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桉树树生长控制，以喷雾剂，注射，切割绘画或躯干banding1
lyptus globulus labill。喷雾剂为0.2至0.3％1-丙膦酸（NIA 10656）或注射8 mL 10％技术级NIA 10656的喷雾剂可使芽生长降低1年。乙基氢1-丙膦酸（EHPP，NIA 10637）显示出类似于NIA 10656的反应。 萘甲苯酸（NAA），EHPP，NIA 10656和Amonium carbamoylphopphopphonate（krenite）均显示在修剪切割时绘制时某些生长调节剂反应。 在沥青载体中施用的抑制剂比在水载体中的类似应用更有效。 应用6，羟基-3-（2H）吡idacinone（MH），三氟甲基磺氨基磺酰基-P-乙二醇二醇（持续），NaA和EHPP组合，或甲基2-氯-9-氯-9-氯二氟乙烯-9-羟基 - 9-甲基甲基甲基甲基甲基甲基甲基甲基二甲基甲基甲基甲基甲基甲基甲基甲基甲基甲基酸酯，含有甲基甲基甲基甲基酸酯，含有甲基甲基甲基酸酯，含有含量125）被测试为躯干树皮带，以减少末端芽增长。 维护CF 125产品用相等量的柴油稀释并施用乙基氢1-丙膦酸（EHPP，NIA 10637）显示出类似于NIA 10656的反应。萘甲苯酸（NAA），EHPP，NIA 10656和Amonium carbamoylphopphopphonate（krenite）均显示在修剪切割时绘制时某些生长调节剂反应。在沥青载体中施用的抑制剂比在水载体中的类似应用更有效。应用6，羟基-3-（2H）吡idacinone（MH），三氟甲基磺氨基磺酰基-P-乙二醇二醇（持续），NaA和EHPP组合，或甲基2-氯-9-氯-9-氯二氟乙烯-9-羟基 - 9-甲基甲基甲基甲基甲基甲基甲基甲基二甲基甲基甲基甲基甲基甲基甲基甲基甲基甲基酸酯，含有甲基甲基甲基甲基酸酯，含有甲基甲基甲基酸酯，含有含量125）被测试为躯干树皮带，以减少末端芽增长。维护CF 125产品用相等量的柴油稀释并施用
使用蛋白质结构预测的金属蛋白酶切割靶标的解密特征
此预印本版的版权持有人于2025年1月18日发布。 https://doi.org/10.1101/2025.01.13.632885 doi：biorxiv Preprint
简介及应用
为Ҷ进一步ՈॆCas13a ⭘于RNA ࠶ᆀ䇺ᯝ的⚥ᓖ，ᕐ䬻઼ -aPes -CROOLQs 䈮仈㓴合ሶ䟽㓴㚊合䞦ᢙ໎ᢰᵟ˄recRPELQase pRO\Perse aPpOLILcaWLRQ，RPA˅઼Cas13a 的旁支活性结合，ᔰ发 ࠪҶާᴹᴤ侩⚥ᓖ的'NARNA ࠶ᆀỰ⍻ᐕާüüS+(R/2C.˄SpecLILc +LJK-SeQsLWLYLW\ (Q]\PaWLc RepRrWer 8Q/2C.LQJ˅。俆ݸ࡙⭘RPA 或R7-RPA ሶṧ૱中的Ṩ䞨࠶ᆀ序列进㹼ᚂᢙ໎，❦ਾ㓿7 䖜ᖅ䞦 䖜ᖅࠪབྷ䟿的RNA ࠶ᆀ，ަ中的目标RNA ࠶ᆀ与crRNA-Cas13 ༽合⢙ 结合◰活Cas13 㳻ⲭ的旁支活性，从而切割ઘത⧟ຳ中࣐的ᣕ࠶ ᆀ，ӗ⭏㜭被Ự⍻的㦗ݹؑਧ。
改进的 gRNA 二级结构允许编辑抵抗 CRISPR-Cas9 切割的靶位
CRISPR-Cas9 介导的基因组编辑的第一步是切割与 CRISPR 向导 RNA (gRNA) 中所谓的间隔序列互补的目标 DNA 序列。然而，一些 DNA 序列对 CRISPR-Cas9 切割具有抵抗性，这至少部分是由于 gRNA 折叠错误造成的。为了解决这个问题，我们设计了 gRNA，使其恒定部分具有高度稳定的发夹结构，并通过化学修饰进一步增强了它们的稳定性。“基因组编辑优化锁定设计”(GOLD)-gRNA 将基因组编辑效率提高了约 1000 倍（从 0.08% 到 80.5%），其他不同靶标的平均效率提高了 7.4 倍。我们预计，无论间隔序列组成如何，这种改进的 gRNA 都将实现高效编辑，并且在所需的基因组位点难以编辑时将特别有用。
