欧洲鳗鱼(Anguilla anguilla)是欧洲渔业和水产养殖中具有重要商业价值的物种,在圈养环境中关闭其生命周期的尝试仍处于开拓阶段。该物种的第一个喂养阶段的特点是孵化后 20 至 24 天之间的关键时期(dph),此时期与死亡有关,表明无法挽回。我们推测这个关键时期可能还与幼虫-细菌相互作用和幼虫的免疫状态有关。为了验证这一点,从内源喂养结束(9 dph)到 28 dph,对三种实验性首次喂养饮食(饮食 1、饮食 2 和饮食 3)的反应,探索了孵化场生产的幼虫的细菌群落组成以及免疫和应激相关基因的表达。还跟踪了水中细菌群落组成的变化。结果表明,幼虫应激/修复机制在此关键时期被激活,以 hsp90 基因表达上调为标志,与所喂食的食物无关。同时,在所有食物组中都观察到向潜在有害幼虫细菌群落的转变。此时,观察到幼虫细菌群落的均匀性显著降低,并且属于潜在有害细菌属的几种扩增子序列变体更加丰富。这表明有害的幼虫-细菌相互作用可能与观察到的死亡率有关。在关键期之后,喂食食物 3 的幼虫的存活率最高。有趣的是,编码病原体识别受体 TLR18 和补体成分 C1QC 的基因在该组中上调,可能表明免疫能力更高,有助于更成功地处理在 22 日龄时主导幼虫细菌群落的有害细菌,最终导致与其他两组相比更好的存活率。
进行了本研究,以评估昆虫致病性线虫,Steinernema Carpocapsae Weiser和三种昆虫病变真菌(Metarhizium arisopliae(Metschn。)(Metschn。)Sorokin,Trichoderma Harzianum Rifai和T. Viride Pers。)针对Spodoptera Frugiperda的第二和第四幼虫龄(J. E. Smith)。结果表明,CarpoCapeAe在接种后4天(DPI)使用叶片浸入法(DPI)的LC 50值分别为52.03和4.11感染力少年(IJS)ML -1,在接种后4天,在接种后使用叶片浸出方法,使脆性链球菌的第二和第四个幼虫龄出现了明显的死亡率。另一方面,三种测试的昆虫病作用真菌对弗鲁吉帕尔达链球菌的幼虫龄产生了较强的毒性。真菌T。arzianum在第二个幼虫龄(LC 50 = 1.1×10 7孢子ML -1)和M. Anisopliae上显示出最高的杀虫活性,在10 dpi后,在第四个幼虫龄(LC 50 = 1.5×10 7个孢子ML -1)上表现出最高的杀虫活性。我们的结果表明,在250 IJS ML -1的幼虫中完全抑制了帕克环链球菌和成年幼虫的成年出现。昆虫致病性线虫和真菌对S. frugiperda幼虫龄的致命作用表明,这些生物控制剂在这种侵入性昆虫的综合害虫管理程序中可能是有用的候选者。
蚊子依靠其微生物群进行B维生素合成。我们以前发现,埃及埃及第三类幼虫清除了其微生物群的发育受损,尤其是由于缺乏叶酸(维生素B9)。在这项研究中,我们发现饮食中的饮食补充饮食的补充含有七种B族维生素并不能改善蚊子的发育成功,而是对由此产生的成年人的性别比例产生了显着影响,并富集了雌性蚊子在Bivimin and bivimin治疗的幼虫中出现的雌性蚊子。对男性和雌性幼虫的转录组分析在维生素治疗后鉴定出某些性别调节的基因。在用单个B族维生素治疗无菌幼虫时,我们检测到与生物素(维生素B7)暴露有关的特定毒性作用。然后,我们提供了无菌幼虫的生物素剂量,并表明雄性对生物素毒性的浓度比女性敏感。gnotobiotic幼虫暴露于受控的低细菌数量或以较慢的生长为特征的细菌显示出雄性富含雄性的成年人口,这表明雄性比女性所需的细菌衍生的养分少于雌性。这些发现表明,在幼虫发育过程中,蚊子具有性别特异性营养要求和毒性阈值,这会影响成年人的性别比。
背景和目标招募海洋鱼类受到各种过程的影响,在早期生命阶段的喂养条件通常扮演着至关重要的角色。尤其是幼虫阶段对海洋生态系统(包括气候变化)的任何自然或人为变化敏感。最近由于其幼虫条件不利而招募了北海的几种非常重要的鱼类。受影响的鱼类之一是北海鲱鱼,在英国海岸和北海南部的秋季和冬季产卵。像大多数鱼幼虫一样,鲱鱼幼虫在浮游生物上供出。但是,关于秋冬期间浮游生物动态的知识差距很大,即在布卢姆时期之外。该项目阈值的目的是在北海鲱鱼的产卵场上调查浮游生物的丰度和社区组成,评估年轻鲱鱼幼虫的喂养条件,并在生命的第一个月中估算其成长和生存,这是象征成功的时期。
摘要:锰(MN)是一种用于各种酶类别的辅因子,是所有生物体的必需痕量金属。但是,过度暴露于MN会导致神经毒性。在这里,我们评估了暴露于Mn氯化物(MNCL 2)对生存力,形态,突触功能(基于神经素表达)和斑马鱼幼虫行为的影响。MNCL 2从受精后2.5 h暴露导致受精后5天的生存率降低(60%)。表型变化影响了身体长度,眼睛和嗅觉器官的大小以及视觉背景适应。这伴随着神经素免疫染色的荧光强度和神经素蛋白编码基因NRGNA和NRGNB的表达水平的降低,表明存在突触改变。此外,过度暴露于MNCL 2导致幼虫表现出姿势缺陷,运动活动的减少以及对光环境的偏爱受损。从鱼类水中去除MNCL 2后,斑马鱼幼虫恢复了它们的色素沉着模式并使其运动行为归一化,表明MN神经毒性的某些方面是可逆的。总而言之,我们的结果表明,MN过度暴露会导致斑马鱼幼虫中明显的形态改变,神经素表达的变化和行为障碍。
