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双重缺失的疫苗病毒哥本哈根菌株针对恶性胸膜间皮瘤
恶性胸膜间皮瘤（MPM）是缺乏有效治疗的胸膜癌。使用溶瘤疫苗病毒（VV）的溶瘤免疫治疗可能代表一种治疗这种迹象的替代治疗方法。在这里，我们研究了VV百点激酶（TK） - 核糖核苷酸还原酶（RR） - /绿色荧光蛋白（GFP）的溶瘤活性。该病毒是哥本哈根菌株的VV，该VV由编码TK（J2R）和RR（I4L）的两个基因删除，并表达GFP。首先，我们在体外表明VV TK-RR-/GFP有效地感染并杀死了本研究中使用的22个人MPM细胞系。我们还表明，该病毒在所有八个测试的MPM细胞系中都复制，但是，从一个细胞系到另一个细胞系，在扩增水平上大约有10倍的差异。然后，我们研究了伴有腹膜腹膜人类MPM Tumors的非肥胖糖尿病（NOD）严重合并免疫（SCID）小鼠的VV TK-RR-/ GFP的治疗效率。与未经治疗的动物相比，VV TK-/GFP的一种腹膜内感染会导致肿瘤负担，显着增加小鼠的存活。因此，VV TK-RR-可能是MPM溶瘤免疫疗法的有前途的溶瘤病毒（OV）。
新颖的β-...
Alcantara，Marion； Simonin，Mathieu； Ludovic的Lhermitte； Touzart，Aurore；杜尔，玛丽·埃米莉（Marie Emilie）； Latiri，Mehdi；灰色，纳塔莉； Cayuela，Jean Michel；查兰登，伊夫； Graux，卡洛斯； Dombret，Hervé； Ifrah，诺伯特；小，阿诺德； MacIntyre，＆nbspelizabeth [还有3个]Alcantara，Marion； Simonin，Mathieu； Ludovic的Lhermitte； Touzart，Aurore；杜尔，玛丽·埃米莉（Marie Emilie）； Latiri，Mehdi；灰色，纳塔莉； Cayuela，Jean Michel；查兰登，伊夫； Graux，卡洛斯； Dombret，Hervé； Ifrah，诺伯特；小，阿诺德； MacIntyre，＆nbspelizabeth [还有3个]
四基因缺失的伪狂犬病毒株的开发和免疫原性评估
自2011年以来，伪狂犬病毒（PRV）变种的出现导致大量疫苗失败，给中国养猪业造成了严重的经济损失。常规PRV疫苗对这些新出现的变种的疗效有限，这凸显了对新型免疫策略的迫切需求。本研究旨在开发和评估一种具有改进的安全性和免疫原性的新型重组PRV候选疫苗。利用同源定向修复（HDR）-CRISPR/Cas9系统，我们生成了一个重组PRV毒株，称为PRV SX-10 Δ gI/gE/TK/UL24，其中gI、gE、TK和UL24基因被删除。体外分析表明，重组病毒表现出与亲本株相似的复制动力学和生长曲线。在小鼠和猪模型中评估了重组PRV的免疫学特性。接种PRV SX-10 Δ gI/gE/TK/UL24的所有动物均存活，未表现出明显的临床症状或病理改变。免疫学测定表明，与Bartha-K61和PRV SX-10 Δ gI/gE/TK菌株相比，PRV SX-10 Δ gI/gE/TK/UL24引发的gB特异性抗体、中和抗体和细胞因子（包括IFN-γ、IL-2和IL-4）水平明显更高。值得注意的是，与其他疫苗株相比，接种 PRV SX-10 Δ gI/gE/TK/UL24 的小鼠和猪受试者均表现出对变异 PRV SX-10 毒株攻击的增强保护作用。这些发现表明 PRV SX- 10 Δ gI/gE/TK/UL24 代表了一种有前途的 PRV 疫苗候选株，为临床应用中 PRV 的预防和控制提供了宝贵的见解。
CBI 删除的副本 Hjelle Advisors, LLC 2023 年 4 月 25 日，......
