基因工程是推动免疫疗法发展的主要驱动力,而过继免疫疗法是一种很有前途的癌症治疗方法。由于 NK 细胞具有强大的抗肿瘤特性,并且在同种异体环境中具有已证实的安全性,因此在免疫肿瘤学中对原代人类自然杀伤 (NK) 细胞进行工程改造具有巨大的前景。NK 细胞和 T 细胞是临床试验中常用的细胞类型,因为它们能够识别和摧毁恶性细胞。NK 细胞不依赖匹配的人类白细胞抗原来发挥作用,从而保护同种异体转移免受移植物抗宿主病的影响。因此,它们有可能比目前的工程化 T 细胞疗法更安全、更有效。NK 细胞治疗领域的一个关键挑战是如何使用可以支持监管备案的试剂和仪器来利用扩增、修改和处理临床相关数量的 NK 细胞的能力。在这里,我们开始解决这个痛点。
基于人类自然杀伤 (NK) 细胞的疗法正在接受用于治疗各种癌症的评估,但冷冻保存会降低 NK 细胞的恢复率和功能,从而限制了其治疗可行性。使用针对 T 细胞优化的冷冻保存方案,我们发现约 75% 的 NK 细胞在解冻后 24 小时内死亡,其余细胞的细胞毒性降低。使用 CRISPR-Cas9 基因编辑和共聚焦显微镜,我们发现冷冻保存的 NK 细胞大部分通过由细胞毒性囊泡中颗粒酶 B 泄漏引发的细胞凋亡而死亡。在冷冻保存之前用白细胞介素 15 (IL-15) 和 IL-18 的组合对 NK 细胞进行预处理可将 NK 细胞恢复率提高到约 90-100%,并且与未冷冻保存的 NK 细胞相比,在播散性 Raji 细胞淋巴瘤异种移植模型中实现相同的肿瘤控制率。 IL-15 和 IL-18 诱导的保护机制包括两种机制:通过脱颗粒暂时降低细胞内颗粒酶 B 水平,以及诱导抗凋亡基因。
抑制性受体NKG2A与CD94形成异二聚体,由〜50%的外周血NK细胞表达,并在NK细胞扩张后进一步上调[1]。此外,NKG2A是CD8+ T细胞上的晚期免疫检查点,在反复的抗原刺激和分裂后,它上调了[2]。NKG2A在耗尽的CAR T细胞上还发现了27天的T细胞输注[3]和CD8+肿瘤浸润T细胞[4-6]。有趣的是,NKG2A具有有效的抗肿瘤活性[7]。NKG2A通过其配体HLA-E的参与导致磷酸酶的募集和激活,这些磷酸酶抑制了NK细胞和T细胞激活[8]。 与健康组织相比,在多种癌症中高度表达了 HLA-E [4,9],并且已证明通过HLA-E逃避NK和CD8+ T细胞免疫[10]。 两项在癌细胞中采用CRISPR筛查的研究确定HLA-E是NK细胞的关键负调节剂:癌细胞相互作用[11,12]。 根据此,IFNγ信号传导与STAT1激活增加和HLA-E表达增强引起的NK细胞电阻有关[11]。 这在HLA-E的鼠同源物QA-1B也很明显,QA-1B的鼠同源物在所有测试的细胞类型上被炎症信号上调[13]。NKG2A通过其配体HLA-E的参与导致磷酸酶的募集和激活,这些磷酸酶抑制了NK细胞和T细胞激活[8]。HLA-E [4,9],并且已证明通过HLA-E逃避NK和CD8+ T细胞免疫[10]。两项在癌细胞中采用CRISPR筛查的研究确定HLA-E是NK细胞的关键负调节剂:癌细胞相互作用[11,12]。根据此,IFNγ信号传导与STAT1激活增加和HLA-E表达增强引起的NK细胞电阻有关[11]。这在HLA-E的鼠同源物QA-1B也很明显,QA-1B的鼠同源物在所有测试的细胞类型上被炎症信号上调[13]。
抽象背景自然杀手(NK)细胞通过其细胞毒性效应子功能以及与其他免疫细胞相互作用以构建协调的抗肿瘤免疫反应的能力在肿瘤免疫监视中起着至关重要的作用。新兴数据揭示了通过与调节表型相关的检查点抑制分子在肿瘤微环境(TME)内的NK细胞功能障碍。目的我们旨在分析与非肿瘤NK细胞相比肿瘤内NK细胞的基因表达谱,并表征其在TME中的抑制作用。方法NK细胞是从人肺肿瘤组织中分选的,并与非肿瘤远处的肺进行了比较。在当前的研究中结果,我们确定了人类非小细胞肺癌(NSCLC)中NK细胞功能障碍的独特基因特征。首先,转录组分析揭示了与迁移模式相关的重大变化,鞘氨酸1-磷酸受体1(S1PR1)和CX3C趋化因子受体1(CX3CR1)以及C-X-C趋化因子受体过表达以及C-X-C趋化因子受体类型5(CXCR5)和C-X-C-C介质因子受体型6(C-X-C-C氧化异体受体型6(C-x-C趋化)。第二,肿瘤内NK细胞中的细胞毒性T淋巴细胞相关蛋白4(CTLA-4)和杀伤细胞凝集素(KLRC1)抑制性分子在肿瘤内NK细胞中增加了,并且CTLA-4阻断中的CTLA-4封锁可以部分恢复MHC II类Cland的MHC Cells(DC),该小组在DC/dc中均具有IMBAIR(DC)。最后,NK细胞密度影响NSCLC中CD8 + T细胞的正预后值。结论这些发现表明了与NSCLC中NK细胞抑制功能相关的新分子提示。
