摘要背景基因组编辑为优化 T 细胞的功能特性以实现过继细胞转移目的提供了独特的视角。到目前为止,PDCD1 编辑已主要在嵌合抗原受体 T (CAR-T) 细胞和人类原代 T 细胞中成功测试。尽管如此,对于实体瘤患者,过继转移针对肿瘤抗原的效应记忆 T 细胞仍然是一种相关的选择,而使用缺乏程序性细胞死亡-1 (PD-1) 表达的高亲和力 T 细胞可能会提高这些治疗的治疗效果。方法在这里我们使用 CAS9/sgRNA 核糖核蛋白复合物的转染来编辑针对黑色素瘤抗原 Melan-A 的人类效应记忆 CD8 + T 细胞中的 PDCD1 基因。我们克隆了编辑的 T 细胞群,并通过每个 T 细胞克隆中的测序和流式细胞术验证了 PDCD1 编辑,以及 T 细胞受体 (TCR) 链的测序。我们还对野生型 (WT) 和编辑的 T 细胞克隆进行了全转录组分析。最后,我们通过在 NOD scid gamma (NSG) 小鼠中的过继转移,在体外和体内记录了表达相同 TCR 的 WT 和 PD-1KO T 细胞克隆的抗肿瘤特性。结果在这里,我们证明了在人类效应记忆黑色素瘤特异性 T 淋巴细胞中编辑 PDCD1 基因的可行性。我们表明,在 PDCD1 编辑的 T 细胞克隆上,PD-1 表达显著降低或完全缺失。对表达相同 TCR 并表现出相似功能亲和力的一组 T 细胞克隆的广泛表征表明,它们对表达 PD-L1 的黑色素瘤细胞系具有优异的抗肿瘤反应性。转录组分析显示,在 PD-1 缺陷的 T 细胞克隆中,参与增殖和 DNA 复制的基因下调,而参与代谢和细胞信号传导的基因上调。最后,我们证明了 PD-1 缺陷型 T 细胞在 NSG 小鼠模型中显著延缓 PD-L1 表达人类黑色素瘤生长的卓越能力。结论 将此类淋巴细胞用于过继细胞转移目的,结合其他调节肿瘤微环境的方法,将成为改善实体肿瘤免疫治疗效果的有希望的替代方法。
诱导抗肿瘤免疫力的抽象背景免疫调节剂具有巨大的癌症治疗潜力。我们以前已经表明,来自IL-6家族的促炎细胞因子的白介素(IL)-31充当抗血管生成剂。在这里,我们表征了IL-31在乳腺癌中的免疫调节作用。使用高通量流式细胞仪法测量法,使用了包括EMT6和PYMT细胞系在内的体内乳腺癌模型(包括EMT6和PYMT细胞系)在肿瘤微环境中对各种免疫细胞组成的影响。使用分离的细胞毒性T细胞,CD4 + T细胞,髓样衍生的抑制细胞(MDSC)和巨噬细胞进行体外研究,以研究IL-31免疫学活性。 与IgG主链结合的重组IL-31的产生用于测试IL-31治疗活性。 结果,与对照肿瘤相比,由于抗肿瘤免疫调节的一部分,表达IL-31的乳腺癌的生长速率降低。 具体而言,细胞毒性T细胞活性增加,而在表达IL-31的肿瘤中,CD4 + T细胞,MDSC和与肿瘤相关的巨噬细胞的水平降低。 这些细胞变化伴随着与抗肿瘤免疫相关的细胞因子谱。 在体外,IL-31直接抑制CD4 + Th0细胞增殖,Th2典型因子GATA3和IL-4的表达。 它还通过抑制MDSC活性和运动性来促进CD8 + T细胞的激活。 此外,肿瘤中IL-31RA,IL-2和IL-4的高共表达与存活率的增加相关。使用分离的细胞毒性T细胞,CD4 + T细胞,髓样衍生的抑制细胞(MDSC)和巨噬细胞进行体外研究,以研究IL-31免疫学活性。与IgG主链结合的重组IL-31的产生用于测试IL-31治疗活性。结果,与对照肿瘤相比,由于抗肿瘤免疫调节的一部分,表达IL-31的乳腺癌的生长速率降低。