G 蛋白偶联受体 (GPCR) 形成一个质膜受体超家族,可与四种主要的异三聚体 G 蛋白家族 G s 、 G i 、 G q 和 G 12 偶联。GPCR 是药物治疗的极佳靶点。由于各个 GPCR 由许多不同类型的细胞表达,因此特定细胞类型表达的特定 GPCR 的体内代谢作用尚不清楚。设计 GPCR 被称为 DREADD(仅由设计药物激活的设计受体),可选择性地与不同类别的异三聚体 G 蛋白偶联,极大地促进了该领域的研究。本综述重点介绍如何使用 DREADD 技术探索不同 GPCR/G 蛋白级联在几种代谢重要的细胞类型中的生理和病理生理作用。从这些研究中获得的新见解应促进基于 GPCR 的治疗方法的开发,以治疗 2 型糖尿病和肥胖症等主要代谢疾病。
研究人员利用逆转录腺病毒相关病毒中表达的化学遗传工具选择性地操纵 IC 中的神经活动,这种病毒专门表达由设计药物专门激活的设计受体 (DREADD)。这些病毒本质上是无害的病毒,神经科学家利用它们在特定脑细胞中表达蛋白质,在这种情况下促使它们产生 DREADD。
图1:RBP4 CRE -HM3DQ和RBP4 CRE -HM4DI DREADD激活A,B,兴奋性(蓝色)和抑制性(绿色)DREADD受体和实验程序的电生理验证。补丁钳电生理记录是连续进行的。在恒定的ACSF应用下,在5和10分钟下进行了两次基线记录,然后进行CNO给药,并在申请后2、5和10分钟进行三个记录,然后进行冲洗步骤。在最后一步中,获得了不同时间点的控制记录。c,RBP4 CRE -HM3DQ膜电压响应的代表性示例。d,CNO给药前后的输入输出曲线,以响应当前应用的增加。灰色代表,CNO给药后的蓝色痕迹。在RBP4 CRE -HM3DQ脑切片中CNO给药之前和之后,记录的神经元的膜电阻。基线和CNO管理之间没有显着差异(左)。CNO给药前后记录的神经元的静止膜电位。在CNO给药后,膜被概念性去极化(右)。n = 7只小鼠,单向方差分析通过邓内特的多重比较测试。e,RBP4 CRE -HM4DI膜电压响应的代表性示例。
摘要 肠道微生物群分解不可消化的淀粉后释放的挥发性小分子,包括短链脂肪酸 (SCFA)、乙酸盐和丙酸盐,可通过特定的 G 蛋白偶联受体 (GPCR) 以类似激素的方式发挥作用。这些 SCFA 的主要 GPCR 靶标是 FFA2 和 FFA3。使用转基因小鼠(其中 FFA2 被一种称为设计药物专门激活的设计受体 (FFA2-DREADD) 的改变形式取代,但 FFA3 保持不变)和新发现的 FFA2-DREADD 激动剂 4-甲氧基-3-甲基苯甲酸 (MOMBA)),我们展示了 FFA2 和 FFA3 的特定功能如何定义 SCFA-肠-脑轴。肠腔内 FFA2/3 的激活会刺激脊髓活动,而肠道 FFA3 的激活会直接调节感觉传入神经元的放电。此外,我们证明 FFA2 和 FFA3 均在背根神经节和结状神经节中功能性表达,它们通过不同的 G 蛋白和机制发出信号来调节细胞钙水平。我们得出结论,FFA2 和 FFA3 在不同水平上发挥作用,为肠道微生物群来源的 SCFA 调节中枢活动提供了一个轴。
摘要 肠道微生物群分解不可消化的淀粉后释放的挥发性小分子,包括短链脂肪酸 (SCFA)、乙酸盐和丙酸盐,可通过特定的 G 蛋白偶联受体 (GPCR) 以类似激素的方式发挥作用。这些 SCFA 的主要 GPCR 靶标是 FFA2 和 FFA3。使用转基因小鼠(其中 FFA2 被一种称为设计药物专门激活的设计受体 (FFA2-DREADD) 的改变形式取代,但 FFA3 保持不变)和新发现的 FFA2-DREADD 激动剂 4-甲氧基-3-甲基苯甲酸 (MOMBA)),我们展示了 FFA2 和 FFA3 的特定功能如何定义 SCFA-肠-脑轴。肠腔内 FFA2/3 的激活会刺激脊髓活动,而肠道 FFA3 的激活会直接调节感觉传入神经元的放电。此外,我们证明 FFA2 和 FFA3 均在背根神经节和结状神经节中功能性表达,它们通过不同的 G 蛋白和机制发出信号来调节细胞钙水平。我们得出结论,FFA2 和 FFA3 在不同水平上发挥作用,为肠道微生物群来源的 SCFA 调节中枢活动提供了一个轴。
