摘要背景。在过敏的诊断工作中,确定过敏原特异性免疫球蛋白E(IgE)对于诊断,预后和治疗选择很重要。这项研究的目的是评估免疫印迹测定法(欧洲)在检测针对蒂莫西草和桦木花粉过敏蛋白成分的IgE抗体中与氟化酶测定(Immunocap,Phadia 250)相比。方法。分析了来自患者对蒂莫西草和桦木花粉的128种血清样品。使用Euroline DPA-DX花粉1和ImmunoCap测定法测量了对提摩太草和桦木花粉的IgE抗体水平。然后,在二进制(正vs负),半定量(IgE类)和定量(浓度)水平上比较两种方法。还将两种方法与皮肤刺测试的结果进行了比较。结果。与IM-MUNOCAP相比,欧洲方法的正百分比为93%,年龄为94%,总准确度为94%。kappa分析表明,在确定测试的7/11组件的IgE类别中,方法之间的一致性中等强度。使用Spearman的等级相关性分析时,所有组件均显示出正相关。结论。总体而言,我们发现欧洲和免疫方法在测量IgE敏化方面存在良好的相关性。
第一单元 遗传工程简介。DNA、RNA 和蛋白质分析方法:琼脂糖凝胶电泳、Southern 和 Northern 印迹技术、点印迹、SDS-PAGE 和 Western 印迹。DNA 修饰酶及其应用:限制酶、DNA 聚合酶。末端脱氧核苷酸转移酶、激酶和磷酸酶以及 DNA 连接酶。第二单元 聚合酶链式反应。C-DNA 合成和克隆:mRNA 富集、逆转录、接头、衔接子、平端连接、同聚物加尾。基因组和 cDNA 文库:制备和用途、基因组测序。DNA 测序:传统和自动测序。
选项2:使用Hibit印迹确认全长蛋白的表达。取编辑的细胞样品,并用首选缓冲液裂解。在凝胶上运行样品,将蛋白质转移到膜上并使用纳米-Glo®Hibit印迹系统检测。使用未经编辑的细胞作为背景的负面对照。
图 1. Cas9D10A 切口酶诱导 HD 和 DM1 iPSC 衍生细胞收缩。A) 顶部:用 S100β 和 DAPI 染色的 HD iPSC 衍生星形胶质细胞的代表性共聚焦图像。底部:实验时间线。B) 代表性小池 PCR 印迹显示 HD iPSC 衍生星形胶质细胞的收缩,这些星形胶质细胞仅用 Cas9D10A 转导,或者用 Cas9D10A 切口酶和 sgCTG 转导 6 周。C) 对 HD iPSC 衍生星形胶质细胞的小池 PCR 印迹进行量化。D) 顶部:用 β-Tubulin III 和 DAPI 染色的 HD iPSC 衍生皮质神经元的代表性共聚焦图像。底部:实验时间线。 E) 代表性小池 PCR 印迹显示 HD iPSC 衍生的皮质神经元收缩,这些神经元仅用 Cas9D10A 转导或用 Cas9D10A 和 sgCTG 转导 6 周。F) 对 HD iPSC 衍生的皮质神经元的小池 PCR 印迹进行量化。G) 顶部:用 β-Tubulin III 和 DAPI 染色的 DM1 iPSC 衍生的皮质神经元的代表性共聚焦图像。底部:实验时间线。H) 代表性小池 PCR 印迹显示 HD iPSC 衍生的皮质神经元收缩
a。CDK7底物(RNAP II)在用DMSO(对照)处理的HCT116细胞中或通过免疫印迹测量的指示化合物。b。通过免疫印迹在处理过的HCT 116细胞中癌基因C-MYC和DNA双链断裂标记H2AX的表达。C.细胞增殖(C -BRDU分析)和D,处理后的HCT 116细胞中的细胞凋亡分析(Annexin V/7AAD染色)。e。在用DMSO(对照)处理的MDA-MB-231(TNBC)细胞中,在MDA-MB-231(TNBC)细胞中的凋亡制造商(裂解的caspase 3和裂解PARP1)的表达表达或通过免疫印迹测量的指示化合物。