具体而言,细胞毒性T细胞活性增加,而在表达IL-31的肿瘤中,CD4 + T细胞,MDSC和与肿瘤相关的巨噬细胞的水平降低。这些细胞变化伴随着与抗肿瘤免疫相关的细胞因子谱。在体外,IL-31直接抑制CD4 + Th0细胞增殖,Th2典型因子GATA3和IL-4的表达。它还通过抑制MDSC活性和运动性来促进CD8 + T细胞的激活。此外,肿瘤中IL-31RA,IL-2和IL-4的高共表达与存活率的增加相关。在临床上,与小鼠数据一致,发现人类乳腺癌活检中免疫细胞组成的改变与IL-31受体A(IL-31RA)的高表达相关。最后,为了研究IL-31的治疗潜力,重组鼠IL-31分子通过接头区域(IL-31-L-igG)融合到IgG中。这种IL-31-L-IgG治疗表现出在鼠乳腺癌模型中的抗肿瘤治疗活性。结论我们的发现表明,IL-31诱导抗肿瘤免疫,强调其作为治疗性免疫调节剂的潜在效用。
摘要肿瘤通过创建抑制抗肿瘤免疫力的肿瘤微环境(TME)而生存。TME通过限制抗原表现,抑制淋巴细胞和天然杀伤(NK)细胞激活并促进T细胞衰竭来抑制免疫系统。抗PD-1和抗CTLA(例如抗PD-1)的检查点抑制剂是免疫刺激性抗体,它们的封锁扩展了一些但不是所有癌症患者的存活率。细胞外腺苷三磷酸(ATP)在发炎的肿瘤中很丰富,其代谢产物腺苷(ADO)是由腺苷A2A受体(A2AR)和腺苷A2B受体(A2BR)介导的免疫抑制作用的驱动器,并且在肿瘤中发现了在肿瘤中的lumor-lymphassiped lympys-symphassiped lympssed Lympsspatied lymphoidsyeloideciped lymphoid和myelyeloideroid。本综述将集中于TME中的关键检查点抑制剂样的免疫抑制剂,以及如何减少腺苷产生或阻断A2AR和A2BR增强抗肿瘤免疫力。
多种遗传和获得性机制导致肺癌。降胆固醇药物阿托伐他汀 (ATOR) 已被证明具有其他有趣的生物学用途,例如抗癌作用。本研究旨在评估 ATOR 治疗小鼠模型中肺癌的效果。45 只雄性 CD-1 小鼠被分成 3 组 (n = 15),如下所示:第 1 组 (G1) 用作正常对照。第 2 组和第 3 组分别施用氨基甲酸酯 (Ure) (1mg/g) 和丁羟甲苯 (BHT) (200 mg/kg) 以引发和促进肺癌。G2 留作癌症组。G3 用 10 mg/kg ATOR 进行后处理。结果表明,与单独使用每种治疗相比,使用 ATOR 治疗 Ure/BHT 给药的小鼠可显著降低肿瘤发生率、多样性和大小。此外,ATOR 治疗可显著诱导肺癌细胞凋亡,且无不良副作用。关键词:阿托伐他汀、氨基甲酸酯、丁羟甲苯、肺癌、细胞凋亡。
1 兰州大学化学化工学院,应用有机化学国家重点实验室,甘肃省有色金属化学与资源利用重点实验室,兰州,中国 2 兰州大学药学院,应用有机化学国家重点实验室,中国 3 河北医科大学神经与血管生物学重点实验室,新药药理学与毒理学教育部重点实验室,药理学系,石家庄,中国 4 俄罗斯尼·皮罗戈夫国立研究医科大学,俄罗斯 5 塔伊兹大学医学与健康科学学院,也门 6 亚丁科技大学医学与健康科学学院药学系,也门 7 德克萨斯大学 MD 安德森癌症中心转化分子病理学系,德克萨斯州休斯顿,美国 8 神经内科和辽宁省神经系统疾病致病机制研究重点实验室大连医科大学附属第一医院疾病科,大连,中华民国
