摘要 将注意力从威胁性事件上移开可以降低痛觉。这种注意力镇痛作用涉及从前扣带回 (ACC) 到蓝斑,以及从 ACC 到中脑导水管周围灰质 (PAG) – 延髓腹内侧前部 (RVM) 的平行下行控制通路,表明去甲肾上腺素能或阿片类神经调节剂可能发挥作用。为了确定哪种通路调节人类的痛觉活动,我们在三个疗程中同时使用了全脑-脊髓药理学-fMRI (N = 39)。有害的热前臂刺激产生背角 (DH) 的躯体激活,其活动与疼痛报告相关并反映注意力疼痛调节。相邻簇中的活动报告了任务与有害刺激之间的相互作用。有效连接分析表明,ACC 与 PAG 和 RVM 相互作用以调节脊髓活动。用纳曲酮阻断内源性阿片类药物会损害注意力镇痛并破坏 RVM-脊髓和 ACC-PAG 连接。用瑞波西汀增强去甲肾上腺素不会改变注意力镇痛。认知疼痛调节涉及阿片类 ACC-PAG-RVM 下降控制,从而抑制脊髓伤害性活动。
在间皮瘤发育实验模型中,早期事件包括双链RNA(DSRNA)中编辑水平的增加。我们假设内源性逆转录病毒(ERV)的表达有助于DSRNA形成和I型干扰素信号传导。与非肿瘤样品相比,肿瘤的 ERV和干扰素刺激的基因(ISG)表达明显更高。 12个肿瘤特异性ERV(“ Mesoerv1-12”)被鉴定出来并通过qPCR在小鼠组织中验证。 与间皮瘤细胞相比,小鼠胚胎成纤维细胞(MEF)的“ Mesoerv1-12”表达较低。 “ Mesoerv1-12”水平通过脱甲基化剂5-Aza-2' - 脱氧胞苷的处理显着提高,并伴随着DSRNA和ISGS的水平升高。 与MEF相比,间皮瘤细胞中的基底ISGS表达更高,并且通过阻断IFNAR1和沉默的MAVS,JAK抑制剂r梭替尼显着降低了。 “ Mesoerv7”启动子在5-Aza-CDR处理后,与假小鼠组织以及间皮瘤细胞以及MEF细胞和MEF相比,在石棉暴露的暴露中被脱甲基化。 这些观察结果发现了石棉诱导的间皮瘤的新颖方面,从而导致ERV表达因启动子去甲基化而引起,并且与DSRNA水平的增加和IFN型信号传导的激活相似。 这些特征对于早期诊断和治疗很重要。ERV和干扰素刺激的基因(ISG)表达明显更高。12个肿瘤特异性ERV(“ Mesoerv1-12”)被鉴定出来并通过qPCR在小鼠组织中验证。与间皮瘤细胞相比,小鼠胚胎成纤维细胞(MEF)的“ Mesoerv1-12”表达较低。“ Mesoerv1-12”水平通过脱甲基化剂5-Aza-2' - 脱氧胞苷的处理显着提高,并伴随着DSRNA和ISGS的水平升高。与MEF相比,间皮瘤细胞中的基底ISGS表达更高,并且通过阻断IFNAR1和沉默的MAVS,JAK抑制剂r梭替尼显着降低了。“ Mesoerv7”启动子在5-Aza-CDR处理后,与假小鼠组织以及间皮瘤细胞以及MEF细胞和MEF相比,在石棉暴露的暴露中被脱甲基化。这些观察结果发现了石棉诱导的间皮瘤的新颖方面,从而导致ERV表达因启动子去甲基化而引起,并且与DSRNA水平的增加和IFN型信号传导的激活相似。这些特征对于早期诊断和治疗很重要。
CRISPR 系统提供了强大的基因组编辑工具,广泛应用于生物和医学研究领域。然而,由于 CRISPR 的脱靶效应而产生的安全问题一直是其应用于再生医学的主要障碍之一。传统的 CRISPR 系统存在通过错误的双链 DNA 断裂 (DSB) 在非目标基因组位点诱发不可预测突变的内在危险。在本研究中,我们展示了一种最近发现的 CRISPR-Cpf1 的安全增强应用,用于靶向基因激活,而不会导致 DNA 双链断裂,从而促进人脐带间充质干细胞 (UC-MSC) 的成骨分化。为此,我们开发了一种与三部分转录激活域 (dAsCpf1-VPR) 融合的催化无活性 AsCpf1,可诱导哺乳动物细胞中靶基因表达的上调。我们观察到 CRISPR-dAsCpf1-VPR 激活剂可通过增加内源性 BMP4 基因的表达水平来增强人类 UC-MSCs 的成骨分化。结果表明 CRISPR-Cpf1 激活剂为骨再生和再生医学提供了多种方法。
本文已被接受以进行出版和进行完整的同行评审,但并非通过复制,排版,分页和校对过程,这可能会导致此版本与记录版本之间的差异。请引用本文为doi:10.1111/bph.15386
