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World File Search System光交联
OcuPair，一种新型光交联树枝状聚合物-透明质酸水凝胶
目录/示意图：示意图显示 OcuPair 粘性水凝胶制剂装入最终输送装置并应用于活体兔角膜损伤模型的全层角膜伤口上，然后原位交联形成密封伤口的透明水凝胶绷带。部分图片使用 Servier Medical Art（http://smart.servier.com/）中的图片绘制，根据 Creative Commons Attribution 4.0 Unported License（https://creativecommons.org/licenses/by/4.0/）获得许可。
光活化纤维素膜 (CISCM) 上的化合物相互作用筛选可识别药物靶标
大型天然产物衍生分子，无法通过合成获得或处理。对于激酶靶标，另一种方法建立在对多种细胞激酶具有广泛特异性的亲和珠上。使用这些珠子与不同浓度的游离目标激酶抑制剂竞争可以实现靶标 ID。[6,7] 这种方法的一个缺点是它仅限于激酶抑制剂。较新的蛋白质组学方法，如热蛋白质组分析 (TPP) 和有限蛋白水解-小分子图谱 (LiP-SMap) 不需要化合物标记或固定。[8,9] 然而，这些方法需要对蛋白质组样本进行深度表征，因此需要较长的质谱测量时间。因此，基于 TPP 和 LiP-SMap 的靶标 ID 研究通常仅限于单一化合物。无向光交联是一种将小分子固定在亲和基质上的有吸引力的替代方法。 [10–14] 光交联反应具有化学和位点非选择性，因此无需事先衍生化即可为每个小分子分配不同的标记产物。这使得可以同时并行地以阵列形式固定多个小分子。这种阵列可以用单个标记蛋白质（分离的或全细胞蛋白质提取物）进行探测，以评估其与多个小分子（多种化合物，一种候选靶蛋白）的相互作用。[15] 光固定化小分子还可用于在全细胞蛋白质提取物中寻找相互作用伙伴，然后进行无偏靶标鉴定。[16–18] 然而，由于区分特定靶标蛋白质和非特定污染物具有挑战性，因此此类靶标鉴定实验迄今为止仅限于单一化合物（一种化合物，多种靶标蛋白质）。据我们所知，尚未描述无定向光交联用于并行高通量鉴定多种化合物（多种化合物，多种候选靶标蛋白质）的靶标。定量亲和纯化与质谱联用（q-AP-MS）利用定量来区分特定
混合超分子共价生物树脂促进基于光的体积生物打印结构中的细胞迁移和自组装
演变图（n = 3）。d）37°C 胶原酶溶液中的酶促材料降解（n = 3）。e、f、g、h）光交联后不同水凝胶配方（分别为 40 DoM、60 DoM、80 DoM、100 DoM）的流变频率扫描（0.1 至 100 Hz）（n = 3）。i、j、k、l）根据独立水凝胶材料的频率扫描计算出的 Tan delta（n = 3）。m) 使用不同水凝胶配方的圆形体积打印模型的归一化形状保真度（n = 3）。n) 使用预期的 STL 模型进行形状保真度计算的体积打印模型作为比较，比例尺 = 5 毫米。o、p) 混合 60 DoM 水凝胶的 CAD 模型和光片重建，分别显示东岛雕像和陀螺模型，比例尺 = 2 毫米。
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在遗传诊断和生物化学领域等。使用光合交联的核酸操纵具有以下特征：1）可以在多种条件下使用它，而无需限制pH，温度，盐强度等。2）不需要添加试剂，而3）3）它可以轻松地通过光辐射的时间和能量来控制反应。我们已经报道了各种照片的人造核酸，以及代表性的光杂交链链球菌（CNV K）（CNV K），可以通过辅助DNA或RNA链中的吡啶胺或胞嘧啶等嘧啶基碱（以366的366 Irladions in of thymine或rna strands中的）进行光子交联。此外，可以通过312 nm的照射诱导光电反应，并且可以使用光可逆的操作。与以前已知的牛cor烯和香豆素相比，CNV K及其改进的光交联CNV D具有很高的光反应性，并且已经在市场上。因此，在本演讲中，我打算介绍此超快照片的开发 -
