除非另有明确说明,否则 Miltenyi Biotec 产品和服务仅供研究使用,不可用于治疗或诊断。CliniMACS 系统组件(包括试剂、管组、仪器和 PBS/EDTA 缓冲液)均根据通过 ISO 13485 认证的质量体系进行设计、制造和测试。在欧盟,除非另有说明,CliniMACS 系统组件可作为 CE 标志的医疗器械用于各自的预期用途。CliniMACS 试剂和生物素结合物仅供体外使用,不用于治疗用途或直接输注到患者体内。CliniMACS 试剂与 CliniMACS 系统结合使用旨在分离人体细胞。作为 CliniMACS 系统的制造商,Miltenyi Biotec 不就将分离细胞用于治疗目的提供任何建议,也不就临床益处做出任何声明。对于靶细胞的制造和在人体中的使用,必须遵守国家法律法规,例如欧盟的 2004/23/EC 指令(“人体组织和细胞”)或 2002/98/EC 指令(“人体血液和血液成分”)。因此,任何靶细胞的临床应用均完全由 CliniMACS 系统的用户负责。在美国,CliniMACS CD34 试剂系统(包括 CliniMACS Plus 仪器、CliniMACS CD34 试剂、CliniMACS 管道套件 TS 和 LS 以及 CliniMACS PBS/EDTA 缓冲液)已获得 FDA 批准作为人道主义用途设备 (HUD),由美国联邦法律授权用于治疗首次完全缓解的急性髓细胞白血病 (AML) 患者。该设备对此适应症的有效性尚未得到证实。 CliniMACS 产品线的其他产品仅在获得批准的新药临床试验 (IND) 申请、临床试验设备豁免 (IDE) 或 FDA 批准的情况下才可使用。MACS GMP 产品仅用于体外细胞处理,不适用于人体体内应用。如需了解美国的监管状态,请联系您当地的代表。MACS GMP 产品是根据 ISO 13485 质量管理体系设计、制造和测试的,符合相关的 GMP 指南。它们是根据 USP <1043> 关于辅助材料的建议设计的。MACS GMP 生物来源产品的制造和测试符合 EP 第 5.2.12 章“用于生产细胞和基因治疗药物的生物来源原材料”的规定。Vectofusin 是 Genethon 的注册商标。 CliniMACS、CliniMACS Prodigy、MACS、MACSQuant、StainExpress、TexMACS、TransAct 和 Miltenyi Biotec 徽标是 Miltenyi Biotec 和/或其附属公司在全球各个国家的注册商标或商标。版权所有 © 2024 Miltenyi Biotec 和/或其附属公司。保留所有权利。
在1988年第一次UCB移植,将UCB的使用作为造血干细胞(HSC)的替代来源,用于骨髓重建。2与骨髓和动员外周血HSC进行移植相比,脐带血提供了几种好处,包括易于可用性,对捐助者的危险较小,人类白细胞抗原(HLA)匹配标准的降低,以及较低的移植物伴随宿主疾病的风险。3然而,单个脐带血单位的数量和质量不足导致植入率延迟。不同的因素会影响脐带血干细胞的质量和生存能力,影响了UCB干细胞转移的效率。4胎儿窘迫是影响脐带血中CD34 +细胞量化的一个因素。对此事的研究非常有限。这项研究将使我们能够确定胎儿苦恼是否可能影响脐带干细胞的生存力和数量,并有助于我们了解产妇和胎儿因素,从而影响脐带干细胞的数量和存活率。它也可以帮助我们提高我们的知识,以提高儿童和成人中UCB干细胞移植的有效性。
摘要。背景/目标:费城阳性急性淋巴细胞白血病(pH + b-all)是由由BCR-ABL1本质催化活性诱导的淋巴样细胞的恶性转化引起的。BCR-ABL1酪氨酸激酶抑制剂(TKI)对慢性髓样白血病(CML)细胞有效,可诱导耐用的血液学,细胞遗传学和分子反应。然而,在pH + b -all中 - 如CML爆炸危机 - TKI无法维持疾病的缓解。因此,我们想研究BCl-2和BCR-ABL1的双重靶向是否在杀死PH + B-ALL细胞方面更有效。材料和方法:使用Venetoclax,单独或与BCR-ABL1抑制结合使用P210-B-ALL CD34阳性细胞评估BCR-ABL的表达和BCl-2的药理靶向。结果:我们证明了Bcl-2抑制作用的细胞毒性效应,以及用Venetoclax和Nilotinib对Bcl-2和BCR-ABL1的双重靶向进一步提高了这种细胞毒性。结论:Bcl-2是原发性pH + B-所有细胞及其抑制作用的关键生存因子 - 单独或与BCR-ABL1 TKI结合使用 - 应作为这些患者的潜在治疗策略。