1个动物科学研究生课程(PPGCAN),兽医学院,帕拉联邦大学(UFPA),Castanhal 68746-360,宾夕法尼亚州,巴西; eder.b.rebelo@gmail.com(é.b.r.d.s。); camargojunior@gmail.com(R.N.C.C.-J.); adrinysantos2@gmail.com(A.D.S.M.L.); thomazguimaraes@yahoo.com.br(T.C.G.D.C.R.); joselourencojr@yahoo.com.br(J.D.B.L.-J.)2亚马逊联邦农村大学动物健康与生产研究所,贝利姆66000-000,巴西; jamileandrea@yahoo.com.br 3 Embrapa Eastern Amazon,Santarem 68010-180,宾夕法尼亚州,巴西; lucieta.martorano@embrapa.br 4亚马逊大学中心兽医系(UNAMA),圣塔勒姆68010-200,巴西,巴西; tatianebelovet@gmail.com(t.s.b.); cadu34.medvet@gmail.com(C.E.L.S.); rubensandrade.medvet@gmail.com(R.L.A。); gizelamedvet@gmail.com(A.G.D.S.S.S.); katarinacc4@gmail.com(K.C.D.C.)5农业和环境科学系,马托·格罗索联邦大学(UFMT),辛普78550-728,巴西,巴西; cvaufmt@gmail.com 6生物多样性与森林研究所 - 伊比夫,西方联邦大学(UFOPA),圣塔雷姆68040-255,宾夕法尼亚州,巴西; jucelane.lima@ufopa.edu.br(J.S.D.L.); kedson_neves@hotmail.com(K.A.L.N。)7帕尔萨尔大学联邦大学(UFPA)兽医学院,帕斯坦哈尔68740-000,巴西; silva_lilian@yahoo.com.br *通信:welligton.medvet@gmail.com;电话。: +55-(93)-988070692
抽象的太平洋牡蛎(Crassostrea gigas)是世界上种植最广泛的贝类物种之一。由于其经济价值和复杂的生命周期,涉及从自由宽松的幼虫到无柄少年的急剧变化,因此C.Gigas被用作发展,环境和水产养殖研究的模型。但是,由于缺乏功能分析的遗传工具,与生物或经济特征相关的基因功能无法轻易确定。在这里,我们报告了CRISPR/CAS9技术在C.Gigas中成功应用肌球蛋白基本光链基因(CGMELC)。C.注入SGRNA/CAS9的GIGAS胚胎在目标部位包含广泛的indel突变。突变幼虫显示出缺陷的肌肉和运动降低。此外,CGMELC的敲除破坏了幼虫中肌球蛋白重链阳性肌纤维的表达和图案。一起,这些数据表明CGMELC参与牡蛎幼虫中的幼虫肌肉收缩和肌发生。
摘要 目的:心动过缓是由于心脏自律性受抑制、复极化延长或传导减慢所致。ERG 通道介导心脏动作电位中的复极化电流 I Kr,而 T 型钙通道 (TTCC) 参与哺乳动物的窦房起搏点和房室传导。斑马鱼已成为人类心脏电生理学和疾病的宝贵研究模型。在这里,我们研究了 ERG 通道和 TTCC 对斑马鱼幼虫起搏点和房室传导的贡献,并确定了引起房室传导阻滞的机制。方法:在心脏中表达比率荧光 Ca 2 + 生物传感器的斑马鱼幼虫用于测量体内跳动心脏的 Ca 2 + 水平和节律,同时测量收缩和血流动力学。房室延迟(心房和心室 Ca 2 +瞬变开始之间的时间)用于测量脉冲传导速度,并区分慢传导
1 莱布尼茨神经生物学研究所,学习和记忆遗传学系,马格德堡,39118,德国,2 莱比锡大学生物研究所动物生理学系,莱比锡,04103,德国,3 莱比锡大学生物研究所遗传学系,莱比锡,04103,德国,4 魏茨曼科学研究所分子细胞生物学系,雷霍沃特,7610001,以色列,5 亚琛工业大学成像和计算机视觉研究所,亚琛,52074,德国,6 波多黎各大学医学科学园区神经生物学研究所,旧圣胡安,波多黎各,00901,7 剑桥大学生理学、发育和神经科学系,剑桥,CB2 3EL,英国,8 珍妮莉亚研究园区,霍华德休斯医学研究所,阿什本, 20147,弗吉尼亚州,9 莱布尼茨神经生物学研究所,组合神经影像核心设施,马格德堡,39118,德国,10 加利福尼亚大学,分子,细胞和发育生物学系,加利福尼亚州洛杉矶 90095-1606,11 巴黎萨克雷大学,国立科学研究中心,巴黎萨克雷神经科学研究所,萨克雷,91400,法国,12 行为脑科学中心,马格德堡,39106,德国,13 奥托冯格里克大学生物学研究所,马格德堡,39120,德国