摘要 在化疗药物治疗过程中,许多癌症对所用药物的治疗效果产生了抗药性。人们提出了各种与耐药性有关的机制。耐药性最重要的原因之一是膜转运蛋白大家族(ATP 结合盒 ABC)中 ATP 依赖性膜蛋白的高表达。在这个家族中,分子量为 170 KDa 的膜转运蛋白,即糖蛋白 P,在耐药性中起着重要作用。MRP(多药耐药相关蛋白)家族的其他膜蛋白也与耐药性有关。ABC 蛋白也在正常细胞中表达。上述蛋白质负责内源性底物的转移。这些蛋白质在癌细胞中的高表达是癌症治疗的最重要障碍。临床反应的范围是由治疗的药用品质以及癌细胞的内部和后天分子和物理特性以及外部环境因素引起的。后者可能由多种因素引起,例如DNA修复能力增强、药物代谢改变、药物靶标突变或改变、药物积累减少以及细胞死亡信号失活。癌症干细胞(CSC)表现出耐药性。因为转运蛋白过度表达三磷酸腺苷(ATP)结合盒。通过特定的调控基因,FOXM1(一种特定于细胞增殖的转录因子)控制G1/S和G2/M细胞周期阶段之间的转换。此外,它是一种导致癌细胞扩增和增殖的致癌基因。通过ABCC5(ATP结合盒亚家族成员5)的表达,FOXM1过度表达导致鼻咽癌对紫杉醇产生耐药性。
1 Fundamental Foundation, Creteil, France, 2 Adult Medical Psychiatry and Medical Psychology Service (Department of Psychiatry and Adult Medical Psychology), Fundamental Resistant Depression Expert (Fundamental Advanced Center of Experture in Resistant Depression, CHU de Toulouse (University Hospital Center), Purpan Center, Tonic Toulouse Neuroimaging Center, University of Toulouse (Toulouse University), Inserm, UPS, Toulouse, France, 3精神病学服务,基本抗抑郁症中心,CIC-1431 INSERM,BUSANçonChu,Burgundy FrancheComté大学,法国4 Inserm U1028 7 U1253, Ibrain, CIC1415, INSERM, CHRU de Tours (Regional University Hospital Center), University of Tours, France, 8 Department of Emergency Psychiatry and Acute CARE, CHU Montpellier, Inserm U1061, Montpellier University, Montpellier, France, 9 Pole of general and university psychiatry, Center Expert Depression Résistant Fundamental, CH Charles Perrens,波尔多,营养和神经生物学实验室(综合
摘要:KRAS 是人类最常见的致癌基因之一,但生产直接抑制剂的协同努力大多以失败告终,使 KRAS 获得了“无药可用”的称号。最近生产亚型特异性抑制剂的努力取得了更大的成功,几种 KRAS G12C 抑制剂已进入临床试验,包括 adagrasib 和 sotorasib,它们已显示出对患者有效的早期证据。从其他 RAS 通路抑制剂的经验教训表明,这些药物在体内的效果将因耐药性的产生而受到限制,G12C 抑制剂的临床前研究已发现这方面的证据。在这篇综述中,我们讨论了 G12C 抑制剂的当前证据、对 G12C 抑制剂的耐药机制以及克服它们的潜在方法。我们讨论了联合治疗的可能靶点,包括 SHP2、受体酪氨酸激酶、下游效应物和 PD1/PDL1,并回顾了正在进行的针对这些抑制剂的临床试验。
图 1. 在表达 GFP 标记的野生型或变体 AR 的 M12 同源 PC 细胞系中追踪 EB1 彗星。MT 尖端和 AR 用 GFP 标记并成像一分钟(采集率为每秒两张图像)。EB1 彗星通过计算跟踪(Yang 等人,2005 年)。颜色编码代表 EB1 速度,较冷的颜色对应较低的速度,较暖的颜色对应较快的速度。比例尺等于 5 µm。(A)表达野生型 AR 变体的 PC 细胞的 MT 生长轨迹。中位速度约为 15 µm,边缘处明显减速,没有 AR。(B)表达对紫杉醇治疗有抗性的 ARv7 变体的细胞的 MT 生长轨迹。中位速度约为 24 um/min。下图显示相应的 EB1 彗星速度直方图。生长速度直方图(单位:µm/min)见(C)AR野生型和(D)ARv7变体。我们根据(Goldstein et al., 2011)分离前列腺组织(图2)并培养类器官