(未通过同行评审认证)是作者/资助者。保留所有权利。未经许可就不允许重复使用。此预印本版的版权持有人于2024年3月29日发布。 https://doi.org/10.1101/2024.03.25.586133 doi:Biorxiv Preprint
在过去几年中,对白金药物的兴趣增加了。成功的治疗在很大程度上取决于复杂的治疗和早期诊断,这决定了风险群体,临床症状知识的重要性,以及针对生物标志物,活检和诊断成像的诊断方法的有针对性使用,以便早期发现恶性过程。今天,单目标策略正在用多目标疗法策略取代,该策略在具有定义的生物标志物的肿瘤中获得了更大的临床功效。关键的速度包括阐明对这些药物的肿瘤抗性机制,一些新的基于铂基的药物的引入以及使用具有抗性调节剂或新药物针对药物的铂药物的临床组合研究。使用脂质体或基于共聚物的产品,在早期的临床试验中已经研究了铂药向肿瘤的递送。其他作为抗癌剂的研究是唯一的和铁配合物。ln(iii)复合物已被证明具有抗氧化活性。
肝细胞癌 (HCC) 是世界上最致命的恶性肿瘤之一,由于症状出现较晚且治疗选择非常有限,通常在晚期才被诊断出来,这导致干预无效且预后不佳。十年来,酪氨酸激酶抑制剂 (TKI) 在晚期 HCC 中作为一线治疗(索拉非尼和仑伐替尼)和二线治疗(瑞戈非尼和卡博替尼)时具有总生存期 (OS) 获益,但由于原发性或获得性耐药的发生,长期反应仍然不令人满意。最近,免疫疗法已成为治疗多种实体肿瘤(如黑色素瘤和非小细胞肺癌)的一种有前途的疗法。此外,由于 HCC 的发生与免疫耐受和免疫监视逃逸有关,因此在 HCC 中采用免疫疗法有很强的理由。然而,免疫治疗单一疗法,主要包括针对程序性死亡受体-1 (PD-1)、程序性死亡配体-1 (PD-L1) 和细胞毒性T淋巴细胞抗原-4 (CTLA-4) 的免疫检查点抑制剂 (ICI),具有相对较低的反应率。因此,多种ICI或免疫治疗与其他疗法(如抗血管生成药物和局部区域治疗)的联合已成为治疗HCC的新策略。组合不同的ICI可能具有协同效应,其归因于两种免疫检查点通路(CTLA- 4和PD-1 / PD-L1通路)的互补作用。抗血管生成药物加入ICI可以通过协同调节肿瘤的血管和免疫微环境来增强抗肿瘤免疫反应。此外,局部区域治疗可以通过从杀死的肿瘤细胞中释放肿瘤抗原来提高抗肿瘤免疫;反过来,这种抗肿瘤免疫反应可以通过免疫治疗得到强化。因此,局部区域治疗和免疫治疗的联合应用可能会通过进一步的协同作用对晚期HCC取得更大的疗效。本文旨在总结目前已报道的基于ICIs的HCC联合治疗的结果和正在进行的试验,以探索合理的联合治疗策略,进一步提高HCC患者的生存率。
a 慢性疾病的免疫生物学和免疫治疗,先进生物科学研究所,INSERM U 1209,CNRS UMR 5309,格勒诺布尔阿尔卑斯大学,法国格勒诺布尔; b 法国格勒诺布尔阿尔卑斯大学医院多学科医学中心皮肤科; c 法国格勒诺布尔奥弗涅-罗纳-阿尔卑斯血液中心研发实验室; d 免疫检查点抑制剂,PDC*line Pharma,格勒诺布尔; e 法国格勒诺布尔阿尔卑斯大学医院生物学和病理学研究所病理学系; f 法国圣伊斯米耶奥弗涅-罗纳-阿尔卑斯血液中心细胞治疗和工程部门; g 法国格勒诺布尔阿尔卑斯临床研究与创新代表团; h 法国格勒诺布尔阿尔卑斯大学医院临床研究中心;比利时布鲁塞尔鲁汶天主教大学 i de Duve 研究所; j 法国南特大学肿瘤皮肤病学系,CHU Nantes,CIC 1413,CRCINA
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