图S1。 GSK3β与PRR11相互作用,并影响PRR11降解。 (a)分析GSK3β肽通过质谱法与PRR11蛋白相互作用的能力。 (b)用FLAG-GSK3β和HA-PRR11质粒转染了293T细胞,HA-PRR11和FLAG-GSK3β的Western blot分析在用HA和FLAG抗体分析后进行。 (c)IP分析用针对GSK3β(TOP)和PRR11(底部)的抗体分析IP分析后,Caki-1细胞中PRR11和GSK3β的蛋白质印迹分析。 (d)IP分析后,ACHN细胞中GSK3β的Western印迹分析,抗体抗体对PRR11。 (E)GSK3β在RCC细胞中沉默或过表达,通过QRT-PCR分析验证了GSK3β和PRR11的转录水平(n = 3个生物学独立实验)。 (F-G)RCC细胞用FLAG-GSK3β或SIGSK3β转染,并通过Western Blot分析验证PRR11蛋白表达。 (h)在暴露于DMSO或CHIR-99021(10μM)处理的ACHN细胞后,在指定的持续时间内,对PRR11(TOP)进行了蛋白质印迹分析。 PRR11半衰期的定量(底部,n = 3个生物学独立实验)。 (i)转染后HA-PRR11的蛋白质印迹分析图S1。GSK3β与PRR11相互作用,并影响PRR11降解。(a)分析GSK3β肽通过质谱法与PRR11蛋白相互作用的能力。(b)用FLAG-GSK3β和HA-PRR11质粒转染了293T细胞,HA-PRR11和FLAG-GSK3β的Western blot分析在用HA和FLAG抗体分析后进行。(c)IP分析用针对GSK3β(TOP)和PRR11(底部)的抗体分析IP分析后,Caki-1细胞中PRR11和GSK3β的蛋白质印迹分析。(d)IP分析后,ACHN细胞中GSK3β的Western印迹分析,抗体抗体对PRR11。(E)GSK3β在RCC细胞中沉默或过表达,通过QRT-PCR分析验证了GSK3β和PRR11的转录水平(n = 3个生物学独立实验)。(F-G)RCC细胞用FLAG-GSK3β或SIGSK3β转染,并通过Western Blot分析验证PRR11蛋白表达。(h)在暴露于DMSO或CHIR-99021(10μM)处理的ACHN细胞后,在指定的持续时间内,对PRR11(TOP)进行了蛋白质印迹分析。PRR11半衰期的定量(底部,n = 3个生物学独立实验)。(i)转染后HA-PRR11的蛋白质印迹分析
近几十年来,神经科学发生了范式转变。过去,我们关注的是单个神经元的特性(James 1890;Queenan 等人 2017)。现在人们逐渐意识到,信息的存储和处理依赖于空间分布的、动态的神经元组合(Fujisawa 等人 2008;Buschman 等人 2011;Yuste 2015),称为神经集合(Buschman 等人 2012;Tayler 等人 2013;Pfau 等人 2013;Pinotsis 等人 2017;Pinotsis 和 Miller 2017)或印迹细胞(Thompson 1976;Josselyn 等人 2015)。蛋白质诱导(Gordon 等人,1980 年)、立即早期基因 (IEG) 表达(Guzowski 等人,2005 年)和光遗传学(Fenno 等人,2011 年)等技术可以识别参与记忆存储和回忆的神经元集合(Ryan 等人,2015 年;Tonegawa 等人,2015b 年)。此外,最近的实验发现许多大脑区域同时存在维持相同记忆的神经集合,这被称为印迹复合体(Poo 等人,2016 年;Roy 等人,2019 年)。在 Roy 等人 (2019 年) 的研究中,他们使用蛋白质 cFos 和 IEG 绘制了总共 247 个大脑区域,其中发现 117 个区域在回忆恐惧记忆时会被显著重新激活。因此,记忆并非存储在单个大脑区域,而是分散在多个区域和神经集合中。早期的记忆巩固理论(Squire 和 Alvarez 1995)和多重痕迹理论(Nadel 和 Moscovitch 1997)也发现记忆存储在多个区域,形成印迹复合体。这些印迹复合体通过由单突触或多突触连接形成的印迹通路连接在一起(Tonegawa 等人 2015a)。
小时。(C)免疫印迹显示用 AMG510 单独处理(300 nmol/L)或与 selinexor(100 nmol/L)组合处理 24 小时的 MiaPaCa-2 细胞的核和细胞质部分中 Rb 的表达。Lamin B1 和 GAPDH 分别用作核和细胞质部分的上样对照。(D)免疫印迹显示用 selinexor(300 nmol/L)和 MRTX1257 处理的 MiaPaCa-2 细胞中 KRAS 和 NF- κ B 表达降低