图2从IVH患者的CSF中分离NSC样细胞。A分离后不同日期(DIV)的CSF衍生的NSC培养物的相位对比度显微照片。比例尺:100μm。 B,在Matrigel上生长的3种代表性NSC线的指数生长动力学。c,早期(0)和晚期(10)段的细胞的相对对比显微照片,在基质中生长。d,通过对早期(3)和晚期(7)通道的KI-67表达进行定量评估增殖。显示了代表性共焦部分。比例尺25μm。 E,早期(3)和晚(7)通道的CD133,CD24,CD34和CD45的流式细胞仪分析。条件之间没有显着差异。数据显示为5-7个独立生物样品的平均值±SEM。42周大的病例(粉红色符号)被排除在进一步分析之外。f,在早期和晚期与CD133共表达与CD24和CD34的共表达。g,从CSF获得的NSC样细胞和分离后13天后从CSF获得的代表性显微照片。比例尺:100μm。 H,通过从CSF获得的NSC样细胞流式细胞术和通过CSF和通道3的灌洗液进行的CD133分析。* p <.05
图1:IPSC衍生的NPC的产生,中风诱导和移植。(a)左:IPSC派生的NPC的生成。右:iPSCS和NPCS(通道7)染色为Nanog和Nestin。比例尺:50UM。(b)左:NPC的神经分化。右:分化后的D26(上排)分化的NPC,对βIII-微管蛋白,S100β和DAPI染色。比例尺:50UM。(c)实验设计的示意图。(d)通过激光多普勒成像(LDI)获得的脑灌注水平。(e)右半球的相对血液灌注与中风诱导后立即记录的基线(急性)和牺牲前(43 dpi)相比。(f)中风梗塞大小的定量。左:相对于勃雷格玛(MM),针对前后(A-P)距离绘制的病变区域。右:两个治疗组的病变体积(mm 3)的箱形图。(g)描绘中风梗塞大小的3-D小鼠脑模型的示意图。比例尺:2mm。(H)使用生物发光成像进行NPC移植后细胞存活的纵向分析。(i)生物发光信号强度表示为35天的SR X10 6的每秒3个光子数量。显示的显着性水平是指天之间的比较。(J)示意图和免疫荧光表示,描绘了移植核(深蓝色)和移植物周围(浅蓝色)。hunu用于可视化移植细胞。比例尺:1mm。比例尺:2mm。(k)脑切片对hunu染色,以前到后验(A-P)顺序排列。(l)量化移植物核心和移植物周围面积。左:相对于前核(MM),绘制在前后(A-P)距离的移植面积(mm 2)。右:移植动物的平均移植体积(mm 3)的箱形图。数据显示为平均分布,其中红点表示平均值。框图表示数据的25%至75%四分位数。箱形图:图中的每个点代表一种动物。线图被绘制为平均值±SEM。使用成对的t检验(基线与中风)或未配对的t检验(车辆与NPC)评估平均差异的显着性。在E-I中,每组n = 11只小鼠;在L,每组n = 9只动物。星号表示显着性: *p <0.05。
2023 年 3 月 14 日 — 比例尺。公里。陆军部。小石城区工程兵团。阿肯色州小石城。71. 59. 5.0. 湖。16. 马蹄。湖。15. 湖。
图S1:CBIPS30-4F-5的表征人类干细胞系衍生的视网膜色素上皮细胞(RPE)表达GFP。(a,b)转导的CBIPS30-4F-5-GFP克隆的表征。(a)HIPSC菌落表达了多能标记SOX2,SSEA4,NANOG和TRA-1-60(比例尺:100 µM),(B)保持正常的46,XY karyotype。(c,d)培养中分化的HIPSC-RPE-GFP细胞的荧光激活细胞分选。(c)HIPSC-RPE细胞种群的正向与侧散射图显示出均匀的分布,侧散射与GFP荧光强度(在Abscissas中)显示了人们认为阳性的种群(在正方形中突出显示)。(d)细胞分选之前和之后培养中的HIPSC-RPE细胞。比例尺:75 µm。(E,F)通过视网膜下注射套管(直径23/38G)后HIPSC-RPE细胞的生存力测试。(E)侧散射强度与碘化丙啶的流式细胞仪定量分析图显示出极好的细胞活力率(98.65%)相似的非注射细胞(98.36%)。(f)通过套管后,hipsc-rpe细胞未损坏,培养10天后保持活跃。比例尺:75 µm。使用25/41g视网膜下注射套管获得了相似的结果(未显示)。
比例尺(住宅)PV安装。Rodrigues等。(2016)还包括非欧盟国家的比较。3为了提出一个想法,Nordhaus(2014)估计碳的社会成本等于$ 22.1(2005年)每吨CO 2
图1:TBRPPCO在PB(111)和BCS能量间隙的光谱上吸附。(a)Pb上的TBRPPCO分子岛的STM图像(111),中央CO原子显得最明亮(偏置电压:100 mV,隧道电流:50 PA,比例尺:1 nm)。超结构由1和2跨越。岛边缘的单个分子由虚线圆表示。白色箭头标记为110⟩方向。(b)孤立的TBRPPCO分子的STM图像(100 mV,50 PA,比例尺:1 nm)。(c)TBRPPCO在PB上计算出的松弛吸附几何形状(111)。(d)D I/ D V的光谱在干净的Pb上方的超导PB尖端(111)上方获得,并在嵌入岛上的TBRPPCO的Co Atom Center上,并在基板露台上分离(反馈环参数:10 mV,50 PA)。h +,h - 表示由于尖端和样品BCS DOS的对齐的冷凝峰引起的与隧道相关的光谱峰的高度; δ标记由冷凝峰距离定义的能隙宽度。(e)TBRPPCO岛(100 mV,50 PA,比例尺:2 nm)的STM图像,带有指示的特性镜检查位点。(f)宽度δ(反向三角形)和不对称η(三角形)从(e)中标记的十个分子上获得的d i/ d v光谱获得。阴影区域描绘了δ的不良边缘。
演变图(n = 3)。d)37°C 胶原酶溶液中的酶促材料降解(n = 3)。e、f、g、h)光交联后不同水凝胶配方(分别为 40 DoM、60 DoM、80 DoM、100 DoM)的流变频率扫描(0.1 至 100 Hz)(n = 3)。i、j、k、l)根据独立水凝胶材料的频率扫描计算出的 Tan delta(n = 3)。m) 使用不同水凝胶配方的圆形体积打印模型的归一化形状保真度(n = 3)。n) 使用预期的 STL 模型进行形状保真度计算的体积打印模型作为比较,比例尺 = 5 毫米。o、p) 混合 60 DoM 水凝胶的 CAD 模型和光片重建,分别显示东岛雕像和陀螺模型,比例尺 = 2 毫米。