为了生成基因编辑的无转基因大豆植物，设计了多个 sgRNA（单向导 RNA），并将其用于靶向 GmNF-YC4-1（Glyma.06G169600）启动子中的不同区域。使用农杆菌介导的转化将 Cas9 和多达六个向导 RNA 表达盒引入稳定转化的大豆植物中。使用 PacBio DNA 序列分析检测了 GmNF-YC4 启动子中含有缺失的 T0 植物。使用 PCR 分析和 DNA 测序检查了由 T0 植物自花授粉产生的 T1、T2 和 T3 植物，以识别缺失纯合且未继承含有 T-DNA 的基因编辑机制的品系。通过定量 PCR 测定 T-DNA 的存在与否以确定拷贝数。已经（或将）使用至少六对 PCR 引物对在拷贝数测定中未显示 T-DNA 拷贝的大豆品系进行 T-DNA 存在与否的检查，以调查大豆基因组中是否存在 T-DNA 载体序列。如果发现基因组中存在 T-DNA 载体序列，则将大豆品系与未转化大豆进行杂交，并选择包含预期的 NF-YC4 启动子缺失且不包含任何 T-DNA 载体序列的后代。
TNG462 是一种潜在的同类最佳 MTA 协同 PRMT5 抑制剂，可用于治疗 MTAP 缺失的实体瘤
MTAP 缺失发生在 10-15% 的人类癌症中，这提供了最大的精准肿瘤患者群体之一。MTA 合作 PRMT5 抑制剂利用 PRMT5 抑制和 MTAP 缺失之间已充分表征的合成致死关系。TNG908 是一种临床阶段的 MTA 合作 PRMT5 抑制剂，用于治疗 MTAP 缺失的实体瘤。TNG462 是一种研究阶段的 MTA 合作 PRMT5 抑制剂，具有显著增强的效力、选择性和扩大的靶标覆盖范围，旨在成为 MTAP 缺失癌症患者的最佳治疗方案。在体外，TNG462 对 MTAP 缺失癌细胞系的选择性是同源 MTAP WT 细胞系的 45 倍，并且在大型多样化细胞系组中对 MTAP 缺失癌细胞系具有显着的选择性，与谱系无关。口服 TNG462 可产生剂量依赖性抗肿瘤活性，包括持久的肿瘤消退和代表临床相关组织学的细胞系和患者衍生异种移植模型中的完全反应。临床前数据表明药物相互作用风险低，支持临床联合策略。由于对 MTAP 缺失癌细胞的效力和选择性增强，以及药代动力学特性改善以扩大靶标覆盖范围，TNG462 有可能在 MTAP 缺失实体瘤中发挥比目前正在临床试验中评估的其他 MTA 合作 PRMT5 更广泛和更深的临床活性。
CD7 缺失的造血干细胞可在 CAR-T 细胞治疗后恢复免疫力
简介 靶向 CD19 的嵌合抗原受体 (CAR) T 细胞是治疗 B 细胞恶性肿瘤的有效方法。然而，由于可安全靶向且不会引起过度毒性的抗原很少，因此将这种治疗范围扩大到 B 细胞恶性肿瘤之外具有挑战性。解决这个问题的一种策略是从造血干细胞 (HSC) 中基因敲除靶抗原，然后产生对 CAR T 细胞疗法有抗性的抗原阴性造血系统。作为原理证明，我们和其他人已经证明，可以安全地从 HSC 中删除髓系抗原 CD33，并且可以产生对包括 CAR T 细胞在内的 CD33 靶向免疫疗法有抗性的 CD33 - 髓系细胞 (1-3)。我们现在建议将这种策略扩展到 T 细胞抗原。由于正常和恶性 T 细胞之间靶抗原的共同表达，T 细胞恶性肿瘤对 CAR T 细胞疗法提出了额外的挑战。