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D波段传输线的超脑打印
摘要 - 这封信讨论了通过超脑沉积（upd）及其在d -band（110-170 GHz）中的表征来制造Coplanar波导（CPW）传输线。upd是用于沉积功能纳米关的直接打印过程。最近，XTPL将其作为气溶胶喷气机和墨水喷射技术的替代方案。在UPD中，千分尺尺度喷嘴与打印的基板直接接触。这种方法允许应用高粘性纳米关。用粘度超过10 5 mpa·S的充满银色的墨水与喷嘴开口尺寸为5 µm，在Corning 1737展示玻璃和融合的硅胶底物上打印出cpws，并用气隙为10 µm。打印过程的横向精度约为1-2 µm。为了脱离传输线的性能，在基板上制造了通过反射线（TRL）校准标准。对于固化的纳米兰克的单个，400 nm厚的层，CPWS在整个D频带中的熔融二氧化硅和宽带传输上显示在140 GHz时约1.0 db / mm的损失。
ARC可以将您的新实验室空间提供给您的确切规格。加入我们蓬勃发展的社区，将您的创新业务提升到新的水平。
牛津大学是21世纪的科学和创新集群之一，所有这些集团都位于牛津和伦敦等英国主要知识中心或附近。ARC任务很简单：创造一种可以发生创造力，协作和创新的文化和环境。这是加入我们的激动人心的时刻，因为我们目前在我们的集群中投资于新的实验室，办公室，便利设施和尖端的研发设施。
基因组用纳米孔测序精确地确定脊椎动物中的全球和盆地DNA甲基化
基因组浏览定义为低通序的覆盖范围低于0.05倍，通常用于线粒体基因组恢复和物种鉴定。长阅读的纳米孔测序仪可以同时阅读DNA序列和甲基化，并且可以多重样品进行低成本基因组练习。在这里，我将纳米孔测序作为全球DNA甲基化和转座子评估的高度精确平台。仅覆盖0.001×或30 MB的读数，精度为1％。生物学和技术复制可验证高精度。浏览40种脊椎动物物种揭示了与全基因组亚硫酸盐测序一致的全球甲基化模式，平均地图率> 97％。基因组大小与全局DNA甲基化直接相关，解释了其39％的方差。只能以0.0001倍的覆盖范围或3 MB的读数来获得小鼠和灵长类动物中的精确正弦和线转座子甲基化。样品多路复用，现场可移植性和该仪器的低价合并，使基因组掠过DNA甲基化成为一种可访问的方法，用于从生态学到流行病学和低资源组的表观遗传评估。
CriMCE：一种引入和分离精准标记的方法...
CriMCE：一种通过 CRISPR 介导的盒式交换引入和分离精确无标记编辑的方法 Ioanna Morianou 1、Andrea Crisanti 1,2、Tony Nolan 3、Andrew M. Hammond 1,4,5 * * 通讯作者 作者隶属关系： 1 伦敦帝国理工学院生命科学系，伦敦，英国 2 帕多瓦大学分子医学系，帕多瓦，意大利 3 利物浦热带医学院媒介生物学系，利物浦，英国 4 约翰霍普金斯大学彭博公共卫生学院分子微生物学和免疫学系，巴尔的摩，马里兰州，美国 5 Biocentis，Ltd.，伦敦，英国 标题：基于 CRISPR 的无标记编辑方法 关键词：CRISPR；基因组编辑；盒式交换；无标记编辑；基因驱动。摘要 在昆虫基因组中引入小的、未标记的编辑对于研究重要生物学特性（例如抗杀虫剂和遗传控制策略）的分子基础至关重要。CRISPR 基因组工程的进步使这成为可能，但由于编辑率低和缺乏可选择的标记，大多数实验室都难以做到这一点。为了促进精确的无标记编辑的生成和分离，我们开发了一种两步方法，该方法基于 CRISPR 介导的盒式交换 (CriMCE)，将标记的占位符用于感兴趣的变体。与以前的方法相比，此策略可用于引入更广泛的潜在编辑，同时整合工作流程。我们通过将三种 SNP 变体设计到冈比亚按蚊的基因组中，提出了原理证明，证明 CriMCE 是一种强大的工具，其编辑率比同源定向修复或主要编辑高 5-41 倍。
BioBall在水溶性球中包含精确数量的微生物，以实现定量微生物质量的前所未有的精度
56046 N/A链球菌为链球菌NCTC 12696 ATCC19615，CIP1042.26细胞2年 ^所有Bioball菌株和重新填充流体的产品均至少6个月剩余。^^饥饿在日本药典方法（参考JP G8水4.4.2培养基增长促进测试）后，在22°C的无菌纯净水中进行饥饿。*标准偏差<3.5，**标准偏差<4，***标准偏差<4.5，****的平均值在40至60 CFU之间，标准偏差为7 cfu或更少，*****的平均值为67至83 cfu，标准偏差为≤15％。空白BioBall不是“认证的参考材料”。可用菌株
备案程序和精准计划申请
下面的清单是为了帮助您和社区发展部确保提交的申请完整无缺而准备的。这将有助于确保所有申请人的审核过程及时有效。在提交申请之前，强烈建议您查看随附的批准条件。这些条件将适用于您的项目，申请人在申请过程的早期了解这些条件对您的项目有何要求通常很有帮助。了解上述条件将有助于您在项目中做出适当的安排，并进一步加快申请的处理速度。在提交申请之前，请检查每一项以确保其包含在此包中。如果某项不适用，请用 N/A 表示。提交后，社区发展部的一名工作人员将在您面前核实内容，并接受审核或将包退还给您以供填写。您提交的申请必须包含所有要求的项目，因为不完整的包将不被接受审核。如有任何疑问，请随时致电社区发展部（电话：（562）916-1201）。感谢您的合作。
综合精确实用的弯曲纳米仪...
