1. 每瓶接种 5x10 6 个 SF9 细胞,另留一个瓶作为阴性对照。2. 按照 A 部分中概述的方法,使用以下体积和量:10uL 杆状病毒 DNA(0.1ug/uL)2ug 质粒 DNA 1mL 转染缓冲液 B 5mL 未添加的 Grace 培养基洗涤液 1mL 转染缓冲液 A 5mL 未添加的 Grace 培养基洗涤液 7mL TMN/FH
将打靶特定人源基因的 Cas9 和 sgRNA 转染到 HEK293 细胞。转染所用的质粒 DNA 上含有 表达带双端核定位序列 ( NLS )的 Cas9 及 sgRNA 的表达框,通过 TransIT-X2 (Mirus) 转染 试剂进行转染。转染所用的 Cas9 mRNA 进行了假尿苷和 5- 甲基胞嘧啶修饰且带有双端 核定位序列,使用 transIT-mRNA 转染试剂将 sgRNA 和 mRNA 共转染。 Cas9 RNPs 使用脂质 体 RNAiMAX ( Life Technologies ) 进行反向转染, RNP 的终浓度为 10 nmol 。 Cas9 蛋白上不含 核定位序列。 EnGen Cas9 含有双端核定位序列。编辑效率通过 T7E1 实验进行分析,结果 以修饰百分比进行统计。
我们测试了MAD7表达质粒的共转染和GRNA表达质粒作为RNP方案的替代方案。质粒转染具有不需要先前产生和纯化MAD7蛋白的优势。我们使用与RNP实验相同的GRNA序列靶向相同的基因。如图2所示,基于质粒的协议也可以生成indels,但显示的Indels水平低于RNP协议。类似于RNP协议,尽管不太明显,但4XNLS版本优于1XNLS版本。
将打靶特定人源基因的 Cas9 和 sgRNA 转染到 HEK293 细胞。转染所用的质粒 DNA 上含有 表达带双端核定位序列 ( NLS )的 Cas9 及 sgRNA 的表达框,通过 TransIT-X2 (Mirus) 转染 试剂进行转染。转染所用的 Cas9 mRNA 进行了假尿苷和 5- 甲基胞嘧啶修饰且带有双端 核定位序列,使用 transIT-mRNA 转染试剂将 sgRNA 和 mRNA 共转染。 Cas9 RNPs 使用脂质 体 RNAiMAX ( Life Technologies ) 进行反向转染, RNP 的终浓度为 10 nmol 。 Cas9 蛋白上不含 核定位序列。 EnGen Cas9 含有双端核定位序列。编辑效率通过 T7E1 实验进行分析,结果 以修饰百分比进行统计。
将打靶特定人源基因的 Cas9 和 sgRNA 转染到 HEK293 细胞。转染所用的质粒 DNA 上含有 表达带双端核定位序列 ( NLS )的 Cas9 及 sgRNA 的表达框,通过 TransIT-X2 (Mirus) 转染 试剂进行转染。转染所用的 Cas9 mRNA 进行了假尿苷和 5- 甲基胞嘧啶修饰且带有双端 核定位序列,使用 transIT-mRNA 转染试剂将 sgRNA 和 mRNA 共转染。 Cas9 RNPs 使用脂质 体 RNAiMAX ( Life Technologies ) 进行反向转染, RNP 的终浓度为 10 nmol 。 Cas9 蛋白上不含 核定位序列。 EnGen Cas9 含有双端核定位序列。编辑效率通过 T7E1 实验进行分析,结果 以修饰百分比进行统计。
和进一步经历了同性恋,导致多价相互作用和LLP的诱导。VP16被募集到CMV最小启动子提供的转录起始位点,并诱导报告基因表达。(b)调整转化因子冷凝物的材料特性。要修改凝结物材料特性,采用了两种策略:首先,通过将CRY2换成Cry2 Olig,从而增加了相互作用的价值,而Cry2 Olig构成了高阶寡聚物;其次,通过共转染编码融合到麦克里(可视化)和fus n和nLS的cry2 olig的结构来提高价值和浓度。与CRY2-EYFP-FUS N -VP16或CREY2 OLIG -EYFP-FUS N -VP16构建体(黄色和绿色数据点)共转染了编码CIBN-TER和基于TETO 4的SEAP报告基因。可选地,添加了编码Cry2 Olig -MCH -MCH -FUS n -nls的构造(以2:1的质粒量比为2:1相对于含VP16的构建体,红色和黑色数据点)。