摘要 反复接触滥用药物会导致中脑边缘多巴胺系统中 cAMP 信号的上调,这种分子适应被认为与药物依赖的发展密切相关。由 cAMP 直接激活的交换蛋白 (Epac2) 是一种在大脑中大量表达的主要 cAMP 效应物。然而,Epac2 是否有助于可卡因强化仍不清楚。在这里,我们报告说,中脑边缘多巴胺系统中的 Epac2 通过增强多巴胺释放来促进可卡因强化。在固定比率和渐进比率强化方案下以及在广泛的可卡因剂量范围内,从中脑多巴胺神经元中条件性敲除 Epac2 (Epac2-cKO) 和选择性 Epac2 抑制剂 ESI-05 降低了小鼠的可卡因自我给药。此外,Epac2-cKO 导致诱发的多巴胺释放减少,而 Epac2 激动剂在体外强烈增强了伏隔核中的多巴胺释放。这种机制是 Epac2 破坏行为效应的核心,因为通过脱氯氯氮平 (DCZ) 诱导的 Gs-DREADD 激活对腹侧被盖区 (VTA) 多巴胺神经元进行化学遗传刺激会增加多巴胺释放并逆转 Epac2-cKO 小鼠的可卡因自我给药障碍。相反,用 Gi-DREADD 对 VTA 多巴胺神经元进行化学遗传抑制会减少野生型小鼠的多巴胺释放和可卡因自我给药。因此,Epac2 介导的多巴胺释放增强可能代表一种有助于可卡因强化的新型强大机制。
摘要帕金森氏病(PD)的特征是黑质(SNC)多巴胺(DA)神经元的死亡,但在其死亡之前的病理生理机制仍然未知。PD中DA神经元的活性可能会改变,但我们对活性的慢性变化是否可能导致退化。为了解决这个问题,我们开发了一种化学遗传(Dreadd)小鼠模型,以长期增加DA神经元的活性,并使用离体电生理学证实了这种增加。DA神经元的慢性过度激活导致在光周期期间运动活性的延长,并在黑暗循环期间减少,这与DA释放和昼夜节律干扰的慢性变化一致。我们还观察到了SNC投影的早期优先退化,从而概括了SNC轴突选择性脆弱性的PD标志和腹侧段面积轴突的比较弹性。接下来是中脑DA神经元的最终丧失。连续的DREADD激活导致基线钙水平持续增加,这支持了在神经变性过程中钙增加的重要作用。最后,来自研究中脑DA神经元和纹状体靶标的无多小鼠的空间转录组学,以及与人类患者样品的交叉验证,提供了对多动症诱导的毒性和PD的潜在机制的见解。因此,我们的结果揭示了SNC DA神经元对增加神经活性的优先脆弱性,并支持增加神经活动在PD驱动变性中的潜在作用。引言帕金森氏病(PD),尼格拉(Nigra)pars commanta(SNC)多巴胺(DA)神经元的丧失导致基底神经节中电路动态的严重破坏。多巴胺损失的补偿涉及在电路中存活的SNC神经元和其他下游神经元的活性变化。的确,在大鼠骨纹状体途径的部分病变之后,存活的SNC DA神经元是多动(1),释放额外的多巴胺(2-5),并减少了多巴胺再摄取(2)。DA神经元的巨大丧失(1、6、7),线粒体复合物I活性的完全丧失以及线粒体PD蛋白PINK1(9)的损失也会导致爆发的爆发增加(10,11)。因此,在广泛的损失或压力的情况下,DA神经元易于改变活性,这可能与电路水平的变化有关。例如,灵长类动物模型的证据表明,在PD中,丘脑下核向SNC发送了谷氨酸能投射的核(12)。虽然系统级变化可能是补偿性的,并且部分恢复了多巴胺水平和整体运动功能,但它们也可能带来不利的后果。此外,包括α-突触核蛋白,LRRK2,Pink1和Parkin在内的关键PD疾病蛋白可以影响神经活动水平(13-18),进一步支持了神经活动变化也可能有助于疾病病理生理学的观念。健康的SNC多巴胺神经元由于其起搏活动,有效的Ca 2+泵送,无髓髓纤维或髓鞘不良的纤维(19、20)和大轴突轴(21),因此具有巨大的能量需求。这一巨大的能量要求可能解释了其内在脆弱性,包括线粒体损伤,包括复杂的I破坏(8、22、23)以及线粒体动力学的障碍(24)和周转率(25)。据估计,线粒体在SNC DA神经元中消耗的氧的一半致力于支持神经元释放和发射器释放(26)。因此,与疾病相关的应激结合在一起,即使是轻微多动症的代谢影响可能会触发或加速SNC DA神经元的变性。支持该假设,抑制STN的兴奋性输入可保护SNC DA神经元从6- OHDA和MPTP毒性(27,28)。