图3。有效的转换可提供高库的产量,而不会放大。使用多种市售解决方案构建了无PCR WGS库:KAPA HyperPrep(超声控制),WatchMaker DNA库准备碎片,Kapa Exprus,Kapa Evoplus,Kapa Evoplus,Nebnext Ultra Ultra II FS DNA库Prep和Illumina DNA Prep。Na12878人类基因组DNA的300 ng(所有评估套件)或75 ng(仅钟表者)被用作输入。工作流程进行了优化,通过调整碎片和结合后清理参数来提供类似尺寸的最终库。(a)使用Novaseq 6000输出数据绘制插入大小分布。(b)最终无PCR库的产量,如qPCR所测量。制表剂解决方案提供适用于WGS的插入大小,而无需锯齿状图案,并且产量超过了其他准备,包括超声处理。
进行多个反应时,我们通常将它们组合起来,然后装入 15 μL 进行分析。**I. 末端修复和适配器 2 连接。**1. 从 -20°C 中取出 NEBNext Ultra 末端修复/ dA 尾部模块试剂,在冰上解冻。2. 按如下方式组装末端修复反应:碎片 DNA \(来自步骤 H)\(27.7µL)末端修复缓冲液 \(10x)\(3.3µL)末端修复酶混合物 \(1.5µL)水 \(0.5µL)总计 \(33µL)3. 将反应在 20°C 下孵育 30 分钟,然后在 65°C 下孵育 30 分钟。 4. 在末端修复过程中,按照下列步骤形成接头 2: 接头 2 N7 Forward \(100µM) \(1µL) 接头 2 N6 Forward \(100µM) \(1µL) 接头 2 N5 Forward \(100µM) \(1µL) 接头 2 Rev \(100µM) \(3µL) 2x Annealing Buffer \(6µL) Total \(1µL) 5. 将接头 2 混合物在 95°C 下孵育 5 分钟,然后让反应
使用氯化锌沉淀法(7)从高滴度裂解物中提取 DNA,使用 NEBNext Ultra II 试剂盒(New England Biolabs,马萨诸塞州伊普斯威奇)制备用于测序,并使用匹兹堡噬菌体研究所(宾夕法尼亚州匹兹堡)的 Illumina MiSeq 仪器(v3 试剂)进行测序。对总共 1,056,847 个单端 150 bp 读数进行 9,214 倍覆盖度的测序。分别使用 Newbler v2.9 和 Consed v29.0 进行组装和质量控制检查(8, 9)。PineapplePizza 的基因组有 16,662 个碱基对,G + C 含量为 53.6%。没有测序读数超出基因组末端,基因组末端的 101 bp 反向重复与共价结合的末端蛋白一致,如 phi29(10)。使用 NCBI BLASTn (11) 进行全基因组比对,结果显示与其他 Microbacterium 噬菌体无显著的核苷酸序列相似性,PineapplePizza 被归类为单一基因。使用 Glimmer v3.02 (12) 和 GeneMark v2.5 (13) 自动注释 PineapplePizza 的基因组,然后使用 Phamerator (14)、DNA Master v5.23.6 ( http://phagesdb.org/DNAMaster/ )、PECAAN、BLAST (11) 和 HHPred (15) 手动细化。Aragorn v1.2.38 (16) 或 tRNAscan-SE v2.0 (17) 未鉴定出 tRNA 基因。所有分析均使用默认设置进行。
已测试至少20 nt。探针可以用3´或5´生物素/Desthiobiotin亲和力组设计,用于链霉亲和素富集(NEB#S1421)。为了获得最佳结果,受保护的DNA:RNA杂交区应为4或5个核苷酸