抽象淀粉酶是一些微生物产生的水解酶,并用于淀粉的水解。这项研究旨在确定从废物中分离出的某些真菌分离株,利用合成可溶性淀粉和糖甘蔗渣作为底物合成淀粉酶合成酶的能力。尼日尔曲霉,曲霉曲霉和先前被确定为具有淀粉活性活性的镰刀菌。使用浸没的发酵过程用于产生淀粉酶,基底培养基和甘蔗甘蔗作为底物。孵育时间,底物和接种浓度,pH和温度均已优化。使用二硝基白杨酸试剂(DNS)技术来确定产生的淀粉酶的活性。使用溶剂淀粉(20 g(w/v))在室温和pH 7.0处作为底物的初始产生,当它们的浓度高(3%)较高时,所有分离株都会更好地产生淀粉酶,但孵化时间不同,但在弯曲曲霉(8.65±0.21 U/ml/ml/ml/mliim)和fus/umiium s s suspergillus nigr nigr and s hr不同的淀粉酶(3%)和fus n.1.15(7.15)黄曲霉的曲霉(7.30±0.14 U/ml/分钟)需要144小时的延长孵育时间才能产生该产品。研究表明,进一步研究了分离株的身份和提取的酶的工业应用。关键字:淀粉酶,优化,参数,甘蔗甘蔗渣,合成淀粉。Further production using sugar cane bagasse and optimization of production parameters of the isolates reveals that Aspergillus niger (4.35±0.07 U/mL/minutes) has an optimum incubation period of 120 hours, an inoculum concentration and substrate concentration of 2% each, and a pH of 6, Aspergillus flavus ( 6.40±0.28 U/mL/minutes ) has an optimum incubation 144小时的周期为中性pH时的接种物和底物浓度分别为3%,镰刀菌(6.80±0.28 u/ml/mine)的最佳孵育周期为168hr。,接种量为3%,3%的浓度为3%,底物浓度为2%,所有均值均可在30个隔离率中均可在30 o中均能均可置于30 O型均值。对于淀粉酶合成中使用的昂贵合成淀粉底物,渣酱可能是更具成本效益的选择。
摘要:属于芽孢杆菌属的物种会产生许多有利的细胞外临界,这些细胞外象征在商业规模上具有巨大的应用,用于纺织品,洗涤剂,饲料,食品和饮料行业。这项研究旨在与当地环境分离出有效的热耐淀粉和纤维素细菌。使用盒子 - 贝恩肯的设计响应表面方法论,我们进一步优化了淀粉酶和纤维素酶活性。通过16S rRNA基因测序将分离株鉴定为枯草芽孢杆菌Qy4。这项研究利用马铃薯果皮废料(PPW)作为生物材料,在开放环境中过度倾倒。干燥PPW的营养状况是通过近距离分析确定的。在250 ml erlenmeyer量中进行了所有实验运行,该量含有酸处理的PPW作为底物,由耐热的枯草脂肪酸盐Qy4在37°C下孵育72 h,在浸没发酵中孵育72 h。结果表明,与酸治疗相比,稀释的H 2 SO稀释辅助高压灭菌治疗有利于产生更多的淀粉酶(0.601 IU/mL/min),而在稀酸治疗中观察到高纤维素酶的产生(1.269 IU/mL/min),并且在稀酸治疗中观察到,并且与酸辅助治疗相比非常有效。确定的P值,F值和系数证明了模型的重要意义。这些结果表明,PPW可以可持续地用于生产酶,这些酶在各种工业阵列中,尤其是在生物燃料生产中。