摘要在非分裂细胞(如神经元)中,大型DNA片段对标记内源性蛋白的有效敲入仍然尤其具有挑战性。,我们以T WO(TKIT)指南为基于CRISPR/CAS9的新方法开发了T ARGE,以高效且精确的基因组敲入。通过靶向非编码区域TKIT对indel突变具有抗性。我们证明了具有各种标签的内源性突触蛋白的TKIT标记,在小鼠原发性培养的神经元中的效率高达42%。在小鼠中利用子宫电穿孔或病毒注射,可以将AMPAR亚基标记为超超金霉素,从而可以使用两光子显微镜在体内可视化内源性AMPARS。我们进一步使用TKIT来评估内源性AMPAR的迁移率,并在光漂白后荧光回收率。最后,我们表明TKIT可用于标记大鼠神经元中的AMPAR,在另一种模型生物体中证明了精确的基因组编辑,并突出了TKIT作为可视化内源性蛋白质的方法的广泛潜力。
➢在早期症状或新的发病阶段对个体的研究。 ➢项目专注于保护内源性β细胞质量免受自身免疫性➢在早期症状或新的发病阶段对个体的研究。➢项目专注于保护内源性β细胞质量免受自身免疫性
(上,右)以及在将九个 A1/pp50 特异性全人源 TCR 通过逆转录病毒转导到 PBMCs 后,pMHC-多聚体 + 细胞的 MFI(下,右),其中有 (2xKO,蓝色) 或没有 (无 KO,灰色) 额外的内源性 TCR KO。 (c) 说明 (上) 在未发生内源性 TCR KO (无 KO,灰色)、仅发生 TCR 链 KO (TRAC KO,橙色) 和同时发生 TCR 和 链 KO (2xKO,蓝色) 的 T 细胞中内源性和转基因 TCR 之间可能存在的相互作用。对两个含有鼠恒定区的代表性 A1/pp50 特异性 TCR (26) 的内源性和转基因 TCR 进行共染色 (下) 后的流式细胞分析。 (d) 与 (c) 中所示一样,逆转录病毒转导九种 A1/pp50 特异性 TCR 后内源性 TCR(左)和转基因 TCR(右)的表达。 (e) 对于 19 种不同的 A1/pp50 特异性 TCR(每个编辑组用一个点表示),表达内源性 TCR(左)和转基因 TCR(右)的 CD8 + T 细胞的百分比。通过单因素方差分析(*** p<0.001)和 Tukey 多重比较检验进行统计检验,**** p<0.0001,** p<0.01 (f) 在两个不同的供体中,逆转录病毒 TCR 转导和额外的 TRAC KO 后表达内源性 TCR 的 CD8 + T 细胞的百分比(左)以及在额外的 2xKO 后表达转基因 TCR 的 CD8 + T 细胞的百分比(右)。在两张图中,每个点代表每个供体的 19 个 A1/pp50 特异性 TCR 中的一个。通过双尾 Spearman 相关性进行统计检验,**** p<0.0001,* p<0.05。数据代表两个独立实验。
我们对感染的防御能力取决于免疫系统将入侵病原体与自我区分开的能力。在逆转录病毒几乎无缝整合到主机中,这项任务是异常的挑战,即使不是不可能的。与理论期望相反,内源性追溯质量保留了实质性的免疫原性,当它们的表观遗传抑制受到损害时,最深刻的是,这是最深刻的。尽管如此,最近的证据表明,对内源性恢复元件的影响是免疫系统发育和功能不可或缺的,是癌症免疫监测,对感染的依赖以及对微生物群的反应。阐明与内源性追溯元件的相互作用点将加深我们对免疫系统功能和对疾病的贡献的理解。
摘要:特异性抗体对于蛋白质复合物的细胞和组织表达、生化和功能分析必不可少。然而,制备特异性抗体通常费时费力。将内源性蛋白质的表位标记在适当的位置可以克服这个问题。在这里,我们使用 AlphaFold2 蛋白质结构预测研究了表位标签位置,并结合 CRISPR-Cas9 基因组编辑和电穿孔 (i-GONAD) 开发了 Flag/DYKDDDDK 标签敲入 CaMKII α 和 CaMKII β 小鼠。使用 i-GONAD,可以将长达 200 bp 的小片段插入目标基因的基因组中,从而实现高效便捷的小表位标记。使用市售的抗 Flag 抗体进行实验,可以通过蛋白质印迹、免疫沉淀和免疫组织化学轻松检测内源性 CaMKII α 和 β 蛋白。我们的数据表明,通过 i-GONAD 生成 Flag/DYKDDDDK 标签敲入小鼠是一种有用且方便的选择,特别是在没有特定抗体的情况下。