案例表现,一名50多岁的男人患有四肢际病史,这是由于汽车事故和慢性便秘,腹泻,下腹痛,恶心和呕吐。CT扫描显示乙状结肠炎和8厘米(最大维度)左下象限小肠质量。剖腹手术显示出完全切除的肠壁中的jejunum质量。对试样的总检查显示了肠壁内柔软的大型乳脂状肿瘤(图1A – C)。显微镜下,样品揭示了由纺锤体细胞实心板组成的侵入性肿瘤(图1D)。纺锤体细胞具有适量的嗜酸性细胞质,过度骨质,卵形对细长核,有些具有突出的核仁。有丝分裂活性是轻快的,具有非典型有丝分裂数字。存在局灶性坏死和出血。免疫染色表明肿瘤细胞的阳性是阳性的AE1/AE3,Vimentin,Ema(焦点)和CAM5.2(焦点)(图2),而CD117,DOG1,CD34,S100,S100,SMA,Desmin,desmin,ck7和ck20(未显示)(未显示)。KI-67增殖指数高达50–60%。 总体发现支持了与小肠的肉眼癌癌相一致的杂质纺锤体肿瘤。KI-67增殖指数高达50–60%。总体发现支持了与小肠的肉眼癌癌相一致的杂质纺锤体肿瘤。
戴蒙德-布莱克凡贫血 (DBA) 是一种遗传性血液疾病,由核糖体蛋白 (RP) 基因(最常见的是 RPS19)的杂合功能丧失突变引起。DBA 的标志性特征是婴儿发生的发育不全性贫血,但一些年龄较大的患者会出现骨髓细胞减少症和多系血细胞减少症。DBA 中贫血的机制尚不完全清楚,对于生命后期发生的全血细胞减少症的了解就更少了,部分原因是患者的造血干细胞和祖细胞 (HSPC) 难以获得,而目前的实验模型并不理想。我们通过使用 CRISPR/Cas9 编辑健康人类供体 CD34 + HSPC 来创建 RPS19 单倍体不足,从而模拟了 DBA。体外分化显示髓系生成正常和红细胞生成受损,如在 DBA 中观察到的那样。移植到免疫缺陷小鼠体内后,RPS19 +/− HSPC 的骨髓再生能力显著降低,表明造血干细胞 (HSC) 受损。RPS19 单倍体不足导致的红细胞和 HSC 缺陷可通过用表达 RPS19 的慢病毒载体转导或通过 Cas9 破坏 TP53 得到部分纠正。我们的研究结果基于对原代人类 HSPC 的基因组编辑,定义了一种可处理、生物学相关的 DBA 实验模型,并确定了一种模拟 DBA 全造血缺陷的相关 HSC 缺陷。
利用 CRISPR-Cas9 核酸酶系统技术进行基因编辑可被视为纠正多种单基因疾病中的遗传突变最有前途的策略之一。在本文中,我们首次介绍了利用 CRISPR-Cas9 基因编辑纠正地中海地区最常见的 b 0 39 地中海贫血突变的方法。结果表明,在纯合 b 0 39 地中海贫血患者的红系前体细胞上进行 CRISPR-Cas9 纠正 b 0 39 地中海贫血突变后,存在正常的 b 珠蛋白基因。等位基因特异性 PCR 和测序证明了这一点。发现校正后的 b 珠蛋白 mRNA 积累效率高,并且 b 珠蛋白和成人血红蛋白 (HbA) 的相关“从头”产生率高。 CRISPR-Cas9 强制的 HbA 产生水平与游离 a 珠蛋白链过量的显著减少相关。分析了编辑程序的基因组毒性(低插入/缺失和无脱靶)。该方案可能是开发有效编辑 b 0 39 患者 CD34 + 细胞的起点,也是设计联合治疗的起点,联合使用 CRISPR-Cas9 编辑 b 珠蛋白基因和其他治疗方法,例如使用化学诱导剂诱导 HbA 和/或胎儿血红蛋白 (HbF)。