©2023作者。本文根据创意共享4.0国际许可，允许以任何中等或格式的使用，共享，适应，分发和复制，因为您将适当的信用归功于原始作者和这些作者，并提供了与创意共享许可证的链接，并指出了IFCHANGES的链接。本文章中的图像或其他第三方材料包含在文章的Creative Commons许可中，除非在材料的信用额度中另有指示。如果本文的创意共享许可中不包含材料，并且您的预期使用不受法定法规的允许或超过允许的使用权，则您需要直接从版权所有的人获得许可。要查看此许可证的副本，请访问http://creativecommons.org/licenses/4.0/。
基于CRISPR-CAS9的重复耗竭
串联重复是基因组的频繁结构变化，并且在遗传疾病和CER中起重要作用。然而，解释串联重复的表型后果仍然具有挑战性，部分原因是缺乏建模这种变化的遗传工具。在这里，我们通过Prime Editing（TD-PE）制定了一种策略重复，以在哺乳动物基因组中创建有针对性，可编程和精确的串联重复。在此策略中，我们针对每个有针对性的串联复制设计了一对trans Prime编辑指南RNA（PEGRNA），该重复编码相同的编辑，但在相反的方向上介绍了单链DNA（SSDNA）扩展。每个扩展的逆转录酶（RT）模板设计与其他单个指南RNA（SGRNA）的目标区域同源，以促进编辑的DNA链的重新进行重复，并在中间的片段重复。我们表明，TD-PE产生了从约50 bp到约10 kb的基因组片段的鲁棒和精确的原位串联重复，最大效率高达28.33％。通过微调pegrnas，我们同时实现了目标重复和碎片插入。最后，我们成功地产生了多种疾病的串联重复，显示了TD-PE在遗传研究中的一般效用。
CRISPR-Analytics（CRISPR-A）：用于基因编辑的精确分析和模拟平台
并不总是在编辑的大部分细胞中存在的不同类型的基因编辑中提供精确的相关比例。我们已经开发了CRISPR-Analytics，CRISPR-A，它是一种全面且通用的基因组编辑Web应用程序工具和NextFlow Pipeline，可为基因编辑实验设计和分析提供支持。CRISPR-A提供了由数据分析工具和仿真组成的强大基因编辑分析管道。它的准确性比Curlant工具更高，并扩展了功能。分析包括基于模拟的噪声校正，升高的校准放大偏置降低和高级交互式图形。这种扩展的鲁棒性使该工具非常适合分析高度敏感的病例，例如临床样本或较低编辑效率的实验。它还通过模拟基因编辑结果来评估实验设计。因此，CRISPR-A是支持多种实验的理想选择，例如双链DNA断裂工程，基础编辑（BE），引物编辑（PE）和同源性修复（HDR），而无需指定使用的实验方法。
在自然短的时间内进行快速、精确的基因组工程
引言：研究脊椎动物的衰老和疾病等复杂生物表型受到规模和速度问题的限制。例如，小鼠天生的长寿命和低通量特性阻碍了迭代遗传学和脊椎动物生物学探索。非洲绿松石鳉鱼 Notho-branchius furzeri（以下简称鳉鱼）因其性成熟时间短（孵化后 3-4 周）和自然压缩的寿命（4-6 个月）而成为克服这一挑战和加速发现的有力模型（ Hu and Brunet，2018 ；Kim et al.，2016 ）。鳉鱼是实验室培育的脊椎动物模型系统中世代时间最短的（2 个月）( Hu and Brunet，2018 ；Kim et al.，2016 ；Pola čik et al.，2016 )，从而使快速脊椎动物遗传学成为可能。已经开发出一些用于推进鳉鱼遗传研究的工具，包括基因组测序（Reichwald 等人，2015 年；Valenzano 等人，2015 年）、Tol2 转基因（Allard 等人，2013 年；Hartmann 和 Englert，2012 年；Valenzano 等人，2011 年）、CRISPR/Cas9 介导的敲除（Harel 等人，2015 年）和 CRISPR/Cas13 介导的敲低（Kushawah 等人，2020 年）。这种遗传工具包使得人们能够发现衰老的机制（Astre 等人，2022a；Bradshaw 等人，2022；Chen 等人，2022；Harel 等人，2022；Louka 等人，2022；Matsui 等人，2019；Smith 等人，2017；Van