具有多个切割晶圆的六面模塑面板级芯片级封装
摘要 本研究介绍了 6 面模塑面板级芯片级封装 (PLCSP) 的设计、材料、工艺、组装和可靠性。重点介绍了在带有多个器件晶圆的大型临时面板上制造 PLCSP 的 RDL（重新分布层）。由于所有印刷电路板 (PCB) 面板都是矩形，因此一些器件晶圆被切成两块或更多块，以便充分利用面板。因此，产量非常高。由于所有工艺/设备都是 PCB 工艺/设备（不是半导体工艺/设备），因此这是一个非常低成本的工艺。制造 RDL 后，将晶圆从 PCB 面板上剥离。然后进行焊球安装，并从带有 RDL 的原始器件晶圆制造 6 面模塑 PLCSP。介绍了 PLCSP 的跌落测试和结果（包括故障分析）。 6 面模塑 PLCSP PCB 组件的热循环由非线性温度和时间相关有限元模拟执行。关键词 扇入封装、再分布层、6 面模塑面板级芯片级封装、切割晶圆和跌落测试。
在LPS之前先用Zymosan的精密切割牛乳清切片预先刺激
。cc-by-nd 4.0国际许可证（未经同行评审证明）获得的是作者/资助者，他已授予Biorxiv的许可证，以永久显示预印本。它是制作
改进的 gRNA 二级结构允许编辑抵抗 CRISPR-Cas9 切割的靶位
CRISPR-Cas9 介导的基因组编辑的第一步是切割与 CRISPR 向导 RNA (gRNA) 中所谓的间隔序列互补的目标 DNA 序列。然而，一些 DNA 序列对 CRISPR-Cas9 切割具有抵抗性，这至少部分是由于 gRNA 折叠错误造成的。为了解决这个问题，我们设计了 gRNA，使其恒定部分具有高度稳定的发夹结构，并通过化学修饰进一步增强了它们的稳定性。“基因组编辑优化锁定设计”(GOLD)-gRNA 将基因组编辑效率提高了约 1000 倍（从 0.08% 到 80.5%），其他不同靶标的平均效率提高了 7.4 倍。我们预计，无论间隔序列组成如何，这种改进的 gRNA 都将实现高效编辑，并且在所需的基因组位点难以编辑时将特别有用。
一种测定桦树和杨树中CRISPR/Cas系统切割效率的方法
摘要 测定Cas9对靶位点的切割效率对于基因组编辑非常重要。然而，这种测定只能通过体外方法进行，因为需要纯化Cas蛋白和合成gRNA。在这里，我们开发了一种体内方法，称为植物瞬时CRISPR/Cas编辑（TCEP）来测定Cas9的切割效率。按常规方法构建农杆菌介导的植物转化CRISPR/Cas载体。利用我们建立的瞬时转化方法，Cas9蛋白和gRNA瞬时表达并形成复合物以切割其靶位，从而导致动态DNA断裂。使用qPCR定量断裂的DNA以测量Cas9的切割效率。我们利用TCEP和体外方法研究了白桦和山杨×波利纳植物中Cas9对不同靶位点的切割效率。 TCEP法测定结果与体外法一致，说明TCEP法测定切割效率可靠。另外，利用TCEP法，我们发现热处理和超声处理均能显著提高CRISPR/Cas效率。因此，TCEP法具有广泛的应用价值，不仅可用于分析CRISPR/Cas效率，还可用于确定Cas9切割中涉及的因素。
自动切割和跑步将可扩展的表观基因组分析带入精密药物
图5。High-resolution profiling of FACS-isolated type 3 innate lymphoid cells (ILCs) using autoCUT&RUN identifies unique genomic compartments, including active regulatory elements (H3K4me1, H3K27ac), promoters (H3K4me3), and gene bodies (H3K36me3), as well as repressed genes (H3K27me3) and转录因子结合位点（CTCF）（a）。比较FACS分离的原代小鼠粒细胞，3型ILC和天然杀伤细胞（LY49H+）的目标图显示出明显的H3K4ME3（启动子）和H3K27ME3（抑制基因）剖面（B）。所有由Inmger制备和提供的细胞，每反应以10,000个核测定。