抽象的胸膜是全球最商业生产的可食用蘑菇之一。使用经典育种获得了更有用的特征的培养菌株,这是费力且耗时的。在这里,我们尝试使用基于质粒的CRISPR/CAS9作为非遗传修饰(非GM)施法的第一步,尝试了有效的基因诱变。含有Cas9表达盒和靶向FCY1和PYRG的不同单引导RNA的质粒分别转移到PC9菌株的真菌原生质体中,该菌株分别产生了对5-氟中糖苷和5-氟众酸的抗性的菌株。基因组PCR,然后进行测序显示在某些耐药菌株中,在目标部位的质粒中插入碎片的小插入/缺失或插入片段。结果表明,在P. ostreatus中表现出有效的CRISPR/CAS9辅助基因组编辑,这可能在未来有助于非GM培养菌株的分子繁殖。此外,还有效地引入了使用该CRISPR/CAS9系统通过同源性修复进行FCY1中的突变,这不仅可以用于精确的基因破坏,还可以用于插入该真菌中异源基因的表达。关键字:琼脂霉,蘑菇,FCY1,pyrg,基因组编辑
摘要:Lichtheimia corymbifera 被认为是最常见的毛霉菌之一。缺乏有效的基因操作工具阻碍了对这种机会性致病真菌的致病机制和毒力因子的鉴定。尽管此类技术已在某些物种中得到描述,但在毛霉目真菌中,进行定向诱变和构建稳定的转化子仍然是一个巨大的挑战。在本研究中,应用无质粒的 CRISPR-Cas9 系统对 L. corymbifera 进行定向基因破坏。所述方法基于 Cas9 酶引起的双链断裂的非同源末端连接修复。利用该方法,可以在乳清苷 5'-磷酸脱羧酶基因 (pyrG) 中诱导一到五个核苷酸长的短靶向缺失,从而构建尿嘧啶营养缺陷型菌株。这些菌株可作为未来基因操作研究中的受体菌株。据我们所知,这是这种临床相关真菌的首次基因改造。
摘要:Lichtheimia corymbifera 被认为是最常见的毛霉菌之一。由于缺乏有效的基因操作工具,我们无法表征这种机会性致病真菌的致病机制和毒力因子。尽管此类技术已用于某些物种,但在毛霉目真菌中,进行定向诱变和构建稳定转化体仍然是一个巨大的挑战。在本研究中,应用无质粒 CRISPR-Cas9 系统对 L. corymbifera 进行定向基因破坏。所述方法基于 Cas9 酶引起的双链断裂的非同源末端连接修复。利用该方法,可以在乳清苷 5′-磷酸脱羧酶基因 (pyrG) 中诱导一到五个核苷酸长的短靶向缺失,从而构建尿嘧啶营养缺陷型菌株。这些菌株可作为未来基因操作研究中的受体菌株。据我们所知,这是这种临床相关真菌的首次基因改造。
图1使用下一代AMA1质粒增强了麦克利荧光蛋白的表达。A。分析了MCHERRY表达的AMA1质粒的示意图,其选择标记物具有不同的变体。b荧光曲霉曲霉菌落的荧光照片显示,用Ubi-M-Pyrg和Ubi-Y-Y-Pyrg质粒转化的菌落中荧光增加。来自转化菌落的孢子中麦克利荧光的流式细胞仪分析表明,使用UBI-Y-Y-PYRG质粒实现了最均匀和最高的麦克利信号。在图S1a中,来自不同转化菌落的重复之间的平均荧光和重复的直方图。在液体培养中生长的菌丝体的共聚焦显微镜图像显示,在含有UBI-M-PYRG和UBI-Y-PYRG质粒的菌丝体中的表达增加。ImageJ火灾校准栏代表不同级别的MCHERRY信号。在图中重复S2。e。对等差质粒浓度下不同质粒的转化效率的评估显示,质质质质量降低的质粒的转化效率降低了,将pyRG融合到降解标签。字母表示由ANOVA确定的,并在Tukey后的测试中确定了显着不同的组。F.在选定和非选择条件下固体培养基上菌落生长速率的比较表明,在选择性条件下,携带UBI-M-PYRG和UBI-Y-Y-PYRG质粒的菌株的生长较慢。星号代表pADJ <0.05 <0.05,韦尔奇的t检验表示选择性和非选择性培养基之间的直径差异,用于携带每种质粒的菌株。