定制多肽星形共聚物用于通过直接墨水书写进行 3D 打印细菌复合材料
原料材料已经成功地制成3D物体，包括弹性体[4,5]、热固性树脂[6,7]和水凝胶[8,9]。该领域的不断进步使得打印条件不再那么严格[10]，适应的材料范围也更加广泛。[11]水凝胶尤其令人感兴趣，因为3D聚合物网络结合了结构完整性和高含水量，从而产生了可调的3D环境，以纳入功能性生物系统。[12]它们的固有机械性能可以通过嵌入的添加剂（如纳米颗粒[13]或多组分共混物）轻松调节——这些添加剂已经适应了3D打印。 [14,15] 对于生物复合材料 3D 打印，立体光刻 (SLA) [16] 或数字光处理 (DLP) [17] 依赖于低粘度可交联树脂系统，而直接墨水书写 (DIW) 3D 打印可以通过剪切稀化水凝胶实现。[18] 对于这些 DIW 系统，可以采用二次光交联步骤来共价稳定主要 3D 打印对象。[19]
三重态三重态能量转移：一种有效的可见光诱导光点击反应的简单策略
摘要：光点击反应结合了光驱动过程和传统点击化学的优势，已在表面功能化、聚合物共轭、光交联和蛋白质标记等多个领域得到应用。尽管取得了这些进展，但大多数光点击反应对紫外光的依赖性对其普遍应用造成了严重障碍，因为这种光可能会被系统中的其他分子吸收，导致其降解或发生不必要的反应。然而，开发一种简单有效的系统来实现红移光点击转换仍然具有挑战性。在这里，我们引入了三重态-三重态能量转移作为一种快速而选择性的方式来实现可见光诱导的光点击反应。具体而言，我们表明，在催化量（少至 5 mol%）的光敏剂存在下，9,10-菲醌 ( PQ s) 可以与富电子烯烃 ( ERA ) 有效反应。光环加成反应可以在绿光（530 nm）或橙光（590 nm）照射下实现，与经典的PQ-ERA体系相比，红移超过100 nm。此外，通过组合适当的反应物，我们建立了正交的蓝光和绿光诱导的光点击反应体系，其中产物的分布可以通过选择光的颜色来精确控制。
使用基于抗体的新技术对细胞和病毒转录本上的假尿苷残基进行定位
伪尿苷 ( Ψ ) 是哺乳动物非编码 RNA (ncRNA)（包括 rRNA、tRNA 和 snRNA）中最常见的非规范核糖核苷，占总尿苷水平的 ∼ 7%。然而，Ψ 仅占 mRNA 上尿苷的 ∼ 0.1%，其对 mRNA 功能的影响仍不清楚。研究表明，Ψ 残基会抑制宿主先天免疫因子对外源 RNA 转录物的检测，因此病毒可能通过破坏宿主伪尿苷合酶 (PUS) 将 Ψ 残基添加到 mRNA 中来抑制受感染细胞的抗病毒反应。在这里，我们描述并验证了一种新型的基于抗体的 Ψ 映射技术，即光交联辅助 Ψ 测序 (PA- Ψ -seq)，并用它来映射不仅在多个细胞 RNA 上而且在 HIV-1 编码的 mRNA 和基因组 RNA 上的 Ψ 残基。我们描述了 293T 衍生细胞系，其中先前报道的人类 PUS 酶会将 Ψ 残基添加到人类 mRNA 中，特别是 PUS1、PUS7 和 TRUB1/PUS4，通过基因编辑被灭活。令人惊讶的是，虽然这使我们能够将细胞 mRNA 上的几个 Ψ 添加位点分配给这三种 PUS 酶中的每一种，但 HIV-1 转录本上的 Ψ 位点仍然不受影响。此外，PUS1、PUS7 或 TRUB1 功能的丧失并没有显著降低在人类总 mRNA 上检测到的 Ψ 残基水平（低于野生型细胞中的约 0.1% 水平），因此意味着将大量 Ψ 残基添加到人类 mRNA 中的 PUS 酶仍有待确定。
PA-01
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