简介:地奥司明是一种天然柑橘黄酮,具有显著的抗氧化和抗炎特性。急性白血病是一种常见的血液癌症。材料和方法:α-淀粉酶活性采用 Taha 等人的工作方法测定。结果:在本研究中,我们检查了它对一些重要酶的影响;醛糖还原酶的 IC 50 值为 196.07,α-淀粉酶的 IC 50 值为 76.40。进行了分子对接研究,以评估地奥司明在 α-淀粉酶和醛糖还原酶存在下的结合亲和力和生物活性。讨论:对接研究的结果表明,地奥司明对这些酶具有显著的结合亲和力,对 α-淀粉酶和醛糖还原酶的对接得分分别为 -9.768 和 -140469。因此,该化合物可用作这些酶的潜在抑制剂。在最近研究的细胞和分子部分,用 MTT 法评估了用地奥司明处理 48 小时的细胞对 HL-60、克隆 15 HL-60、HL-60/MX1 和 HL-60/MX2 细胞系的细胞毒性和抗人急性淋巴细胞白血病特性。地奥司明对 HL-60、克隆 15 HL-60、HL-60/MX1 和 HL-60/MX2 细胞系的 IC 50 值分别为 466、323、502 和 537 µg/ml。结论:在地奥司明存在下,急性淋巴细胞白血病细胞系的活力呈剂量依赖性降低。看来,地奥司明的抗人类急性淋巴细胞白血病作用是由于其抗氧化作用。
淀粉酶通常在人类,动物,植物和微生物中发现。但是,为了满足工业需求,大多数淀粉酶酶都是从微生物中获得的[3]。与植物或动物相比,选择了从微生物衍生的酶的分离。其中包括快速的微生物增长,能够设计重组酶生产的能力,易于扩展生产以及不受自然因素(例如季节和时间)影响的生产条件[4]。先前的几项研究成功地鉴定了来自芽孢杆菌属的淀粉酶产生细菌种类,包括蜡状芽孢杆菌[5],叶丘犬杆菌[6],阿特罗氏芽孢杆菌[7] [7],枯草芽孢杆菌[8],枯草芽孢杆菌[8],甲虫[9]和牛肉杆菌[11],以及其他型杆菌[11]。铜绿假单胞菌[12],lutetiensis链球菌[13]等。
当前确定淀粉酶抑制剂水平的方法基于在酶对可溶性淀粉的作用过程中存在或不存在抑制剂在对可溶性淀粉的作用中的存在或不存在抑制剂(2)或使用碱反应。由于这些比色方法不能应用于饮食补充剂,这是不同成分的复杂混合物,可能会干扰测量值,因此我们建议通过高表现色谱与脉冲色谱与脉冲脉冲测量的脉冲测量值直接测量饮食补充剂中的相位粒素水平(MALT)的速度(HPAD)的速度(HPAD)(HP)在存在和不存在抑制剂的情况下,猪A-淀粉酶在可溶性淀粉上的酶正肌。
在低温法中,不需要将催化淀粉水解的酶添加到淀粉悬浮液中。使用相同酵母物种的转基因 (GM) 菌株。转基因酵母菌株具有允许细胞产生 α-淀粉酶和葡糖淀粉酶并将这些酶附着到细胞表面膜外表面的基因。将转基因酵母细胞添加到加热到 80°C 的淀粉中,并在厌氧条件下维持以产生乙醇。
摘要。淀粉酶酶由于其多种应用而在各种行业中使用。在这项研究中,主要在淀粉琼脂培养基上筛选了来自土壤样品的细菌,以通过检测突出的透明区域鉴定淀粉酶产生。在本研究中使用了五个土壤样品,即面包店(A-1),甘蔗汁点(A-2),Lichi Chinesis Garden土壤(A-3),稻田(A-4)和糖工业废物(A-5)。在淀粉酶产生的阳性中被发现阳性。在生产介质上进一步筛选了菌株。与其他菌株相比,N-1细菌菌株显示出更高的酶活性(92.21±17 IU/mL),因此被选择进行进一步工作。从16S rRNA分析中将菌株鉴定为芽孢杆菌基型。通过一次技术在一个因素中优化各种参数来增强酶的产生。农业工业废料稻油被用作底物。酶的最佳温度为35°C,pH 5.5和2%(w/v)的底物浓度。使用十二烷基聚丙烯酰胺凝胶电泳的定性检测表明,酶的分子量为35 kDa。这表明该酶需要中等温度和中性pH值才能显示出最大的活性。关键字:淀粉酶,16S rRNA基因,芽孢杆菌杆菌,DNS,PCR
