摘要:伤口感染常见于手术和创伤后,但很难诊断,而且客观临床参数定义不明确。伤口中的细菌与感染相关的假设是错误的;所有伤口都含有微生物,但并非所有伤口都受到临床感染。这使得临床医生很难确定真正的伤口感染,尤其是对于有致病生物膜的伤口。如果感染未得到适当治疗,致病毒力因子(如铜绿假单胞菌中的鼠李糖脂)会调节宿主的免疫反应并导致组织破坏。如果微生物深入宿主组织,则会导致危及生命的脓毒症。本文介绍了针对伤口中常见的五种重要临床微生物病原体的传感器开发:金黄色葡萄球菌、铜绿假单胞菌、白色念珠菌/耳念珠菌和粪肠球菌(SPaCE 病原体)。传感器包含封装自淬灭荧光染料的脂质体。SPaCE 感染病原体在早期感染伤口中表达的毒素会分解脂质体,触发染料释放,从而使传感器颜色从黄色变为绿色,这表明感染。五种临床细菌和真菌,每种多达 20 种菌株(共计 83 种),在猪烧伤离体伤口中生长为早期生物膜。然后擦拭生物膜,并将拭子放入脂质体悬浮液中。对猪伤口生物膜中选定病原体的种群密度进行了量化,并与比色反应相关联。超过 88% 的拭子打开了传感器(10 7 − 10 8 CFU/拭子)。一项初步临床研究表明,传感器开启与早期伤口感染之间存在良好的相关性。关键词:细菌感染、即时护理、伤口、生物膜、感染检测、脂质体、荧光染料
让拭子晾干5分钟。不允许刷毛接触任何其他表面。将拭子(首先)返回原始的拭子袖子。纸套的末端可以保持静止。如果拭子套筒中的开口大于1英寸,则将套筒的边缘胶带胶带以保护拭子。拭子袖子可以放在带有提交表格的信封中,以返回实验室。
必须采用适当的技术来避免暴露和接触微生物的生长以及再水化的小球悬浮液。微生物学实验室必须配备,并具有接收,处理,维护,存储和处置生物危害材料的设施。使用这些设备的微生物实验室人员必须接受培训,体验并证明熟练的生物危害材料的处理,维护,存储和处置。
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摘要:表面恢复方法的验证是在过程验证研究中剩余确定清洁有效性的先决条件。应使用试验尺度受控条件在实验室中挑战这些方法,以评估其预期用途的适用性。已经研究了不同的擦拭技术,并与7种微生物的冲洗方法进行了比较代表生产区域中的机器材料。与冲洗方法和先前报道的Nylon™Flocked QuantisWab™相比,只有一种擦拭技术给出了良好的结果。新的擦拭技术是基于普通的人造丝™纤维,该纤维是使用传统方法低的微生物回收率的。然而,使用简单设备的恢复过程中的简单修改改善了生物负责的恢复,使其超过80%。此外,这种新颖的方法具有良好的灵活性,可以根据清洁验证条件和研究来定制以增强恢复。