在最近引入 CRISPR/Cas9 技术进行基因敲除、基因敲入、基因补充和内源基因标记之前,很少有基因工具可用于研究克氏锥虫。核糖开关是天然存在的自裂解 RNA(核酶),可被配体激活。我们实验室最近的研究结果证明了枯草芽孢杆菌中的 glmS 核酶可用于布氏锥虫的基因沉默,该核酶已被证明可控制响应外源葡萄糖胺的报告基因表达。在这项工作中,我们使用 CRISPR/Cas9 系统用活性(glmS)或非活性(M9)核酶对克氏锥虫糖蛋白 72(TcGP72)和液泡质子焦磷酸酶(TcVP1)进行内源性标记。通过 PCR 确认基因标记,并通过蛋白质印迹分析验证蛋白质下调。通过免疫荧光分析和体外生长定量进行进一步的表型表征。我们的结果表明,该方法成功地抑制了两种基因的表达,而无需培养基中的葡萄糖胺,这表明克氏锥虫在正常生长条件下产生足够水平的内源性葡萄糖胺 6-磷酸来刺激 glmS 核酶活性。该方法可用于敲除克氏锥虫中的必需基因并验证这种寄生虫中的潜在药物靶点。
图 4.3:使用光学表面轮廓仪分析的实验性 RCF 轨迹轮廓 (a) 10 5 个周期的表面轨迹轮廓的 3D 视图 (b) 10 5 个周期的顶视图 (c) 不同的测试周期 ............................................................................................................................................................. 82
摘要 目的:探讨长链非编码RNA(lncRNA)CAC-NA1G-AS1通过介导p53调控结直肠癌(CRC)细胞增殖和侵袭能力,从而影响CRC进展的作用。患者与方法:首先测定CRC组织和邻近正常组织中的CACNA1G-AS1水平。检测不同肿瘤分期CRC患者的CACNA1G-AS1水平。评估CACNA1G-AS1影响HCT116和SW480细胞增殖和侵袭能力的变化。分析CACNA1G-AS1的亚细胞分布。通过Western印迹、RNA免疫沉淀(RIP)和染色质免疫沉淀(ChIP)技术检测CAC-NA1G-AS1与EZH2的相互作用,最终探究CACNA1G-AS1靶基因的生物学功能。结果:CACNA1G-AS1在结直肠癌组织中表达上调,而癌旁正常组织中CACNA1G-AS1表达水平维持在较高水平,且在Ⅲ-Ⅳ期结直肠癌患者中仍高于Ⅰ-Ⅱ期患者。敲低CACNA1G-AS1后,HTC116和SW480细胞的增殖和侵袭能力降低。CACNA1G-AS1主要分布在细胞核中。此外,CACNA1G-AS1被证实与EZH2存在相互作用。敲低CACNA1G-AS1或EZH2可上调p53水平,降低EZH2对p53的募集能力。最终,p53敲低可部分逆转CACNA1G-AS1对HCT116细胞增殖能力的调控作用。结论:CACNA1G-AS1通过与EZH2形成致癌复合物下调p53水平,从而增强CRC细胞的增殖和侵袭能力。
背景:卵巢癌是最常见和最恶性的癌症之一,部分原因是其诊断晚、复发率高。化疗耐药与不良预后有关,并被认为与癌症干细胞 (CSC) 库有关。因此,阐明介导治疗耐药的分子机制对于找到治疗耐药性肿瘤的新靶点至关重要。方法:卵巢癌细胞系中的 MYPT1 shRNA 消耗、miRNA 过表达、RT-qPCR 分析、患者肿瘤样本、细胞系和肿瘤球衍生的异种移植、体外和体内治疗、公共转录组患者数据库和内部患者队列中卵巢肿瘤数据的分析。结果:我们发现编码肌球蛋白磷酸酶靶亚基 1 的 MYPT1 (PPP1R12A) 在卵巢肿瘤中下调,导致生存率降低和肿瘤发生率增加,以及对铂类疗法的耐药性。类似地,靶向 MYPT1 的 miR-30b 过表达会增强卵巢肿瘤细胞的 CSC 样特性,并与 Hippo 通路的激活有关。抑制 Hippo 通路转录辅激活因子 YAP 可在体内和体外抑制由低 MYPT1 表达或 miR-30b 过表达引起的对铂类疗法的耐药性。结论:我们的工作揭示了卵巢肿瘤对化疗的耐药性与 MYPT1 下调后 Hippo 通路靶基因激活导致的 CSC 池增加之间的功能性联系。顺铂和 YAP 抑制剂联合治疗可抑制 MYPT1 诱导的耐药性,表明可在 MYPT1 表达低、可能对铂类疗法产生耐药性的患者中使用这种治疗方法。