引入肺发育期间,原始上皮细胞以精确的时机的形式增殖,迁移和改变表型认同,并由来自地下膜(BM)的信号锚定,这是一种专门的细胞外基质(ECM)结构,在特定的开发检查点(1)精确重塑了(1)。一旦肺发育完成,靶向替代上皮细胞并缓慢的肺泡BM的转移速度缓慢,可保护成熟肺内稳态期间的肺泡结构。然而,随着BM年龄(2),上皮细胞失去了有效增殖和分化的能力,随着时间的流逝,对慢性肺部疾病的敏感性增加。与时间精确的发育和相对静止的成年肺相比,必须迅速进行急性肺损伤的修复,以恢复气体交换上皮的生存率。修复的即时性会导致上皮增殖和分化。对于野生型小鼠,由单剂量的气管内脂多糖(LPS)诱导的轻度肺损伤很容易在几天内回收,克服了炎症衍生的蛋白水解损害对BM的BM(3,4)。lps测试了肺泡的再生潜力,暴露了上皮相互作用的损害,这些相互作用可能加剧肺损伤或倾向于加速衰老。整联蛋白是由结合ECM配体的α和β亚基组成的异二聚体跨膜蛋白受体。整联蛋白提供细胞与ECM之间的物理连接,它们传播了往返于周围矩阵的信号传导(5-7)。的24个整联蛋白异二聚体,12个包含β1亚基,而上皮组织中存在12β1的整合素中的许多。整合素功能取决于发展和微环境环境,这是与我们以前的工作一致的概念。我们先前报道了正常肺发育需要上皮β1整联蛋白,并且在缺席的气道分支和肺泡化的情况下受到损害,并且与不完整的上皮
摘要 特发性肺纤维化 (IPF) 包括纤维化肺泡重塑和肺功能逐渐丧失。遗传和实验证据表明,慢性肺泡损伤和呼吸道上皮细胞无法正常修复是 IPF 发病机制的内在因素。肺泡 2 型 (AT2) 干细胞的丢失或突变会损害其自我更新和/或损害其向 AT1 细胞的分化,这些都可能引发肺纤维化。最近的报告表明,IPF 肺中呼吸道上皮细胞的 YAP 活性增加。支气管化区域中 YAP 激活异常的单个 IPF 上皮细胞经常同时表达 AT1、AT2,传导气道选择性标记物甚至间充质或 EMT 标记物,表现出“不确定”的分化状态,并表明异常的 YAP 信号传导可能促进肺纤维化。然而,最近也有研究表明,Yap 和 Taz 对 AT1 细胞维持和肺炎链球菌引起的损伤后的肺泡上皮再生非常重要。为了研究上皮 Yap/Taz 如何促进肺纤维化或驱动肺泡上皮再生,我们灭活了 AT2 干细胞中的 Hippo 通路,导致核 Yap/Taz 增加,并发现这促进了它们的肺泡再生能力,并通过将它们推向 AT1 细胞谱系来减少博来霉素损伤后的肺纤维化。反之亦然,AT2 细胞干细胞中 Yap1 和 Wwtr1(编码 Taz)或 Wwtr1 单独失活会损害肺泡上皮再生,并导致博来霉素损伤后肺纤维化增加。有趣的是,AT2 干细胞中只有 Yap1 失活才会促进肺泡上皮再生并减少肺纤维化。总之,这些数据表明上皮 Yap 促进肺纤维化,而上皮 Taz 减少肺纤维化,这表明针对 Yap 而不是 Taz 介导的转录可能有助于促进 AT1 细胞再生和治疗肺纤维化。
抽象的急性急性呼吸窘迫综合征(ARDS)是严重细菌性肺炎的致命并发症,因为无法抑制过度过度过度过度的免疫反应而不会损害病原体的清除。这两个过程均涉及组织居民和骨髓(BM) - 取消巨噬细胞(Mφ)种群,可以极化为具有不同的功能。令人惊讶的是,尽管间充质干细胞(MSC)的已知免疫调节特性,但与组织居住和招募的BMMφ种群同时相互作用在很大程度上尚未开发。目的我们评估了在严重的细菌性肺炎中人胎盘MSC(PMSC)的治疗用途,并阐明了驻留肺泡MφS(AMφS)和BMMφS的作用。方法我们使用临床相关的肺炎克雷伯氏菌(KP)菌株的气管内感染开发了致命的鼠肺炎模型,随后进行了静脉注射人类PMSC治疗。肺AMφ和招募的BMMφ分析,组织学评估,细菌清除率和小鼠的存活率。为了阐明居民AMφS在改善结果中的作用,我们在具有节气内氯膦酸盐预处理的KP-肺炎模型中进行了AMφ消耗。测量和主要结果人PMSC治疗通过降低募集的M1 BMMφ的存在和功能,同时保留M2 AMφs并增强其抗菌功能,从而减少了严重KP -pneumonia小鼠的组织损伤和改善的严重KP -pneumonia小鼠的存活。结论人类PMSC处理优先拯救了居民M2 AMφS,而M1 BMMφs具有总体M2极化,以改善KP相关的ARDS存活。有趣的是,PMSC治疗未能营救AMφ耗尽的小鼠患有KP肺炎,而PMSC分泌的IL-1β被确定为增加AMφ抗菌活性至关重要,以显着提高病原体清除率,尤其是细菌症和生存。