在进行FRAP分析之前,将细胞在黑暗中培养32小时。蓝光照明10分钟后(2.5 µmol m -²S-1)开始。 图像在液滴漂白之前直接显示出反应性核。比例尺= 5 µm。 图显示了根据n≥7凝结物回收曲线的非线性拟合计算出的移动部分的平均值和单个值(请参见右图)。 使用学生的t.test(*=p≤0.05; **** =p≤0.0001)进行成对比较。。图像在液滴漂白之前直接显示出反应性核。比例尺= 5 µm。图显示了根据n≥7凝结物回收曲线的非线性拟合计算出的移动部分的平均值和单个值(请参见右图)。使用学生的t.test(*=p≤0.05; **** =p≤0.0001)进行成对比较。
确实有效。使用基于DCAS9(PDA2),DCAS9-VP64(PDA3)或DCAS9-SRDX(PDA4)载体的CRISPRA/CRISPRI原生质体系统,我们测试了前四个GRNA候选者的有效性,靶向PDS1,CHLH和TRXH和TRXH,FICE(FICE)和3和TRXH,FICE(FICE)和3(FICE)2及3次。与其他关于DCAS9活性的报道类似,我们观察到PDA2在CHLH表达上表现出一些抑制活性(图3A),尽管对于某些GRNA,PDA4的幅度较大(图3B)。用PDA3(CRISPRA构建体)测试,表明TRXH表达增加了两倍,具体取决于GRNA共转染了哪个GRNA(图3C)。这项研究中观察到的GRNA之间的有效性不同,重申了测试多个候选物的必要性。
许多离子通道参与控制胰岛β细胞的胰岛素合成和分泌。上皮钠通道(ENAC),但是ENAC在胰腺β细胞中的生物学作用尚不清楚。在这里,我们将CRISPR/ CAS9基因编辑技术应用于鼠胰腺β-细胞系(MIN6 Cell)中的敲除α -ENAC基因。为α -ENAC的外显子设计了四个单个指定RNA(SGRNA)位点。具有较高活性的SGRNA1和SGRNA3并共转染到MIN6细胞中。通过处理一系列实验流,包括药物筛选,克隆和测序,获得了MIN6细胞中的α -ENAC基因敲除(α -enac - / - )。与野生型MIN6细胞相比,细胞活力和胰岛素含量在α -ENAC - / - MIN6细胞中显着增加。因此,由CRISPR/CAS9技术产生的α-ENAC - / - MIN6细胞增加了研究胰腺β细胞中α -ENAC的生物学功能的有效工具。
最后,在悬浮液中生长的Jurkat细胞中,评估了吉赛克的敲除生理相关的内源基因。敲除靶向的CD81,该CD81编码在许多哺乳动物细胞中表达的细胞表面蛋白,并与丙型肝炎,HIV和流感发病机理有关。jurkat细胞用Cas9和CD81特异性SGRNA的表达质粒共转染,或用靶向CD81的Cas9 -Sgrna RNP复合物预加载的gesiles处理。通过抗体标记评估CD81的基因敲除效率,然后进行流式细胞仪分析(图4)。基于质粒的递送导致效率非常低。只有7%的细胞损失CD81表达。相反,吉塞拉(Gesicles)具有很高的效率,其中76%的Jurkat细胞缺乏可检测到的CD81水平。因此,吉质的表现优于基于质粒的技术,具有在难以转化细胞中有效靶向内源基因的能力。
含有由 CRISPR/Cas9 系统产生的双链断裂 (DSB) 的 DNA 可以通过非同源末端连接 (NHEJ) 或同源定向修复 (HDR) 途径进行修复 (1,2,3)。NHEJ 修复途径在切割位点引入非特异性插入或缺失,而 HDR 途径允许在 DSB 位点进行精确的基因编辑 (1,2,3)。靶向特异性 HDR 质粒为 DSB 提供 DNA 修复模板,当与 CRISPR/Cas9 KO 质粒共转染时,能够在发生 Cas9 诱导的 DNA 切割的位置插入特定的选择标记 (1,2)。HDR 质粒可以整合红色荧光蛋白 (RFP) 基因以直观地确认转染,并整合抗生素抗性基因 (嘌呤霉素) 以选择含有成功 CRISPR/Cas9 双链断裂的细胞。嘌呤霉素抗性和 RFP 编码基因两侧是两个 LoxP 位点,这些位点可被 Cre 载体识别,之后可利用该位点从基因组 DNA 中去除这些选择标记 (4,5)。