预期使用Gen III Microplate™测试面板使用94种生化测试提供了标准化的微方法,以剖面并识别革兰氏阴性和革兰氏阴性细菌的广泛范围。生物学的微生物识别系统软件(例如Omnilog®数据收集)用于从Gen III微板岩中的表型模式中鉴定细菌。描述生物Gen III微镀酸盐分析了94个表型测试中的微生物:71个碳源利用分析(图1,列1-9)和23种化学敏感性测定(图1,列,10-12列)。测试面板提供了微生物的“表型指纹”,可用于在物种水平上识别它。所有必要的营养物质和生化物都被预填充并干燥成96孔的微板井。四唑氧化还原染料用于比色表示碳源的利用或对抑制性化学物质的抗性。进行测试非常简单,如图2所示。要鉴定的分离物在琼脂培养基上生长,然后在推荐的细胞密度下悬浮在特殊的“胶凝”接种液3(IF)中。然后将细胞悬浮液接种到Gen III微板酸盐中,每孔100 µL,然后将微孔板孵育以使表型指纹形成。接种时,所有井都无色。在孵育过程中,在细胞可以利用碳源和/或生长的井中呼吸增加。增加的呼吸导致四唑氧化还原染料的减少,形成紫色。图1。负井仍然无色,负面对照井(A-1)也没有碳源。也有一个阳性对照井(A-10)用作10-12列中化学敏感性测定的参考。孵化后,将紫色井的表型指纹与生物学广泛的物种文库进行了比较。如果发现匹配,则将进行分离物的物种水平识别。在微板元素III微板TM
目标 提供有关 MEMS 技术和制造的基本知识。 课程目标 本课程应使学生能够: 1. 了解微制造的演变。 2. 学习各种制造技术。 3. 了解微传感器和微执行器。 4. 学习各种微执行器的设计。 第一单元简介(9 小时) 基本定义 – 微制造的演变 – 微系统和微电子学,缩放定律:静电力、电磁力、结构刚度、流体力学和传热的缩放。 第二单元微传感器(9 小时) 简介 – 微传感器:生物医学传感器和生物传感器 – 化学传感器 – 光学传感器 – 压力传感器 – 热传感器、声波传感器。 第三单元微执行器(9 小时) 微驱动:使用热力、压电晶体、静电力进行驱动。基于 SMA 的微执行器,微执行器:微夹钳、微电机、微阀门、微泵、微加速度计 - 微流体。第四单元 MEMS 制造技术(9 小时)MEMS 材料:硅、硅化合物、压电晶体、聚合物微系统制造工艺:光刻、离子注入、扩散、氧化、CVD、溅射、蚀刻技术。第五单元微加工(9 小时)微加工:体微加工、表面微加工、LIGA 工艺。封装:微系统封装、基本封装技术、封装材料选择。
肠道菌群越来越被认为是肠粘膜中血管发育和内皮细胞功能的致动变量,但也影响远程器官的微脉管系统。在小肠中,用肠道菌群定殖以及随后的先天免疫途径的激活促进了复杂的毛细血管网络和乳乳的发展,从而影响了肠道的完整性 - 血管屏障的完整性以及营养摄取。由于肝脏通过门户循环产生大部分的血液供应,因此肝微循环稳步遇到微生物元素衍生的模式和主动信号代谢物,这些代谢产物会诱导肝弦正弦内皮的组织变化,从而影响正弦的免疫分化并影响代谢过程。,此外,微生物群衍生的信号可能会影响远处器官系统(例如大脑和眼睛微血管)的脉管系统。近年来,这个肠道居民的微生物生态系统被揭示出有助于几种血管疾病表型的发展。
我们探索了 UB-612 的加强免疫原性,UB-612 是一种多表位疫苗,含有 S1- RBD-sFc 蛋白和 Sarbecovirus N、M 和 S2 蛋白上序列保守的混杂 Th 和 CTL 表位肽。对于参与两剂 II 期试验的无感染参与者亚群 (N = 1,478)(年龄 18-85 岁),在第二剂后 6-8 个月给予 UB-612 加强剂(第三剂)。在加强剂后 14 天评估免疫原性,并监测总体安全性直至研究结束。加强剂诱导了针对活武汉 WT(VNT 50 ,1,711)和 Delta(VNT 50 ,1,282)的高病毒中和抗体;以及针对假病毒 WT(pVNT 50,11,167)和 Omicron BA.1/BA.2/BA.5 变体(pVNT 50,2,314/1,890/854)的抗体。老年人较低的原发性中和抗体在加强免疫后升高至年轻人的大致相同水平。UB-612 还诱导了强效、持久的 Th1 导向(IFN-γ + -)反应(峰值/加强免疫前/加强免疫后 SFU/10 6 PBMCs,374/261/444)以及细胞毒性 CD8 + T 细胞的强劲存在(峰值/加强免疫前/加强免疫后 CD107a + -Granzyme B +,3.6%/1.8%/1.8%)。这种 UB-612 加强免疫安全且耐受性良好,没有 SAE。
1 冷泉港实验室,美国纽约州冷泉港。2 霍华德休斯医学研究所,冷泉港实验室,美国纽约州冷泉港。3 瓦伦西亚理工大学瓦伦西亚农业多样性保护与促进研究所,西班牙瓦伦西亚。4 美国马里兰州巴尔的摩约翰霍普金斯大学计算机科学系。5 美国马里兰州巴尔的摩约翰霍普金斯大学遗传医学系。6 法国国家农业、食品与环境研究所,植物-微生物相互作用实验室,法国图卢兹。7 美国纽约州冷泉港冷泉港实验室生物科学学院。8 美国纽约州伊萨卡博伊斯汤普森研究所。9 加拿大安大略省圭尔夫大学综合生物学系。10 英国爱丁堡爱丁堡皇家植物园。 11 美国农业部农业研究局,戴尔·邦珀斯国家水稻研究中心,美国阿肯色州斯图加特。12 以色列拉马特伊沙伊新亚尔研究中心,农业研究组织,蔬菜科学系,瓜类科。13 德国盖特斯莱本莱布尼茨植物遗传与作物研究所。14 德国哈雷(萨勒河)马丁路德哈雷维滕贝格大学作物遗传学系。15 美国新墨西哥州拉斯克鲁塞斯新墨西哥州立大学植物与环境科学系。16 美国新墨西哥州阿尔卡尔德新墨西哥州立大学可持续农业科学中心。17 法国里昂高等师范学院,法国国家农业科学研究院,里昂大学,植物繁殖与发展实验室。18 美国马萨诸塞州南哈德利曼荷莲学院生物科学系。19 英国伦敦自然历史博物馆。 20 加拿大安大略省多伦多市多伦多大学生理学系和唐纳利细胞与生物分子研究中心。21 美国纽约州伊萨卡市康奈尔大学植物育种与遗传学系。22 以色列雷霍沃特魏茨曼科学研究所植物与环境科学系。
免疫检查点抑制剂(ICI)代表了治疗恶性肿瘤(例如黑色素瘤和非小细胞肺癌)的开创性进步,展示了实质性的治疗作用。尽管如此,ICI的效率仅限于一小部分患者,主要使患有“热”肿瘤的患者受益,其特征是具有明显的免疫性效果。将“冷”肿瘤转化为最少的免疫活性的挑战,以增强其对ICIS的反应性,是当前研究的关键而复杂的领域。这项努力的中心是CGAS刺途径的激活,CGAS刺激途径是先天性和适应性免疫之间的关键联系。该途径的激活促进了I型干扰素(IFN)的产生和CD8 +