肺癌是全球癌症相关死亡的主要原因。肺腺癌 (LUAD) 是最常见的组织学亚型,占所有病例的 40%。虽然现有的基因工程小鼠模型 (GEMM) 重现了人类 LUAD 的组织学进展和转录进化,但它们耗时且技术要求高。相比之下,细胞系移植模型快速灵活,但这些模型无法捕捉疾病进展的全部范围。类器官技术提供了一种创建下一代癌症模型的方法,该模型整合了自体系统和基于移植的系统的最有利特征。然而,目前缺乏强大而可靠的 LUAD 类器官平台。在这里,我们描述了在类器官培养中持续扩增小鼠肺泡 2 型 (AT2) 细胞(LUAD 的主要起源细胞)的优化条件。这些类器官表现出 AT2 细胞的典型特征,包括标记基因表达、层状体的存在以及分化为 AT1 谱系的能力。我们利用该系统开发了灵活且多功能的免疫功能正常的类器官模型,用于 KRAS 、 BRAF 和 ALK 突变型 LUAD。值得注意的是,类器官肿瘤表现出广泛的负担和完全渗透性,并且在组织病理学上与原发肿瘤没有区别。总之,该类器官平台是一个功能强大、用途广泛的新型 LUAD 研究模型系统。
简介:核糖体通过将小核糖体亚基与大型核糖体亚基与肽键形成的质体RNA耦合,从而催化所有细胞中的蛋白质合成。由于两个亚基都由核糖体RNA和核糖体蛋白组成,因此这些分子机的组装受到严格控制。在人类细胞中,超过200个核糖体组装因子催化了两个核糖体亚基的成熟。核糖体组装是在核仁中启动的,核仁是通过多价蛋白质 - 核酸相互作用形成的生物分子冷凝物。在该生物分子冷凝物中,形成了小亚基的第一个稳定的真核核糖体组装中间体,小亚基(SSU)造型。在SSU过程中,70多种蛋白质和RNA伴侣,小核仁RNA(SNORNA)U3,共同起作用,可通过RNA Exosome来实现RNA折叠,修饰,重排和裂解以及靶向降解前RNA的降解。与人类疾病相关的核糖体蛋白质和核糖体组装因子突变强调了这一过程的本质。
并且肿瘤中超过5个gRNA减少2倍的63个基因座被认为是阳性候选者(图4b,扩展数据图4c和补充表9)。通过Hi-C分析定义拓扑相关域(TAD)(图4c),并选择与每个SE包含在同一TAD中的345个候选靶基因。通过在ASPS-null细胞中下调的表达和功能注释进一步选择了56个候选基因(图4d和补充表10)。对Ccbe1、Pdgfb、Rab27a、Syngr1、Sytl2和Vwf六个候选基因进行了体内验证试验(扩展数据图4d)。验证每个基因有效敲除后(扩展数据图4e),将肿瘤克隆移植到裸鼠体内。尽管体外增殖率相当(扩展数据图 4f),但 Pdgfb、Rab27a、Sytl2 和
1德国汉诺威汉诺威医学院实验血液学研究所; 2德国汉诺威汉诺威医学院功能和应用解剖研究所; 3美国俄亥俄州辛辛那提市辛辛那提儿童医院医疗中心肺部生物学系转换肺科学中心; 4日本Tochigi的Shimotsukeshi Jichi医科大学肺医学系; 5德国汉诺威汉诺威医学院放射学系; 6德国汉诺威汉诺威医学院核医学系; 7美国俄亥俄州辛辛那提市辛辛那提儿童医院医疗中心实验血液学和癌症生物学,癌症与血液疾病研究所(CBDI); 8美国马萨诸塞州波士顿哈佛医学院波士顿儿童医院血液学/肿瘤学系; 9汉诺威医学院,汉诺威,德国汉诺威医学院的儿科,过敏症和新生儿学系,俄亥俄州辛辛那提儿童医院医疗中心肺部医学部门10