图 1. 在表达 GFP 标记的野生型或变体 AR 的 M12 同源 PC 细胞系中追踪 EB1 彗星。MT 尖端和 AR 用 GFP 标记并成像一分钟(采集率为每秒两张图像)。EB1 彗星通过计算跟踪(Yang 等人,2005 年)。颜色编码代表 EB1 速度,较冷的颜色对应较低的速度,较暖的颜色对应较快的速度。比例尺等于 5 µm。(A)表达野生型 AR 变体的 PC 细胞的 MT 生长轨迹。中位速度约为 15 µm,边缘处明显减速,没有 AR。(B)表达对紫杉醇治疗有抗性的 ARv7 变体的细胞的 MT 生长轨迹。中位速度约为 24 um/min。下图显示相应的 EB1 彗星速度直方图。 (C) 为 AR 野生型的生长速度直方图,(D) 为 ARv7 变体的生长速度直方图,单位为 µm/min。
图 1. 在表达 GFP 标记的野生型或变体 AR 的 M12 同源 PC 细胞系中追踪 EB1 彗星。MT 尖端和 AR 用 GFP 标记并成像一分钟(采集率为每秒两张图像)。EB1 彗星通过计算跟踪(Yang 等人,2005 年)。颜色编码代表 EB1 速度,较冷的颜色对应较低的速度,较暖的颜色对应较快的速度。比例尺等于 5 µm。(A)表达野生型 AR 变体的 PC 细胞的 MT 生长轨迹。中位速度约为 15 µm,边缘处明显减速,没有 AR。(B)表达对紫杉醇治疗有抗性的 ARv7 变体的细胞的 MT 生长轨迹。中位速度约为 24 um/min。下图显示相应的 EB1 彗星速度直方图。生长速度直方图(单位:µm/min)见(C)AR野生型和(D)ARv7变体。我们根据(Goldstein et al., 2011)分离前列腺组织(图2)并培养类器官
图 1. 在表达 GFP 标记的野生型或变体 AR 的 M12 同源 PC 细胞系中追踪 EB1 彗星。MT 尖端和 AR 用 GFP 标记并成像一分钟(采集率为每秒两张图像)。EB1 彗星通过计算跟踪(Yang 等人,2005 年)。颜色编码代表 EB1 速度,较冷的颜色对应较低的速度,较暖的颜色对应较快的速度。比例尺等于 5 µm。(A)表达野生型 AR 变体的 PC 细胞的 MT 生长轨迹。中位速度约为 15 µm,边缘处明显减速,没有 AR。(B)表达对紫杉醇治疗有抗性的 ARv7 变体的细胞的 MT 生长轨迹。中位速度约为 24 um/min。下图显示相应的 EB1 彗星速度直方图。生长速度直方图(单位:µm/min)见(C)AR野生型和(D)ARv7变体。我们根据(Goldstein et al., 2011)分离前列腺组织(图2)并培养类器官
图 1。在表达 GFP 标记的 wt- 或变体 AR 的 M12 同源 PC 细胞系中跟踪 EB1 彗星。MT 尖端和 AR 用 GFP 标记并成像一分钟(采集率为每秒两张图像)。EB1 彗星通过计算跟踪(Yang 等人,2005 年)。颜色编码代表 EB1 速度,较冷的颜色对应较低的速度,较暖的颜色对应较快的速度。比例尺等于 5 µm。(A) 表达野生型 AR 变体的 PC 细胞的 MT 生长轨迹。中位速度约为 15 µm,在没有 AR 的边缘明显减速。(B) 表达对紫杉醇治疗有抗性的 ARv7 变体的细胞的 MT 生长轨迹。中值速度约为 24 微米/分钟。下面板显示相应的 EB1 彗星速度直方图。(C) 显示了 AR 野生型的生长速度直方图,(D) 显示了 ARv7 变体的生长速度直方图(单位为 µm/分钟)。我们根据 (Goldstein et al., 2011) 分离了前列腺组织(图2)并培养了类器官
图 1 MDA-MB-361 细胞系长期暴露于 T-DM1 会导致对 ADC 的敏感性降低。 (A) T-DM1 对 MDA-MB-361 S、TR 和 TCR 的 MTT 细胞毒性试验表明,与亲本相比,两种抗性细胞的 IC50 值均有所增加。 通过双向方差分析进行统计分析,然后进行 Bonferroni 后检验,并显示 TR (***:P < .001;**:P < .01;*:P < .05) 和 TCR (+) 与 S 相比的差异。 (B) 将亲本和抗性细胞暴露于浓度不断增加的 T-DM1 中,并使用 xCELLigence 跟踪细胞指数。 绘制了由 RTCA 软件确定的标准化细胞指数的斜率。统计分析采用双向方差分析,随后进行 Bonferroni 后检验,并显示每种细胞系在对照和暴露条件下的差异 (*: P < .05; ***: P < .001)。(C) 暴露于 T-DM1 6 天后,通过流式细胞术研究 Annexin 阳性细胞。与亲本细胞相比,TR 和 TCR 中的 Annexin 阳性细胞百分比有所下降。统计分析采用双向方差分析,随后进行 Bonferroni 后检验 (*: P < .05; ***: P < .001)