淋巴结外自然杀伤 (NK)/T 细胞淋巴瘤,鼻型 (ENKTCL) 是一种高度侵袭性的淋巴瘤,其中肿瘤抑制基因 PRDM1 经常丢失或失活。我们采用了两种不同的 CRISPR/Cas9 方法来生成 PRDM1 -/- 原代 NK 细胞,以研究该基因在 NK 细胞稳态中的作用。与野生型相比,PRDM1 -/- NK 细胞的克隆效率显著提高、增殖率更高、凋亡更少。基因表达谱显示,在 PRDM1 -/- NK 细胞中,与增殖、细胞周期、MYC、MYB 和 TCR/NK 信号相关的通路显著富集,但与正常细胞功能(包括细胞毒功能)相关的通路被下调,这表明 PRDM1 的缺失使 NK 细胞转向增殖和存活,而不是发挥其正常功能。我们还能够进一步修改 PRDM1 缺失的克隆,以引入 ENKTCL 中常见的肿瘤抑制基因(如 TP53、DDX3X 和 PTPN6)的杂合缺失。我们建立了体外模型来阐明 PRDM1 介导其对 NK 细胞的稳态控制的主要途径。这种方法可以应用于研究淋巴瘤发病机制中的其他相关遗传病变和致癌协同作用。
摘要 背景 过继转移具有增强的抗体依赖性细胞毒作用 (ADCC) 能力和对 CD38 靶向性抗性的自然杀伤 (NK) 细胞有可能增强达雷木单抗 (DARA) 的临床抗骨髓瘤活性。因此,我们试图开发一种有效的基于 CRISPR/Cas9 的基因编辑平台,以破坏离体扩增的 NK 细胞中的 CD38 表达 (CD38 敲除 (KO)),并同时为 CD38 KO NK 细胞配备高亲和力 CD16 (CD16-158V) 受体。方法 使用 Cas9 核糖核蛋白复合物生成 CD38 KO 人 NK 细胞。通过结合信使 RNA (mRNA) 转染 CD38 KO NK 细胞和在 CD38 位点插入靶向基因以介导基因敲入 (KI),扩展了该平台。在体外和 MM.1S 异种移植小鼠模型中测试了这些基因编辑的 NK 细胞在 DARA 存在下持续存在和介导 ADCC 的能力。结果在体外扩增的 NK 细胞中实现了高效的 CD38 基因破坏,而不会影响其增殖或功能能力。CD38 KO 赋予了对 DARA 诱导的 NK 细胞自相残杀的抗性,在体外和 MM.1S 异种移植小鼠模型中,在 DARA 存在下,能够持续存在并增强对骨髓瘤细胞系的 ADCC。CD38 KO NK 细胞可以通过转染编码 CD16-158V 受体的 mRNA 进一步修饰,从而增强 DARA 介导的 ADCC。最后,我们观察到针对 CD38 基因座的同源定向修复模板促进了有效的 2 合 1 CD38 KO 与截短 CD34 报告基因和 CD16-158V 受体的 KI 结合,CD38 KO /CD16 KI NK 细胞在体外和体内均表现出 DARA 介导的 ADCC 的进一步增强。结论使用体外扩增的 CD38 KO /CD16 KI NK 细胞进行过继免疫治疗有可能提高 DARA 的临床疗效。通过将互补的基因工程策略整合到 CD38 KO 制造平台中,我们生成了具有显著增强的 CD38 定向抗肿瘤活性的 NK 细胞,为在临床上探索这种免疫治疗策略奠定了坚实的基础。
同样,我们为客户提供的服务质量不仅取决于我们的员工,还取决于我们的服务基础设施。同样,正如您稍后将看到的,NK 正在稳步增加和改进我们服务基础设施的两个关键要素,即我们的办公网络和信息网络。2001 年,NK 在世界各地开设了 9 个新办事处,从罗马尼亚的康斯坦萨和英国的沃金到美国的迈阿密,以及加拿大、亚洲和澳大利亚。NK 遍布 39 个国家和日本的 91 个办事处网络对于服务我们的全球客户至关重要。但如今,我们需要能够随时随地向客户提供信息和服务。2001 年新 NK 信息中心的开业是 NK 服务基础设施持续改进的重要一步,NK-SHIPS 服务的新增功能和最近推出的全新 NK 网站也是如此。虽然这在今天几乎是意料之中的事情,但以 NK-SHIPS 为例,几乎可以在世界任何地方、任何时间在几分钟内下载并打印一份遗失的证书或调查记录的副本,这仍然让我印象深刻。得益于互联网,NK 信息网络的范围现在几乎无处不在,补充了
