选定结构域组成(1)。
• Data from a perfusion benchtop bioreactor scale show that Ala, Asn, His, Tyr, and Trp positively correlate with capsid production, while Gln correlates negatively • Analysis of cell culture media from shake flask experiments shows that Asn and other amino acids, including several essential amino acids, deplete during AAV production • Capsid titer per cell increases when Gln is absent from media • The REBEL device enabled通过准确,精确地定量氨基酸的数据驱动的RAAV生产的生物过程开发,用于HEK293细胞中的RAAV生产,从而进一步了解过程•正在进行更多的实验,以优化灌注过程,以获得全面的Capsids
摘要:在多种生物医学应用中,类似病毒样颗粒(VLP)作为纳米镜出现,包括疫苗抗原和货物(例如mRNA)到粘膜表面的货物。这些软,胶体和蛋白质结构(衣壳)仍然容易受到粘膜环境应力因素的影响。,我们使用同质功能的聚乙烯甘油三甲基甲基甲基甲基甲基甲基甲基甲基甲基甲基甲基甲基甲基甲基氨基酸残基交联多个衣壳表面氨基酸残基,以提高衣壳的持久性和存活率以模拟粘膜应激源。表面交联增强了从低pH值(向下pH 4.0)和高蛋白酶浓度条件(即在猪和小鼠胃液中)组装的VLP的稳定性。此外,它增加了使用原子力显微镜悬臂尖端应用的局部机械压痕下VLP的刚度。小角度X射线散射显示交联后的衣壳直径增加,并且与PEG交联的长度增加了衣壳壳的厚度。此外,表面交联对VLPS的粘液易位和积累在体外3D人类鼻上皮组织的上皮上的积累没有影响。最后,它并未损害VLPS在小鼠皮下疫苗接种模型中的疫苗功能。与没有交联的脉络化相比,相同长度的PEG分子的表面交联VLP的刚度更高,并且在胃液中表面交叉连接的VLP的寿命更长。使用大分子系tether的表面交联,但不是对这些分子的简单结合,因此提供了一种可行的手段来增强VLP对粘膜应用的弹性和存活。关键字:病毒样颗粒疫苗,粘膜递送,纳米压力,粘液相互作用,聚乙烯甘油二醇,生物医学应用V
遗传性视网膜疾病是失明的主要且无法治疗的原因,因此是基因治疗的候选疾病。重组载体衍生自腺相关病毒(RAAV)是目前最有前途的体内治疗基因传递到视网膜的车辆。然而,在基于RAAV的眼部基因疗法的临床试验中,近期报道强调了基于AAV的新型载体,对眼科应用具有更大的效率对眼科应用。改进的载体的治疗性效果将允许递送的剂量减少,从而减少炎症反应。在这里,我们使用生物结合化学来描述新的RAAV载体的开发,以修改Raav Capsid,从而改善了治疗指数。通过形成硫库键与拉夫capsid的氨基群的共价耦合显着提高了大鼠和非人类灵长类动物的载体转导效率。这些优化的RAAV载体对治疗多种视网膜疾病具有重要的影响。
摘要:基因治疗旨在增加,替换或关闭基因以帮助治疗疾病。迄今为止,美国食品药品监督管理局(FDA)批准了14种基因治疗产品。随着对基因治疗的兴趣日益增长,可行的基因递送向量对于将新基因插入细胞是必需的。有不同种类的基因递送载体,包括病毒载体,例如慢病毒,腺病毒,逆转录病毒,腺体相关病毒等,以及非病毒载体,例如裸体DNA,脂质矢量,脂质矢量,聚合物纳米植物,exosomes等,以及最常用的病毒素。中,最关心的载体是与腺相关的病毒(AAV),因为它具有安全性,自然能够有效地将基因传递到细胞中并持续多个组织中的转基因表达。此外,可以设计AAV基因组以生成包含感兴趣的转基因序列的重组AAV(RAAV),并已被证明是安全的基因载体。最近,RAAV载体已被批准用于治疗各种罕见疾病。尽管有这些批准,但仍存在一些主要局限性,即非特异性组织靶向和宿主免疫反应。其他问题包括中和抗体,这些抗体阻止转基因递送,有限的转基因包装能力,用于每剂量的高病毒滴度和高成本。要应对这些挑战,已经开发了几种技术。此外,总结了RAAV工程策略中遇到的主要优势和局限性。关键字:AAV工程,衣壳修改,表面束缚,病毒负载,理性设计,定向进化,机器学习基于工程方法的差异,本综述提出了三种策略:基于基因工程的衣壳修饰(衣壳修饰),通过化学共轭(表面绑扎)和其他带有AAV(病毒载荷)的配方束缚的衣壳表面束缚。