乙醇提取物表现出抗糖尿病活性,对 L6 myoutube 大鼠的 α-葡萄糖苷酶、α-淀粉酶和葡萄糖摄取的抑制分析结果显示。从菠萝冠中提取乙醇提取物,并分馏得到 3 种馏分,即乙酸乙酯馏分、正己烷馏分和水馏分。使用 H-NMR 鉴定每个馏分以确定其中存在的化合物类别。对乙酸乙酯、正己烷和水馏分的 H-NMR 分析显示存在酚类化合物。浓度为 250 µg/mL 的乙酸乙酯馏分可以抑制 62.03% 的 α-葡萄糖苷酶和 71.68% 的 α-淀粉酶。乙酸乙酯馏分能够增加 L6 myoutube 的葡萄糖摄入量,百分比增加 89.82%。与作为阳性对照的胰岛素相比,这个数字相当高。本研究为首次报道菠萝冠馏分对α-葡萄糖苷酶和α-淀粉酶的抑制作用及对L6 myoutube大鼠葡萄糖摄取的影响,根据本研究结果发现菠萝冠乙酸乙酯馏分具有抗糖尿病活性。
摘要:基因组编辑,特别是使用 CRISPR-Cas9,是操纵基因组(包括大肠杆菌)的有力工具。本研究旨在利用 CRISPR-Cas9 对大肠杆菌中的 lacZ 基因进行遗传工程改造,以评估其在红薯皮(Ipomoea batatas)深层发酵过程中在淀粉酶产生中的作用。在 37ºC、pH 6.2、7.0 和 8.4 条件下培养编辑型和野生型大肠杆菌,并使用硫酸铵纯化所得淀粉酶。使用淀粉作为葡萄糖源筛选淀粉酶的产生,并在不同温度和 pH 水平下进行酶表征。没有向导 RNA (gRNA) 和阿拉伯糖的 CRISPR-Cas9 编辑的大肠杆菌显示蓝色菌落,而有 gRNA、Cas9 但没有阿拉伯糖的 CRISPR-Cas9 编辑的大肠杆菌没有菌落。用 Cas9 和阿拉伯糖但不加 gRNA 编辑的大肠杆菌也产生了蓝色菌落。当暴露于 Cas9、gRNA 和阿拉伯糖时,菌落表现出白色表型。凝胶电泳显示,暴露于 Cas9 和阿拉伯糖的大肠杆菌在 650 bp 处有两条带,而暴露于不含 gRNA 和阿拉伯糖的 Cas9 的蓝色菌落则在 1,100 bp 处显示条带。阳性对照显示三条不同的条带,而阴性对照没有。淀粉酶筛选显示野生型大肠杆菌和 CRISPR 编辑的大肠杆菌有相似的透明区。在发酵 15 天期间,pH 8.4 为野生型大肠杆菌的生长提供了最有利条件,pH 7.0 为 CRISPR 编辑的大肠杆菌的生长提供了最有利条件。温度和 pH 值测定表明,野生型和 CRISPR 编辑的大肠杆菌在 45ºC 和 pH 7 下均表现出相似的最大淀粉酶活性,酶产量没有显着差异。这些结果表明 lacZ 基因对大肠杆菌中的淀粉酶产生没有显着影响。 DOI:https://dx.doi.org/10.4314/jasem.v28i10.5 许可证:CC-BY-4.0 开放获取政策:JASEM 发表的所有文章均为开放获取文章,任何人都可以免费下载、复制、重新分发、转发、翻译和阅读。版权政策:© 2024。作者保留版权并授予 JASEM 首次出版权。本文的任何部分均可未经许可重复使用,但必须引用原始文章。引用本文为:MINARI, J. B; NWOSU, GE; DADA, I. S; ABDULAZEEZ, DO (2024)。使用马铃薯皮(Ipomea batata)作为酶源,分离和表征由 CRISPR-Cas 9 编辑的 LacZ 基因和未编辑的大肠杆菌产生的淀粉酶。应用科学与环境管理杂志 28 (10) 2981-2989 日期:收到日期:2024 年 7 月 7 日;修订日期:2024 年 8 月 15 日;接受日期:2024 年 8 月 19 日出版日期:2024 年 10 月 5 日关键词:CRISPR Cas9 基因编辑、lacZ 基因、大肠杆菌、马铃薯皮发酵、淀粉酶理想的代谢催化剂是酶,它通过明确定义的途径提供各种内源性生化反应。(Singh 等人,2019 年)。由于酶存在于所有自然界物种中,包括植物、动物、和微观微生物,它们可用于工业用途。此外,在受控情况下,各种微生物酶被识别