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World File Search System猪餐
猪 细小 蛋白 NRPS 基因 的 生物 勘探 及 检测
摘要 ：弧菌病和败血症是由细菌引起的感染，给水产养殖业带来了许多问题。海参等海洋生物被广泛认为含有具有抗菌潜力的共生微生物，因此生物勘探前景十分广阔。本研究旨在分析海参单疣刺参共生菌对嗜水气单胞菌和哈维氏弧菌的抗菌潜力并检测其NRPS基因。研究方法包括海参单疣刺参肠道共生菌的分离、抗菌活性筛选、16S rRNA鉴定和NRPS基因簇检测。共分离出16株细菌，其中12株分离株对病原菌嗜水气单胞菌有抑制潜力，7株分离株对病原菌哈维氏弧菌有抑制潜力。经16S rRNA鉴定，能够抑制A. hydrophila生长的共生菌为枯草芽孢杆菌（Bacillus subtilis），而能够抑制V. harveyi病原菌的共生菌为弯曲芽孢杆菌（Bacillus flexus），在枯草芽孢杆菌和弯曲芽孢杆菌中均检测到NRPS基因簇，扩增子大小约为250 bp。
基因编辑猪的囊胚互补和种间嵌合体
终末期器官衰竭或急性创伤性损伤与相当高的发病率和死亡率相关。对于许多此类绝症或毁灭性疾病，唯一的治愈疗法是实体器官移植 ( Garry 等人， 2005 年； Virani 等人， 2021 年 )。由于器官捐赠者数量有限，这种治愈性疗法仅适用于需要这些疗法的一小部分患者。例如，据估计，每年有 20 万至 30 万美国成年人可从原位心脏移植中受益，但只有大约 3000 名成年人接受了心脏移植 ( Virani 等人， 2021 年 )。这种差异推动了人们寻求替代疗法。除了心脏病等终末期器官疾病外，还有威胁四肢并最终导致肌肉体积损失的创伤性损伤 ( Corona 等人， 2015 年； Greising 等人， 2016 年 )。目前，治疗肌肉体积损失的治疗方法有限，因此导致大量发病率、截肢、终身残疾和生命损失（Greising 等人，2017 年）。这些慢性疾病和创伤需要新的治疗方法。基因编辑（Doudna 和 Charpentier，2014 年；Jinek 等人，2012 年；Cong 等人，2013 年）和体细胞核移植 (SCNT) 技术等技术进步
非洲猪发烧活的病毒疫苗安全性，功效
•猪的高烧，食欲丧失，共济失调，抑郁症和猪死亡率高达100％死亡率的高结果ASF病因。•1909年首次描述了它在肯尼亚感染了欧洲起源的家养猪。很长一段时间以来都被限制在非洲。•1950年代，1960年代的爆发和1990年代除非在非洲以外的人口减少。•著名的暴发：2007年佐治亚州，2018年中国。
一种用于评估假体的长期猪模型...
背景：动物实验测试对于假体心脏瓣膜和植入技术的临床前评估至关重要。由于包括二尖瓣在内的人类和猪心脏结构显示出显着的解剖相似性，因此这些动物是临床前测试的良好候选者。以前的建立这种长期模型的尝试受到术中和术后困难的阻碍。我们的目的是克服这些困难，以开发二尖瓣置换（MVR）的猪模型，然后研究3个弦重建程序的实际可行性。方法：将16只60公斤猪分配给3个手术程序中的1个，（1）保存整个瓣膜式设备（n = 8），（2）仅次级和综合（n = 4）或（3）与天然瓣膜和乳头状恢复的分裂（n = 4）或（3）。在体外循环期间植入了圣裘德医疗阀（29毫米）和冷心脏瘫痪。通过皮下肝素注射来给予术后抗药性。结果：十四只动物生存了1个月，繁荣而没有心力衰竭迹象。由于气管管中不可逆的出血，一只动物被安乐死，另一只动物因瓣膜血栓形成而在术后第三次死亡。结论：已经建立了一种实际上可行的MVR长期猪模型。因为与人类的解剖学和生理相似性相对于其他物种是对其他物种的支持，所以我们认为该模型是
学习差异方程式具有结构化语法进化的餐后血症预测
结果表明，我们的建议提供了可解释的解决方案，而无需牺牲预测准确性或安全性，并提供了一种有希望的糖尿病管理葡萄糖预测方法，可以平衡准确性，安全性，可解释性和计算效率。
利用 CRISPR/Cas9 系统在猪胚胎中表达 cd163
