图3。(a,b)在三(a)4.5和(b)5.5 ml CQW样品的泵探针延迟下,在3 ps的泵孔延迟下将激子的吸收强度归一化,这是光生片密度的函数。每个频谱以3 ps泵探针延迟的3.5 eV泵灯光收集。(c,d)重孔和轻孔漂白信号的比例是相同(C)4.5和(D)5.5 ml样品的光生片密度的函数。(e,f)在瞬时吸收光谱(ΔA)的HH漂白特征的半宽度(HWHM)中,绘制了针对相同(E)4.5和(F)5.5 ml样品的显微薄纸密度的绘制的。在所有情况下,用3.5 eV泵的测量数据显示在实心符号中显示,2.72 eV泵测量的数据显示在开放式符号中。实线代表平均平均值的3.5 eV泵实验,虚线对应于平均平均值为2.72 eV泵。
图1:一个弱监督的深度学习框架,用于对空间转录组学数据的准确荧光斑点检测。(a)培训数据生成以进行点检测。点标记是通过通过生成建模在一系列常用的经典斑点检测算法中找到共识而产生的。然后使用这些共识标签来训练Polaris的点检测模型。顺序步骤与箭头链接;相关的方法和数据类型与实线链接。(b)示例图像的训练数据生成的演示。斑点位置被转换为编码的检测和距离图,这些检测图指导模型训练期间执行的分类和回归任务。斑点颜色对应于(a)中的注释颜色。(c)示例seq鱼图像的北极星点检测模型的输出。高于默认阈值的回归值设置为零。(b-c)中的回归图像是X和Y指导中平方像素回归的总和。(d)EM方法的示意图,以适合共识点注释创建的生成模型。
来源:Dorrucci 和 Freier (2023),基于欧盟委员会数据和欧洲中央银行体系公共财政工作组的估计。根据 Coeuré 报告 (2021),法国在 RRF 下的现金支出。注:实线表示德国 (DE)、法国 (FR)、意大利 (IT) 和西班牙 (ES) 在 RRF 期间 (2021-26) 预计吸收的 RRF 资金。虚线表示这四个国家实际吸收的欧盟过去在欧盟多年期财政框架 (MFF) 下提供的资源。吸收率是支付给成员国的金额占该国可获得的欧盟总预算的百分比。第 1 年是相应计划的第一年,即 2007-13 MFF 为 2007 年,2014-20 MFF 为 2014 年,RRF 为 2021 年。第 1 年包括 RRF 下的预融资。2007-13 年 MFF(黑色虚线)的吸收率显示为四个国家的平均值,包括欧洲区域发展基金 (ERDF)、凝聚基金 (CF) 和欧洲社会基金 (ESF),而 2014-20 年 MFF 仅包括 ERDF 和 CF。2014-20 年 MFF 下的数据是 2021 年(图表中的第 8 年)的临时数据
fi g u r e 1这个框中的概念图描述了在不同空间尺度上运行的metAcmunity稳定性的不同机制。在所有情况下,具有不同颜色的实线表明了不同物种的丰富性,而面板中的虚线B和C表示元社区中所有物种的汇总丰度。在面板A中,场景(a)说明了一个情况,其中一个物种随着时间的流逝而在丰度或生物量中差异很大。在A面板中,方案(b)与方案(a)相比,由于当地社区中的物种异步,本地社区的稳定性有所提高。在面板A中,场景(C)由于存在高度稳定的物种而实现了本地社区的稳定性。面板B表示从(a)到(c)的每个本地社区由不同物种(即高β多样性)组成的情况。在这种情况下,高β多样性可以增强由于不同当地社区不同物种之间的空间异步而引起的元社区稳定性。在面板C中,可以说明一种情况,在这种情况下,由于平均物种稳定性(方案[A])或局部物种异步,所有当地社区都稳定。在这种情况下,由于每个当地社区的稳定性高,可以实现区域稳定。
图5。1 -like(浅蓝色)或2个(洋红色)痕迹的1D直方图由混合溶液测量的不同模型排序。基于使用0.4 nm片段作为输入的分类结果显示为实线。作为参考,使用剪切迹线作为输入的分类结果在此重现为阴影区域。(a)应用于0.4 nm片段的CNN模型会产生3066 1类和5216 2类样痕迹(与3406 1类似于3406 1 -like和4876 2-在使用完整迹线时喜欢痕迹)。(b)应用于0.4 nm片段的PC 1 /1DH模型产生6053 1类和2229 2类样痕迹(与4397 1-类似于4397 1 -like和3901 2 -like tlace时,使用完整的痕迹时)。(c)应用于0.4 nm片段的KMeans/2DH模型产生392 1-类似于7890 2-像痕迹(与5260 1 -like和3022 2 -2 -like Traces相比,当使用完整的迹线时)。(d)应用于0.4 nm片段的逻辑回归模型产生的4730 1类和3553 2类样痕迹(与4569 1-类似于4569 1的痕迹和3713 2 -2 -like tlace tlace时使用完整痕迹时)。
图2。y 3+x al 5-x o 12(0≤x≤0.4)的结构演变得出了SXRD数据的分析。(a)Y 3.4 Al 4.6 O 12(R WP = 8.79%,χ= 1.16)的Rietveld细化具有高角度拟合插图的变焦。Blue tick marks indicate garnet reflections (99.77(2) wt.%), green tick marks indicate perovskite reflections (YAlO 3 , 0.33(2) wt.%) (b) The garnet structure of Y 3.4 Al 4.6 O 12 projected along (100), and a fragment projected along (111) showing the three different cation environments (orange atoms = Y 3+ ; dark blue octahedra = Alo 6;浅蓝色四面体= ALO 4)。(c)具有线性拟合覆盖(实线)的精制晶格参数A,并通过y 3+对16个位点的精制占用率,名义占用覆盖(虚线)。(d)在三种不同的阳离子环境中精制的金属氧距离(m-o)x,在y 3 al 5 o 12(m- o)0时标准化为其值。蓝色三角形=直接结晶样品;洋红色倒三角=玻璃结晶样品。错误栏对应于细化中的10x ESD。