长期重建造血干细胞 (LT-HSC) 用于通过干细胞移植治疗血液疾病。LT-HSC 数量极少,且在体外培养过程中分化迅速,这阻碍了它们的临床应用。之前使用基质饲养层、确定培养基混合物和生物工程的发展已使 HSC 在培养中扩增,但主要是短期 HSC 和祖细胞群,而牺牲了幼稚的 LT-HSC。在此,我们报告了一种生物工程 LT-HSC 维持生态位的创建,该生态位重建了生理细胞外基质组织,使用软胶原蛋白 I 型水凝胶来驱动血管周围基质细胞 (PerSC) 中的巢蛋白表达。我们证明,由 HSC 支持性骨髓基质细胞表达的巢蛋白具有细胞保护作用,并且通过调节代谢,对 PerSC 中的 HIF-1 α 表达很重要。当 CD34 +ve HSC 被添加到包含表达 Nestin/HIF-1 α 的 PerSC 的生物工程微环境时,LT-HSC 数量保持正常,克隆和体内重建潜力正常,无需补充培养基。我们提供概念证明,我们的生物工程微环境可以支持 CRISPR 编辑的 HSC 的存活。体外成功编辑 LT-HSC 可能对血液疾病的治疗产生潜在影响。
镰状细胞疾病(SCD)是最常见的严重单基因疾病,每年在全球范围内有300,000个出生。SCD是一种常染色体隐性疾病,是由-珠蛋白基因的第六个点突变(HBB)引起的。ex vivo -Globin基因校正在自体患者衍生的造血干细胞和祖细胞(HSPC)中可能有可能为SCD提供治疗性治疗。我们以前开发了一种CRISPR-CAS9基因靶向策略,该策略使用具有化学改良的指南RNA预处理的高保真性CAS9诱导重组腺相关病毒血清型6(RAAV6) - 介导的HBB基因校正HSPCS中的SCD引起的突变。在这里,我们证明了来自健康和SCD患者供体(GCHBB-SCD)的Plerixafor-Mobilized CD34 +细胞中HBB基因校正的临床前可行性和毒理学。我们在临床规模的GCHBB-SCD制造中最多可实现60%的HBB等位基因校正。移植到免疫缺陷型NSG小鼠中后,通过多核植入实现20%的基因校正。长期安全性,肿瘤性和毒理学研究表明,没有来自植入的GCHBB-SCD药物的造血,遗传毒性或肿瘤性异常的证据。一起,这些临床前数据支持该基因校正策略的安全性,功效和再现性,以启动SCD患者的1/2期临床试验。
使用核酸酶折叠的cas9融合到转录效应子分子的核酸酶,可以用CRISPR-CAS9系统(CRISPRA/CRISPRI)诱导靶向转录激活或干扰。这些技术已在癌细胞系中使用,特别是用于使用慢病毒载体的全基因组功能遗传筛选。但是,由于缺乏有效和无毒的递送方式,CRISPRA和CRISPRI尚未广泛应用于具有治疗相关性的离体培养的原代细胞。在这里,我们通过电穿孔基于RNA或核糖核蛋白(RNP)递送的CRISPRA和CRISPRI平台,并在原代细胞(包括人CD34 +血液 - 诗歌干和祖细胞和祖细胞(HSPC)和人CD3 + T细胞中显示短暂的,可编程的基因调节。我们使用来自不同细菌物种的多个SGRNA和CRISPR系统显示了多重和正交基因调制,并且我们表明CRISPRA可用于操纵HSPC的分化轨迹。这些平台构成了简单有效的手段,可以瞬时控制转录,并通过合成SGRNA轻松地采用并将其重新编程为新的靶基因。我们认为,这些技术将在工程中广泛使用用于干细胞生物学和基因功能的转录组,并且我们预计它们将被实施以开发和增强细胞疗法。
小儿急性髓样白血病(AML)至少30%的患者仍然是致命疾病,这强调需要改善疗法和更好的风险地层。作为蛋白质是(EPI)遗传和环境改变的统一特征,通常由新型的化学治疗剂靶向,我们研究了小儿AML的蛋白质组学景观。使用296个严格验证的抗体的反相蛋白阵列,在500个散装白血病患者样品和30个对照CD34 +细胞样品中测量了蛋白质表达和激活水平。基于强烈的复发蛋白表达表达术,应用了多步元分析方法,并鉴定出九种蛋白质表达特征(PRSIG)。prsig与细胞遗传学和突变状态有关,并且预后有利或不利。基于治疗的分析(即ADE vs。ade plus硼替佐米)识别出与Ade Plus Bortezomib更好的三个Prsig,而不是单独使用ADE。当Prsig在细胞遗传风险基团的背景下进行研究时,PRSIG在多变量分析后独立进行了抑制,这表明蛋白质组学与当前的分类系统相结合。蛋白质。可以鉴定出与正常差异表达的某些明显差异表达的蛋白质,这形成了一种假设的人称药物的平台。