具有治疗前景的间充质干细胞 (MSC) 通常会被宿主的先天免疫细胞(包括自然杀伤 (NK) 细胞)迅速清除。人们已努力生成免疫逃逸的人类胚胎干细胞 (hESC),其中通过缺陷的 β -2-微球蛋白 (B2M)(人类白细胞抗原 (HLA) I 类的共同单位)逃避 T 细胞免疫,并通过 HLA-E 或 -G 的异位表达抑制 NK 细胞。然而,NK 亚型在接受者之间甚至在不同的病理状态下都不同。有必要剖析和优化免疫逃逸细胞对 NK 亚型的功效。在这里,我们首先生成 B2M 敲除 hESC 并将其分化为 MSC(EMSC),并发现仅当通过可诱导慢病毒系统以剂量依赖性方式转导时,表达 HLA-E 和 -G 的 B2M -/- EMSC 才会出现 NK 抗性,而当它们插入安全港时则不会出现。在转导的 EMSC 中同时高水平表达的 HLA-E 和 -G 抑制了三种主要 NK 亚型,包括 NKG2A + / LILRB1 + 、NKG2A + / LILRB1 - 和 NKG2A - / LILRB1 + ,并且 IFN- γ 启动进一步增强了这种抑制作用。因此,这项研究设计了对多种 NK 亚型具有抗性的 MSC,并强调当转基因用于赋予宿主细胞新效应时,剂量很重要,尤其是对于治疗细胞逃避免疫排斥而言。
入侵临界大脑结构,(c)一小部分胶质母细胞瘤干细胞(GSC)的肿瘤再生能力(2,3)。出现的结果支持以下概念:不仅成熟的GBM细胞可以被天然杀伤(NK)细胞有效地靶向(4-8)(4-8),而且它们的相关干细胞也可能非常容易受到NK细胞介导的免疫攻击(9,10)。这些先天免疫性淋巴细胞在预防许多类型的癌症的肿瘤起始和转移方面具有广泛的作用,并且它们比T细胞作为治疗操作的候选者具有明显的优势(11,12)。然而,迄今为止已研究的绝大多数肿瘤细胞具有强大的免疫防御能力,使它们能够逃避NK细胞介导的细胞毒性。这些包括破坏NK和肿瘤细胞之间受体相互作用的破坏以及免疫抑制细胞因子释放到微环境中,例如转化生长因子β(TGF-β)(13-15)。即使人们可以将NK细胞免受GBM肿瘤的反射策略的侵害,也无法消除足够数量的自我更新GSC来维持完整的反应。的确,关于GSC对体内NK细胞监测的敏感性知之甚少。因此,为了确定NK细胞在体内是否可以靶向GSC,我们设计了一项临床前研究,并使用了对原代GBM组织的单细胞分析,从接受手术的患者来确定NK细胞浸润活性肿瘤的部位的程度,以及效力的效力,它们消除了患者衍生的GSC。
背景与目的:循环淋巴细胞亚群对接受术后放疗的宫颈癌患者的预后价值尚不明确。本研究旨在探讨这些淋巴细胞亚群对该患者群体的预后意义。方法:采集101例宫颈癌患者术后放疗前的外周血样本。采用流式细胞术确定淋巴细胞亚群的比例和绝对计数,包括总T细胞、CD4+ T细胞、CD8+ T细胞、自然杀伤(NK)细胞和B细胞。采用Kaplan-Meier方法和Cox回归分析估计总生存期(OS)并确定关键的预后因素。生成受试者工作特征(ROC)曲线以评估预测准确性。结果:生存分析显示,与NK细胞水平较高的患者相比,NK细胞比例降低(P = 0.02)或NK细胞计数减少(P = 0.01)的患者的总生存期(OS)明显较差。单因素Cox分析显示,NK细胞比例(P=0.025;HR,0.33;95%CI,0.12~0.87)和NK细胞计数(P=0.015;HR=0.28)均显著影响OS。多因素分析显示,CD4+T细胞比例(P=0.02;HR,0.08;95%CI,0.01~0.72)和NK细胞计数(P=0.08;HR,0.11;95%CI,0.01~1.37)为独立的预后因素。NK细胞计数预测1、2、3年生存率的ROC曲线下面积(AUC)分别为0.66、0.76、0.68。与早期诊断的患者(特别是 IB3 和 IIA 期)相比,IIIC1 期患者的 NK 细胞绝对计数和比例均显著降低。结论:我们的研究发现,治疗前的循环 NK 细胞计数和比例水平可作为接受术后放疗的宫颈癌患者的有希望的预后生物标志物