图 1 | 使用 DNA 支架形成 Cy3 聚集体的化学方法。 (a) Cy3 (左) 共价连接到单链 DNA (ss-DNA) 脱氧核糖磷酸骨架的 3' 和 5' 端。 Cy3 修饰的 DNA 纳米结构是通过将 Cy3 修饰的 ssDNA 与规范互补的 ssDNA 链杂交而形成的,如连接到 DNA 双链体的 Cy3 单体的分子动力学快照 (中间) 和示意图 (右、上) 中蓝色椭圆表示 Cy3 所示。 Cy3 二聚体和三聚体是通过将连续的 Cy3 发色团连接到 ssDNA 并与互补链杂交而形成的 (右、中和下) (b) Cy3 单体 (棕色)、二聚体 (蓝色) 和三聚体 (绿色) 的吸光度 (实线) 和量子产率归一化的荧光光谱 (虚线)。 [DNA 双链] = 0.5 µ M,溶于 40 mM Tris、20 mM 醋酸盐、2 mM 乙二胺四羧酸 (EDTA) 和 12 mM MgCl 2 (TAE-MgCl 2 缓冲液)。(c) 双链中 Cy3 单体、二聚体和三聚体的荧光量子产量 (ΦF)。[DNA 双链] = 0.5 µ M,溶于 1 × TAE-MgCl 2 缓冲液。(d) Cy3 单体、二聚体和三聚体的圆二色性 (CD) 光谱。(e) Cy3 单体、二聚体和三聚体的荧光衰减轨迹,仪器响应函数以黑色显示。
图1。SOX2 C-IDR是无序且动态的。a)Sox2的示意图说明了本研究中使用的主要构建体。基于两个不同的预测因子(疾病332(虚线),Alphafold 19归一化PLDDT(实线)),该图显示了障碍预测与残基数的函数。DBD以及广告和富含丝氨酸的区域(有关详细信息,请参见文本)以及带电残基的位置。b)在5 µm浓度下不同SOX2变体的远紫外圆形二分法;全长Sox2(蓝色),C-IDR(灰色),N-DBD(绿色)。光谱是n = 3个独立测量值的平均值。c-d)Sox2荧光标记的单分子转移效率直方图,该荧光标记了DBD的两侧(残基37和120,分子数= 5323)或探测整个C- IDR(残基120-315,分子数量,分子数= 14544)。e)SOX2 C-IDR的荧光寿命分析。2D相关图显示了相对于固有供体荧光(d)的CY3B供体(da)的荧光寿命。动态线基于锯 - 聚合物模型。有关详细信息,请参见文本。f)1 H 15 N-HSQC全长SOX2的频谱。g)全长Sox2(蓝色)的CSCS图。确定DBD(绿色)的 SCSS针对孤立的N-
AFM显微照片(图S1)。D H分布记录在分散在Tris-Edta(TE)缓冲液中的CMP上的Malvern-Zetasizer-Nano仪器上(5 mM Tris,1 mm EDTA,1 mm EDTA,5 mm NaCl,pH 7.3)。(d)菌株促进的叠氮化物 - 烷基环加成(SPAAC)的方案 - 铜铜的铜线自由点击反应在叠氮化物标记的CMPS和二苯并杂志环链(DBCO) - 修饰的ssDNA低聚物之间。(e)根据耗尽测定估计的平均值(SEM)标准误差的平均ssDNA数量与标称移植密度r(x)相比。(f)在90 MA处的0.5%琼脂糖凝胶上,在不同的R(x)值上对CMP和CMP-DNA偶联物进行的琼脂糖凝胶电泳移位测定,P代表装载口袋。(g)CMP-DNA的凝胶相对前(r f)相对于r(0)样品的r f,无ssDNA作为r(x)的函数。(h)CMP-DNA偶联物的体积加权粒子流体动力学大小(D H)作为R(x)的函数。面板F和G中的实线是拟合参数r f lemal = 0.42 dna/nm 2和n = 6.3和r falt = 0.48 dna/nm 2和n = 4.5的山丘方程。比例尺分别在面板(a)和(b)中为50和100 nm。
图2杀死CHO-K1细胞的摇瓶中的曲线,抗生素尿霉素的浓度不同。实验总共进行了四个重复。每隔第二天(用黑色箭头表示)通过离心和在新鲜培养基中与补充纯嘌呤霉素重悬于细胞分离中。(a)描绘的是由Kuhner Tom设备确定的氧转移速率(OTR)。为了清楚起见,随着时间的推移,每个第十二个测量点都被标记为符号。在从数据中删除了由于温度适应引起的每个介质交换后,OTR数据中的单个Outliner。有关原始数据,请参阅图S2A。两个在线监视的生物学重复用实线和填充符号或虚线和开放符号表示。(b)离线培养了另外两种生物学重复。离线分析的生物学重复被描述为固体和填充的符号或虚线和开放符号。通过离线摇瓶通过Neubauer室法在每个培养基交换处确定可行的细胞密度(VCD)。(c)可行性是从相同样品中计算出来的。在Kuhner Tom设备中进行培养。培养条件:100 ml玻璃瓶,温度(T)= 36.5 C,摇动频率(n)= 140 rpm,摇动直径(D 0)= 50 mm,填充体积(V L)= 20 ml,5%CO 2,70%rel。哼。启动细胞密度:5 10 5细胞/mL。