为了解决这个问题，我们研究小组开发了靶向 CD7 的 CAR T 细胞，这种细胞经过基因编辑，既缺乏 CD7，又缺乏 T 细胞受体（靶向 CD7 的通用嵌合抗原受体 T 细胞 [UCART7]），以避免自相残杀并允许使用同种异体 T 细胞进行治疗 (4)。其他研究小组也独立开发了通过去除 CAR T 细胞中的 CD7 表达来减轻自相残杀的策略 (5, 6)。然而，这些策略都无法解决对正常 T 细胞和 NK 细胞的毒性限制问题，这可能会导致持续的免疫缺陷和对机会性感染的易感性。在这里，我们表明，消除所有表达 CD7 的细胞将对人类健康有害，因为这将消除免疫系统中大多数细胞毒性效应细胞，而剩余的 CD7-T 细胞不能发挥全方位的免疫细胞功能。然后，我们表明，在 HSC 中基因删除 CD7 基因是可行的，而不会损害其植入和分化为成熟造血细胞（包括 T 细胞和 NK 细胞）的能力。此外，我们发现 CD7-KO T 细胞在功能上与对照 T 细胞难以区分，并保留了 CD7 + T 细胞的特性，而 CD7 - T 细胞则缺乏这些特性。最后，我们表明 CD7-KO T 细胞和 NK 细胞对 UCART7 攻击具有抵抗力，因此可以在 CAR T 细胞治疗后保持宿主免疫力。
CD7 缺失的造血干细胞可在 CAR-T 细胞治疗后恢复免疫力
简介 靶向 CD19 的嵌合抗原受体 (CAR) T 细胞是治疗 B 细胞恶性肿瘤的有效方法。然而，由于可安全靶向且不会引起过度毒性的抗原很少，因此将这种治疗范围扩大到 B 细胞恶性肿瘤之外具有挑战性。解决这个问题的一种策略是从造血干细胞 (HSC) 中基因敲除靶抗原，然后产生对 CAR T 细胞疗法有抗性的抗原阴性造血系统。作为原理证明，我们和其他人已经证明，可以安全地从 HSC 中删除髓系抗原 CD33，并且可以产生对包括 CAR T 细胞在内的 CD33 靶向免疫疗法有抗性的 CD33 - 髓系细胞 (1-3)。我们现在建议将这种策略扩展到 T 细胞抗原。由于正常和恶性 T 细胞之间靶抗原的共同表达，T 细胞恶性肿瘤对 CAR T 细胞疗法提出了额外的挑战。为了解决这个问题，我们研究小组开发了靶向 CD7 的 CAR T 细胞，这种细胞经过基因编辑，既缺乏 CD7，又缺乏 T 细胞受体（靶向 CD7 的通用嵌合抗原受体 T 细胞 [UCART7]），以避免自相残杀并允许使用同种异体 T 细胞进行治疗 (4)。其他研究小组也独立开发了通过去除 CAR T 细胞中的 CD7 表达来减轻自相残杀的策略 (5, 6)。然而，这些策略都无法解决对正常 T 细胞和 NK 细胞的毒性限制问题，这可能会导致持续的免疫缺陷和对机会性感染的易感性。在这里，我们表明，消除所有表达 CD7 的细胞将对人类健康有害，因为这将消除免疫系统中大多数细胞毒性效应细胞，而剩余的 CD7-T 细胞不能发挥全方位的免疫细胞功能。然后，我们表明，在 HSC 中基因删除 CD7 基因是可行的，而不会损害其植入和分化为成熟造血细胞（包括 T 细胞和 NK 细胞）的能力。此外，我们发现 CD7-KO T 细胞在功能上与对照 T 细胞难以区分，并保留了 CD7 + T 细胞的特性，而 CD7 - T 细胞则缺乏这些特性。最后，我们表明 CD7-KO T 细胞和 NK 细胞对 UCART7 攻击具有抵抗力，因此可以在 CAR T 细胞治疗后保持宿主免疫力。