摘要 基因编辑 (GE) 在养猪生产中的应用可以产生广泛的影响，因为它可以增加基因编辑猪在农业和生物医药中的可用性。成簇的规律间隔的短回文重复序列 (CRISPR)/CRISPR 相关蛋白 9 (Cas9) 系统的最新应用有望提高基因编辑的效率。CRISPR/Cas9 系统的细胞质微注射能够在猪受精卵中诱导位点特异性突变。在本研究中，我们检查了通过细胞质微注射将 CRISPR/Cas9 蛋白和分化簇 163 (cd163) 引导 RNA (gRNA) 成分引入受精卵的效率。CRISPR/Cas9 蛋白和 cd163 gRNA 注射组的裂解率 (78.9% 和 85.2%) 与对照组 (90.6%) 在统计学上相似。此外，CRISPR/Cas9 蛋白和 cd163 gRNA 注射组的囊胚形成率（19.9% 和 19.6%）也与对照组（21.5%）具有统计学差异。当对单个囊胚进行基因分型时，我们在后续的囊胚中观察到基因的靶向修饰。在 10 ng/ul 样本中，CRISPR/Cas9 蛋白和 cd163 (10+134) gRNA 各注射组（22.7%）显著高于（p<0.05）CRISPR/Cas9 蛋白和 cd163(10) gRNA 各注射组（12.9%）。在突变囊胚中检测到了各种类型的 indel 突变，包括 4 bp 缺失到 72 bp 插入。这些结果表明，CRISPR/Cas9 技术可用于通过直接受精卵注射生产基因编辑猪。
CRISPR/Cas9 介导大转基因整合至猪 CEP112 基因座
摘要 成簇的规律间隔短回文重复序列 (CRISPR) 相关蛋白 9 (Cas9) 是一种精确的基因组操作工具，可在各种细胞和生物体中产生靶向基因突变。尽管 CRISPR/Cas9 可以有效地产生基因敲除，但同源定向修复介导的基因敲入 (KI) 效率仍然很低，尤其是对于大片段整合。在本研究中，我们建立了一种有效的方法，用于 CRISPR/Cas9 介导的大型转基因盒整合，该盒携带唾液腺表达的多种消化酶 (20 kbp) 在猪胎儿成纤维细胞 (PFF) 的 CEP112 基因座中。我们的结果表明，使用具有短臂和长臂的最佳同源供体在 CEP112 基因座中产生了最好的 CRISPR/Cas9 介导的 KI 效率，并且 CEP112 基因座的靶向效率高于 ROSA26 基因座。CEP112 KI 细胞系被用作核供体，进行体细胞核移植以创建转基因猪。我们发现 KI 猪 (705) 在唾液腺中成功表达三种微生物酶 (b-葡聚糖酶、木聚糖酶和植酸酶)。这一发现表明 CEP112 基因座通过组织特异性启动子支持外源基因表达。总之，我们利用我们的最佳同源臂系统成功地在猪体内靶向 CEP112 基因座，并建立了一种改良的猪唾液中表达外来消化酶的模型。
对猪肠道微生物群对健康和生产绩效的影响的研究进展
猪肠道菌群在猪的健康和生产性表现中起着至关重要的作用，影响了营养吸收，饲料转化效率以及最终的生产盈利能力。除了是消化的主要部位外，肠子还容纳了猪最大的免疫器官，那里的微生物群落对于整体幸福感至关重要。在仔猪阶段，肠道菌群经历了动态进化，逐渐适应宿主环境。这种可塑性提供了从早期阶段进行干预和优化其组成的机会，从而增强了动物健康和发展。在此过程的关键因素中，饮食纤维起着基本作用，因为肠道菌群的发酵直接影响其组成和功能，尤其是在远端小肠，结肠和直肠。在此过程中产生的短链脂肪酸不仅为肠细胞提供连续的能量，还可以调节免疫反应，防止感染并导致人体的体内平衡，从而促进健康的生长。尽管在理解宿主 - 微生物群相互作用方面取得了进步，但仍未就肠道微生物群的最佳平衡或健康微生物群的精确定义达成明确的共识。当前的研究旨在确定调节胃肠道菌群及其生理和免疫功能的因素。未来的发现将有助于制定策略以恢复外部干扰（例如压力，抗生素使用或感染）后肠道稳态，从而提高生产率，降低与压力相关的影响并预防猪产量中的疾病。
牛和猪基因组中可能致病变异的证据和定位
摘要背景：本文回顾了当代猪和牛参考基因组中已发表的潜在致病变异的定位及其因果关系的证据。尽管从基因图谱和全基因组关联研究中鉴定致病变异本身就很困难，但动物遗传学研究人员已经针对几种与牲畜育种相关的性状提出了推定的致病变异。结果：为了进行这篇综述，我们阅读了支持牛和猪的 13 个基因（ABCG2、DGAT1、GHR、IGF2、MC4R、MSTN、NR6A1、PHGK1、PRKAG3、PLRL、RYR1、SYNGR2 和 VRTN）存在潜在致病变异的文献，并将它们定位在当代参考基因组中。我们审查了它们之间的因果关系的证据，旨在将基因座、拟议的致病基因和拟议的致病变异的证据区分开来，并报告在牛或猪基因组中定位序列变异所需的生物信息学搜索和策略。结论：总而言之，通常有很好的证据表明基因座水平存在关联，八个基因座存在特定致病基因的证据，六个基因座存在特定致病变异的一些实验证据。我们建议报告新的潜在致病变异的研究人员使用参考坐标系统，显示本地序列上下文，并将变异提交到存储库。