摘要 背景与目的:本研究利用锌指核酸酶(ZFN)技术破坏霍乱毒素基因(ctxA),抑制霍乱弧菌(V. cholera)产生CT毒素。实验方法:设计一个工程化的ZFN,靶向ctxA基因的催化位点,将ZFN编码序列克隆到pKD46、pTZ57R T/A载体和E2-crimson质粒中,转化大肠杆菌(E. coli)Top10和霍乱弧菌,通过菌落计数法评估ZFN的转化效果。结果:转化后的大肠杆菌经十二烷基硫酸钠-聚丙烯酰胺凝胶电泳和蛋白质印迹实验未见表达,ctxA基因测序未见突变,pKD46-ZFN质粒聚合酶链式反应结果为阴性。用含有完整 ZFN 序列的 T/A 载体转化大肠杆菌 Top10 产生 7 个菌落,所有菌落均含有具有自连接载体的细菌。用左阵列 ZFN 转化产生 24 个菌落,其中 6 个含有具有自连接载体的细菌,18 个含有具有载体/左阵列的细菌。用含有完整 ZFN 的 E2-深红色载体转化霍乱弧菌未产生任何菌落。用左阵列载体转化产生 17 个含有具有载体/左阵列的细菌的菌落。使用蛋白质印迹分析捕获左阵列蛋白带。结论和意义:由于缺乏非同源末端连接 (NHEJ) 机制,ZFN 可能脱靶细菌基因组,从而导致致命的双链 DNA 断裂。建议开发针对细菌基因的 ZFN,具有 NHEJ 修复系统的工程包装宿主是必不可少的。关键词:ctxA 基因;基因编辑工具;霍乱弧菌;锌指核酸酶。
抽象最近的工作与剪接体组件U2AF35的两个锌指(ZnF)的点突变与恶性转化有关。然而,令人惊讶的是,对U2AF35 ZNF域的功能知之甚少。在这里,我们分析了哺乳动物U2AF35的ZNF域及其旁系同源物U2AF26的关键功能。两个ZNF都是剪接调节所必需的,而仅ZNF2控制蛋白质稳定性,并有助于与U2AF65的相互作用。这些特征在缺乏ZnF2的U2AF26的自然存在的剪接变体中得到了证实,该变体在激活原代小鼠T细胞时强烈诱导并局部位于细胞质中。在模型T细胞系中使用Ribo-Seq我们为U2AF26在激活基因表达中的细胞质步骤中的作用提供了证据,尤其是翻译。一致地,MS2绑定测定法表明,当定位于模型mRNA的5 rtr时,细胞质U2AF26/35增加了翻译。该法规部分取决于Znf1,因此在核心剪接因子,ZNF域和翻译调节之间提供了联系。总的来说,我们的工作揭示了U2AF26/35及其ZNF领域的意外功能,从而有助于更好地理解其在哺乳动物细胞中的作用和调节。
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